Hierin beschrijven we eenvoudige werkwijzen voor de bereiding van vesicles, de inkapseling van transcriptie en translatie, en de controle van eiwitproductie. De verkregen celvrije systemen kunnen worden gebruikt als een uitgangspunt steeds complexe cellulaire nabootst.
Naarmate de belangstelling verschuift van individuele moleculen tot systemen van moleculen, hebben een toenemend aantal laboratoria getracht bouwen van onderop cellulaire bootst die beter vertegenwoordigen de complexiteit van cellulaire leven. Tot op heden zijn er een aantal paden die kunnen worden genomen om gecompartimenteerde cellulaire nabootst, met inbegrip van onderzoek water-in-olie emulsies, microfluïdische apparaten, en vesicles. Elk van de beschikbare opties heeft specifieke voor-en nadelen. Bijvoorbeeld, water-in-olie emulsies geven hoge inkapselingsefficiëntie maar niet goed bootsen de barrièrelaag van levende cellen. Het belangrijkste voordeel van de hierin beschreven werkwijzen is dat ze allemaal gemakkelijk en goedkoop uit te voeren. Transcriptie-translatie is ingekapseld binnen fosfolipide blaasjes door een proces dat gemeenschappelijke instrumenten, zoals een centrifugale verdamper en een extruder exploiteert. Reacties worden gecontroleerd door fluorescentie spectroscopie. Het protocols kan worden aangepast voor recombinant eiwit expressie, de bouw van cellulaire mimiek, de verkenning van de minimumeisen voor cellulaire leven, of de assemblage van genetische circuits.
Celvrije, in vitro transcriptie-translatie reacties en de vorming van vesicles van synthetische lipiden zijn niet nieuw. Echter, het combineren van de twee in een cellulair nabootsen aanzienlijk challenging1-6. E. coli celextracten met of zonder T7 RNA polymerase kan worden gebruikt als een bron van transcriptie-translatie 7,8. Celextracten profiteren van de aanwezigheid van extra cellulaire componenten die eiwitexpressie en vouwen kunnen vergemakkelijken. Als alternatief, een mix van individueel gezuiverd RNA en eiwitmoleculen, dat wil zeggen de PURE systeem 9, kan worden gebruikt om intravesicular eiwitsynthese bemiddelen 4,10-14. De PURE-systeem maakt het mogelijk voor de bouw van volledig gedefinieerd cellulaire mimiek en heeft geen last van de nucleaseactiviteit gevonden in cel extracten. Praktisch betekent dit dat minder template DNA nodig, waardoor faciliteren van lage inkapseling efficiëntie 11 </sup>. Hoewel minder vaak gebruikt, kunnen cellulaire nabootsers worden gebouwd met celextracten afgeleid van eukaryote cells15. Tot dusverre zijn genetisch gecodeerde ingekapselde cascades en cellulaire bootst het milieu zin gerapporteerd 16-18.
De eenvoudigste manier om transcriptie-translatie reacties volgen is om de fluorescentie of luminescentie van genetisch gecodeerd elementen te meten. Typisch, vuurvlieg luciferase of GFP 19 worden gebruikt, hoewel in vitro reacties worden vaak gemeten door radiolabeling. Fluorescentie detectie maakt bovendien voor de monitoring van populaties van blaasjes 20,21 via cytometrie gebaseerde methoden, en biedt daarmee enig inzicht in de stochastische aard van de biologische-achtige processen. Deze controle methoden zijn gebruikt om een kleine set van ontwerpregels en een bibliotheek van onderdelen uit te bouwen, inclusief een verzameling van fluorescente eiwitten die geschikt i zijn gedefinieerdn vitro transcriptie-translatie 22, de invloed van genetische organisatie expressie 22, de activiteit van sigmafactoren 16 en de doelmatigheid van transcriptionele terminators 23. Toch blijft er nog veel dat moet worden gedaan naar de mogelijkheid van het bouwen voorspelbaar in vitro genetisch gecodeerd apparaten te verhogen.
Er zijn vele methoden beschikbaar om blaasjes te maken. De meest voorkomende werkwijzen afhankelijk van de vorming van een dunne lipide film op een glazen oppervlak, gevolgd door resuspensie in waterige Solution24. Als de waterige oplossing bevat transcriptie-translatie, bijvoorbeeld, dan een fractie van de vesicles zal de vereiste componenten voor eiwitproductie bevatten. De inkapselingsefficiëntie van dergelijke werkwijzen is laag, wat betekent dat slechts een klein percentage van vesicles actief. Vele alternatieve methoden gekenmerkt door veel hogere inkapseling efficiency benutten de omzetting van water-in-olie emulsie druppeltjes aan blaasjes. Hoewel het waarschijnlijk is dat dergelijke werkwijzen gemeengoed zal in de toekomst nog deze methoden lijden aan de noodzaak van speciale apparatuur en geven vesicles met gewijzigde membraan preparaten 25. Een duidelijk voordeel van het water-in-olie vesicle werkwijzen is de mogelijkheid om membraan lamellarity controleren. De hierin beschreven werkwijze is gebaseerd op de dunne vetfilm protocol beschreven door de Yomo laboratorium 11 met kleine aanpassingen waaronder extra homogenisatiestap. Deze methode is eenvoudig, goedkoop, en geeft robuuste blaasjes goed geschikt voor het inkapselen van transcriptie-translatie machinerie.
Hoewel celvrije synthetische biologie staat nog in de kinderschoenen, voorschotten een basis gelegd van waaruit steeds complexer cel-achtige systemen kan worden gemaakt. De reconstructie van de transcriptie-translatie machinerie van volledig gedefinieerd onderdelen 9 binnenkant van blaasjes 28 was bijzonder belangrijk in het faciliteren van latere inspanningen bij de bouw van milieuvriendelijke responsieve kunstmatige cells17, 18. Zo hebben kunstmatige cel studies zijn gebruikt om evolutionaire processen sonde 4,29,30, de mechanistische details van de RNA-en eiwitsynthese 22,31, de invloeden van metabole load32, 33, en de assemblage van virusdeeltjes 34. Belangrijker, bestaat voldoende kennis nu dat elementaire cellulaire functie kunnen binnen worden gereconstitueerd van blaasjes in het laboratorium het volgen van deze eerdere rapporten en de hierin beschreven protocollen.
Behalve dat het gemakkelijk, de beschreven inkapseling procedure heeft een aantal voordelen. Zo kunnen veel lege gelyofiliseerd vesicle aliquots worden vooraf opgeslagen bij -20 ° C voor later gebruik. Het protocol is niet onderhevig biologische moleculen aan organische oplosmiddelen, grote temperatuurschommelingen of lange periodes van dialyse. We verwachten dat de zachtheid van de procedure de opname van extra componenten zoals nodig zal vergemakkelijken. We hebben ook niet waargenomen nadelige effecten op het veranderen van de samenstelling van de lipide membraan op inkapselen en transcriptie-translatie efficiency. Daarom lipiden ontvankelijker voor de opname van membraaneiwitten, specifieke morfologie of visualisatie denkbaar worden benut.
De belangrijkste beperking van de beschreven methode is dat de verkregen vesicles niet homogeen in grootte of lamellarity. Voor veel toepassingen zijn deze problemen niet interfereren met de interpretatie van de gegevens. Echter, indien nodig, aanvullende stappen worden opgenomen om smalle ee grootteverdeling en de lagen van membranen, zoals verdere rondes van extrusie verminderen na inkapseling, vriesdooien, dialyse of 35. Ongetwijfeld betere methoden die deze en andere problemen te omzeilen worden ontwikkeld. Tot die tijd, vinden we het hier beschreven protocol goed geschikt voor de bouw van cellulaire nabootst.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs erkennen de Armenise-Harvard Foundation, de Marie-Curie Trentino COFUND (ACS), de autonome provincie Trento (Ecomm), en CIBIO voor financiering.
Quick Spin Mini-prep kit | Qiagen | 27104 | |
Spectrometer | NanoDrop 1000 | NDB767ND | |
POPC | Avanti Polar Lipids | 770557 | MW 760 g/mol Transition Temp -2 °C CAS# 26853-31-6 |
Ethanol | Sigma Aldrich | 459836 | Anhydrous, >99.5% |
Phenol-choloroform-isoamyl alcohol 25:24:1, for molecular biology use | Sigma Aldrich | P3803-100mL | Saturated with 10 mM Tris, pH 8.0, 1 mM EDTA |
Chloroform | Biotech Grade Fluka | 496189-1L | Contain ethanol at 0.5-1.0% v/v as stabilizer |
Brown amber glass bottles | VWR | 89043-518 | 55X 48 mm |
Rotary evaporator | Buchi Rotovapor R-210/Sigma | Z563846EU-1EA | With jack and water bath, 29/32 joint 240 V |
Analog vortex mixer | VWR | 945300 | Speed 1,000-3,200 rpm |
Homogenizer | IKA T10 Basic Ultra-Turbax | 3420000 | |
Mini-extruder | Avanti Polar Lipids | 610020 | |
Extruder filters | Whatman | 610014 | drain disc 10 mm |
Extruder polycarbonate membrane 400 nm | Whatman | 61007 | nuclepore polycarbonate |
Speed vacuum | Labconco | 7970011 | Centritrap DNA concentrator |
PURExpress kit | New England Biolabs | NRM #E6800S | |
RNAse inhibitor (40,000 U/ml) | New England Biolabs | #M0307S | |
Proteinase K (20.2 mg/ml) | Fermentas | #EO0491 | |
Microscope | Zeiss Observer Z1with a AxioCam MRm camera | ||
RealTime | CFX96 Real time PCR Detection System (Biorad) | ||
Silicon press to seal -Molecular Probe | Life Technologies | P18174 | Resistant from -25-30 °C |
Siliconized glass circle cover slides | Hampton Research | HR3-231 | Diameter= 22 mm |
ImageJ | NIH |