Summary

La stimulation cérébrale profonde avec simultanée IRMf chez les rongeurs

Published: February 15, 2014
doi:

Summary

Ce protocole décrit un procédé standard pour l'imagerie fonctionnelle simultanée de résonance magnétique et la stimulation cérébrale profonde dans le rongeur. L'utilisation combinée de ces outils expérimentaux permet l'exploration de l'activité aval mondiale en réponse à une stimulation électrique à pratiquement n'importe quelle cible de cerveau.

Abstract

Afin de visualiser les réponses neuronales mondiaux et en aval à la stimulation cérébrale profonde (DBS) à différents objectifs, nous avons mis au point un protocole pour l'utilisation de niveau d'oxygène dans le sang (BOLD) d'imagerie par résonance magnétique fonctionnelle (IRMf) à l'image des rongeurs avec simultanée DBS. DBS IRMf présente un certain nombre de défis techniques, y compris la précision de l'implantation d'électrodes, artefacts MR créés par l'électrode, le choix de l'anesthésie et de paralysie de minimiser les effets neuronaux tout en éliminant les mouvements des animaux, et l'entretien des paramètres physiologiques, déviation à partir de laquelle peuvent confondre l' le signal BOLD. Notre laboratoire a mis au point un ensemble de procédures qui sont capables de surmonter la plupart de ces problèmes éventuels. Pour une stimulation électrique, une maison de tungstène bipolaire microélectrode est utilisé, inséré par stéréotaxie au site de stimulation dans le sujet anesthésié. En préparation de l'imagerie, les rongeurs sont fixés sur une pièce de tête en matière plastique ettransféré à l'alésage de l'aimant. Pour la sédation et la paralysie pendant le balayage, un cocktail de dexmédétomidine et pancuronium est infusé en continu, avec une dose minimale de l'isoflurane, cette préparation minimise l'effet de plafond BOLD d'anesthésiques volatiles. Dans cet exemple, l'expérience, la stimulation du noyau sous-thalamique (STN) produit des réponses GRAS qui sont observées principalement dans les régions corticales ipsilatérales, centrée sur le cortex moteur. Simultanée DBS et l'IRMf permet la modulation sans ambiguïté des circuits neuronaux en fonction du site de stimulation et des paramètres de stimulation, et permet l'observation des modulations neuronales libres de partialité régionale. Cette technique peut être utilisée pour étudier les effets en aval de la modulation de circuits neuronaux à presque n'importe quel région du cerveau, avec des implications pour la clinique et expérimentale DBS.

Introduction

Déterminer les effets globaux en aval de l'activité des circuits neuronaux représente un défi majeur et un objectif pour de nombreux domaines de la neuroscience des systèmes. Un manque d'outils sont actuellement disponibles répondent à ce besoin, et donc il ya une demande pour une plus grande accessibilité des montages expérimentaux appropriés. Une telle méthode pour évaluer la conséquence globale de l'activation des circuits neuronaux repose sur l'application simultanée de la stimulation cérébrale profonde électrique (DBS) et l'IRM fonctionnelle (IRMf). DBS-IRMf permet la détection de réponses en aval de l'activation du circuit à grande échelle spatiale, et peut être appliqué à pratiquement n'importe quelle cible de stimulation. Cet ensemble d'outils est très approprié pour des études précliniques traductionnelles, y compris la caractérisation de réponses à la stimulation à haute fréquence thérapeutique.

En plus de l'accès à un scanner IRM approprié, expériences réussies DBS-IRMf exigent l'examen d'un certain nombre de variables, y compris le type d'électrode, la méthode de la sédation et de la maintenance des paramètres physiologiques. Par exemple, le choix de l'électrode doit être fondée sur des facteurs liés à la stimulation efficacité (par exemple. Taille et la conductance de plomb, mono-vs bipolaire), ainsi que la compatibilité MR et l'électrode taille d'artefact. artefacts d'électrodes varient en fonction du matériau d'électrode, et la taille ainsi que la séquence de balayage utilisée; tests pré-expérimental complet doit être employée pour déterminer le type d'électrode appropriée pour chaque étude. En général, les électrodes de tungstène de microfilaires sont recommandés pour ce protocole. Choix de paralytique et sédatif doit être fait pour immobiliser efficacement l'animal et de réduire les effets de suppression de certains sédatifs sur le niveau de signal-en oxygène du sang (BOLD). Enfin, il est essentiel de maintenir l'animal à des paramètres physiologiques optimales, y compris la température corporelle et la saturation en oxygène.

Le protocole que nous avons développé pour DBSIRMf surmonte nombre de ces obstacles potentiels, et dans nos mains, fournit des résultats fiables et cohérents. De plus, ces procédures expérimentales peuvent être aisément adoptées pour la combinaison de l'IRMf avec les méthodes de stimulation de substitution, y compris une stimulation optogenetic.

Protocol

Déclaration éthique: Cette procédure est en conformité avec les Instituts nationaux de la santé Lignes directrices pour la recherche animale (Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire) et est approuvé par l'Université de comité de protection et d'utilisation des animaux en Caroline du Nord. Une. Electrode Implantation La première étape est l'implantation d'électrodes. Dans cette étape, une électrode est implant?…

Representative Results

Des données fonctionnelles représentatives ont été acquis selon le protocole ci-dessus dans un seul rat avec une électrode de stimulation implantée sur le noyau sous-thalamique sur le côté droit. Une illustration de la configuration essentielle pour l'acquisition d'images IRMf DBS est fournie à la figure 1. La stimulation a été appliqué en accord avec le protocole ci-dessus, avec une amplitude de 0,3 mA, la fréquence de 130 Hz et la durée d'impulsion de 0,09 ms. Activation robu…

Discussion

Simultanée DBS et IRMf représente une boîte à outils expérimental prometteur pour l'identification et la caractérisation des réponses globales en aval à la stimulation des circuits neuronaux, in vivo. L'avantage majeur de cette technique par rapport aux autres outils disponibles, tels que les enregistrements électrophysiologiques, réside dans le caractère relativement impartiale de l'IRMf, où une zone vaste et diversifié du tissu cérébral peut être examiné pour la réactivité de DB…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Shaili Jha et Heather Decot de l'aide pour le tournage.

Materials

Isoflurane (Forane) Baxter 1001936060
Dexmedetomidine (Dexdomitor) Pfizer 145108-58-3
Pancuronium Bromide Selleckchem S2497
9.4T Small Animal MRI Bruker BioSpec System with BGA-9S gradient
Sterotactic Frame Kopf Model 962
Small Animal Ventilator CWE, Inc.  12-02100 Model SAR-830
Dental Cement A-M Systems 525000 Teets Cold Curing
MouseOx Plus System STARR Life Science Corp.
Capnometer Surgivet, Smith Medical V9004 Series
Stimulus Isolator World Precision Instruments Model A365
MR-compatible Brass Screws McMaster Carr 94070A031 0-80 thread size, 1/4 inch. Can be cut to desired length.
Tungsten Wire California Fine Wire Company 100211 Used to construct MR-compatible stimulating microelectrode
Syringe Pump Harvard Appartus Model PHD 2000 (not MRI-compatible)

Riferimenti

  1. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates, 5th edition. , (2004).
  2. Fukuda, M., Vazquez, A. L., Zong, X., Kim, S. G. Effects of the alpha(2)-adrenergic receptor agonist dexmedetomidine on neural, vascular and BOLD fMRI responses in the somatosensory cortex. Eur. J. Neurosci. 37 (2), 80-95 (2013).
  3. Lai, H. Y., Younce, J. R., Albaugh, D. L., Kao, Y. C., Shih, Y. Y. Functional MRI reveals frequency-dependent responses during deep brain stimulation at the subthalamic nucleus or internal globus pallidus. NeuroImage. In press, (2013).
  4. Frackowiak, R. S. J., et al. . Human Brain Function. , (2004).
  5. Poline, J. B., Brett, M. The general linear model and fMRI: does love last forever. NeuroImage. 62, 871-880 (2012).
  6. Min, H. K., et al. Deep brain stimulation induces BOLD activation in motor and non-motor networks: an fMRI comparison study of STN and EN/GPi DBS in large animals. NeuroImage. 63, 1408-1420 (2012).
  7. Lozano, A. M., Lipsman, N. Probing and Regulating Dysfunctional Circuits Using Deep Brain Stimulation. Neuron. 77, 406-424 (2013).
  8. DeLong, M., Wichmann, T. Deep brain stimulation for movement and other neurologic disorders. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1265, 1-8 (2012).
  9. Goodman, W. K., Alterman, R. L. Deep brain stimulation for intractable psychiatric disorders. Ann. Rev. Med. 63, 511-524 (2012).
  10. Pizzolato, G., Mandat, T. Deep brain stimulation for movement disorders. Front. Integr. Neurosci. 6, 2 (2012).
  11. Logothetis, N. K. What we can do and what we cannot do with fMRI. Nature. 453, 869-878 (2008).
  12. Li, Q., et al. Therapeutic deep brain stimulation in Parkinsonian rats directly influences motor cortex. Neuron. 76, 1030-1041 (2012).
  13. Pan, W., Thompson, G., Magnuson, M., Majeed, W., Jaeger, D., Keilholz, S. . Simultaneous fMRI and Electrophysiology in the Rodent. (42), (2010).
  14. Huttunen, J. K., Grohn, O., Penttonen, M. Coupling between simultaneously recorded BOLD response and neuronal activity in the rat somatosensory cortex. NeuroImage. 39, 775-785 (2008).
  15. Logothetis, N. K., Pauls, J., Augath, M., Trinath, T., Oeltermann, A. Neurophysiological investigation of the basis of the fMRI signal. Nature. 412, 150-157 (2001).
  16. Shih, Y. Y., et al. A new scenario for negative functional magnetic resonance imaging signals: endogenous neurotransmission. J. Neurosci. 29, 3036-3044 (2009).
  17. Shih, Y. Y., Wey, H. Y., De La Garza, B. H., Duong, T. Q. Striatal and cortical BOLD, blood flow, blood volume, oxygen consumption, and glucose consumption changes in noxious forepaw electrical stimulation. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 832-841 (2011).
  18. Shmuel, A., Augath, M., Oeltermann, A., Logothetis, N. K. Negative functional MRI response correlates with decreases in neuronal activity in monkey visual area V1. Nat. Neurosci. 9, 569-577 (2006).
  19. Schridde, U., et al. Negative BOLD with large increases in neuronal activity. Cereb. Cortex. 18, 1814-1827 (2008).
  20. Shmuel, A., et al. Sustained negative BOLD, blood flow and oxygen consumption response and its coupling to the positive response in the human brain. Neuron. 36, 1195-1210 (2002).
  21. Harel, N., Lee, S. -. P., Nagaoka, T., Kim, D. -. S., Kim, S. -. G. Origin of negative blood oxygenation level–dependent fMRI signals. J. Cereb. Blood Flow Metab. 22, 908-917 (2002).
  22. Lee, J. H., et al. Global and local fMRI signals driven by neurons defined optogenetically by type and wiring. Nature. 465, 788-792 (2010).
  23. Carmichael, D. W., et al. Functional MRI with active, fully implanted, deep brain stimulation systems: safety and experimental confounds. NeuroImage. 37, 508-517 (2007).
  24. Tagliati, M., et al. Safety of MRI in patients with implanted deep brain stimulation devices. NeuroImage. 47 Suppl 2, 53-57 (2009).

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Citazione di questo articolo
Younce, J. R., Albaugh, D. L., Shih, Y. I. Deep Brain Stimulation with Simultaneous fMRI in Rodents. J. Vis. Exp. (84), e51271, doi:10.3791/51271 (2014).

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