Здесь мы опишем способ выразить правильно сложенные и функциональные поверхностные антигены вируса гриппа, полученные из романа китайского вируса H7N9 в клетках насекомых. Этот метод может быть адаптирован, чтобы выразить эктодомены любых вирусных или клеточных поверхностных белков.
Система бакуловирусом выражение представляет собой мощный инструмент для экспрессии рекомбинантных белков. Здесь мы используем его для производства правильно сложенные и гликозилированного версии вируса гриппа А поверхностных гликопротеинов – гемагглютинина (HA) и нейраминидазы (NA). В качестве примера, мы выбрали HA и NA белки, выраженные нового вируса H7N9, который недавно появился в Китае. Однако протокол может быть легко адаптирована для HA и NA белков, выраженных любой другой гриппа А и вируса B штаммов. Рекомбинантный HA (Rha) и NA (РНК) белки являются важными реагенты для иммунологических анализов, таких как ELISPOT и ИФА, и также находятся в широком использовании для стандартизации вакцины, открытия антител, выделения и характеристики. Кроме того, рекомбинантные молекулы NA могут быть использованы для скрининга низкомолекулярные ингибиторы и могут быть использованы для определения характеристик ферментативной функции НС, а также его чувствительности к противовирусных препаратов. Рекомбинантные белки HA также байнг испытания в экспериментальных вакцин на животных моделях, и вакцина на основе рекомбинантного ГК недавно получил лицензию FDA для использования в организме человека. Способ описан здесь производить эти молекулы прямо вперед и может облегчить исследование в лабораториях гриппа, так как позволяет для производства больших количеств белков быстро и по низкой цене. Хотя здесь мы сосредоточены на вирус гриппа поверхностных гликопротеинов, этот способ также может быть использован для производства других вирусных и клеточных поверхностных белков.
В первой реакции на появление в последнее время романа H7N9 гриппа штамма вируса в Китае, мы приобрели плазмиды, несущие геномные последовательности для гемагглютинина (HA) и нейраминидазы (NA) гены первых двух изолятов. Используя эти плазмиды, мы смогли быстро построить бакуловирусные векторов экспрессии для получения рекомбинантного HA и NA в клетках насекомых. Эта система выражение хорошо известна в нашей лаборатории и доказал решающее значение для многих наших текущих исследовательских проектов 1-8. Клетки насекомых способны правильно сложить и посттрансляционно изменить сложные белки. Эти модификации включают N-гликозилирования, что очень важно для многих вирусных гликопротеинов. Таким образом, неудивительно, что система бакуловирус достаточно создана для выражения вируса гриппа поверхностные антигены. На самом деле, многие из кристаллических структур ГК и НС были решены с использованием клеток насекомых, выразил белков 9-11. Еще одно преимуществоСистема заключается в его надежных высоким содержанием белка выходом до 30 мг культуре клеток HA / л (на основе нашего опыта работы с более чем 50 различных белков HA) – следствие вирус-инфицирования в выражении от сильного промотора полиэдрина.
Удаление трансмембранным и endodomain белков HA и NA позволяет для экспрессии секретируемых, растворимых версий белков и, таким образом, значительно облегчает процесс очистки. Кроме того, эти эктодомены которые помечены гексагистидиновую и, следовательно, может быть очищен с помощью аффинной хроматографии с использованием Ni 2 +-смолы. Трансмембранные домены ГК и NA белков способствуют гомотримера и формирование гомотетрамера соответственно. Для того чтобы сохранить эти oligomerizations, мы добавляем С-концевой домен тримеризации для HA-и N-терминал тетрамеризации домена НС строит (рис. 1). Мы убедительно показали, что такая область тримеризация стабилизирует функциональное, последстrved конформационные эпитопы на стебель-домена ГК 1. Правильный тетрамеризации НС также может способствовать правильной укладки и функцию NA 10. Последовательности и векторы baculo-передачи, несущие тримеризации или тетрамеризации домены могут быть запрошены у авторов или из других лабораторий в области, 9,10,12.
Другим важным вопросом для экспрессии секретируемых белков в клетках насекомых является выбор правильного клеточной линии. В то время как Spodoptera frugiperda получены Sf9 клетки поддерживают бакуловирусной репликацию очень хорошо, и, как правило, используется для вируса спасательных и распространения, они обладают ограниченными возможностями для выделять большое количество белка. Trichoplusia Ni получены БТИ-TN-5B1-4 клеток (широко известный как High Five) имеют более высокую способность секреции и клеточная линия выбора для экспрессии в данном протоколе 13,14. Кроме того, было бы полезно, чтобы уменьшить или даже устранить фетальной бычьей сыворотки (FBS) от выражения культур. Поэтому мы используем средства массовой информации с уменьшенным (3%) содержанием FBS для выращивания рабочие запасы вируса, и мы выполняем экспрессию белка в сыворотке крови свободных СМИ.
Рекомбинантные HA и NA белки используются для многих иммунологических методов. Пожалуй, наиболее распространенным является в ИФА для измерения преобразование сыворотки после вакцинации у людей или животных 4,6,7,15. ГК и НАН также используются в ELISPOT анализов как оба стимулирующих молекул и реагентов обнаружения для антител секреции клеток 16. Их использование в качестве молекулярных приманки позволяет конкретно сортировки для plasmablasts или других типов В-клеток, которые затем могут быть использованы для выделения (терапевтических) моноклональные антитела (моноклональные антитела). Рекомбинантные HA и NA молекулы в дальнейшем используются в характеристике этих МКА 8. Другие примеры включают исследования устойчивости рН или рецептора специфику выразил различными изолятов вируса, или количественно оценки конкретных ферментативных NAдеятельность или устойчивость к ингибиторам. Кроме того, рекомбинантный очищенный HA может быть использован, чтобы стандартизировать содержание НА вируса гриппа инактивированных вакцин.
Важно отметить, что Rha (и в определенной степени NA) вакцин-кандидатов в настоящее время испытываются на животных моделях и клинических испытаниях на людях с одним кандидатом вакцин, лицензию FDA в 2013 году 2,17-19. Преимущество этих новых вакцин является то, что, в связи с рекомбинантной природе этих белков, трудоемкий процесс генерирования высоких роста реассортантных вирусов можно было бы избежать. Возможно, еще более актуальным является то, что их доходность HA высока и воспроизводится от штамма к штамму. Кроме того, поскольку эти вакцины производятся в системе без яиц, они не содержат белковые примеси, которые создают проблемы для лиц, страдающих аллергией яйцо.
Здесь мы выбрали, чтобы выразить белков HA и NA от двух изолятов романа китайской H7N9 вируса гриппа, A / Аньui/1/13 и A/Shanghai/1/13 20,21. Эти примеры своевременных, но описанный протокол может быть использован для экспрессии любого гриппа А и B НА или NA белков и может быть адаптирована, чтобы выразить любые другие секретируемые вирусных или клеточных белков. Тример или тетрамерные белки трансмембранные могут быть клонированы в кассетах экспрессии, используемых для НА и NA, соответственно. Тем не менее, наиболее растворимые секретируемые клеточные белки, как интерфероны, например, не нужен дополнительный домен для стабилизации и может быть выражена исключительно с С-концевой гексагистидиновой меткой.
Хотя выражение вируса гриппа HA и NA белков в клетках насекомых с использованием бакуловирусной системы экспрессии, как правило, прямо вперед, есть несколько важных моментов, которые необходимо учитывать. Важно, как отмечалось во введении, что эктодомены ГК и НС выражены в слиянии с трим?…
The authors have nothing to disclose.
Мы хотели бы поблагодарить Patrick C. Wilson для моноклональных антител CR9114. Мы также благодарим Дженнифер Debeauchamp и Ричард Webby для оригинальных плазмид A/Anhui/1/13. Частичная поддержка для этой работы была предоставлена Национальным институтом аллергии и инфекционных заболеваний, финансируемый Проект Программа грантов AI097092-01A1 и CEIRS (Центры передового опыта по борьбе с гриппом исследований и надзору, HHSN26620070010C). ФК была поддержана общение Эрвин Шредингер (J 3232) от Австрийским научным фондом (FWF).
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Bac-to-Bac Baculovirus expression system | Invitrogen | 10359-016 | Follow manufacturer's instructions |
TNM-FH insect medium | Gemini Bioproducts | 600-311 | |
HyClone SFX-Insect | Thermo Fisher | SH30278.02 | |
Cellfectin II Reagent | Invitrogen | P/N58760 | |
Pluronic F68 | Sigma | 1000702664 | |
SimplyBlue SafeStain | Invitrogen | LC6060 | |
Ni-NTA Agarose | Qiagen | 1018240 | |
Amicon Ultra Centrigual filters Ultracel 30K | Millipore | UFC902024 | |
Pen Strep | Gibco | 15140-122 | |
Polypropylene Columns (5 ml) | Qiagen | 34964 | |
Max efficiency DH10Bac bacteria | Invitrogen | 10361-012 | |
PureLink HiPure Plasmid Filter Midiprep Kit | Invitrogen | K210015 | |
Imidazole | Sigma-Aldrich | I2399-100G | for elution and wash buffers |
Sf9 cells | ATCC | CRL-1711 | |
High Five cells | Invitrogen | B85502 |