Summary

에서 계란을 사용하여<em> Schistosoma mansoni</em> 등<em> 생체내에서</em기생충 유도된 폐 염증의> 모델

Published: June 05, 2012
doi:

Summary

Schistosoma mansoni 달걀은 T 도우미 유형 2 (Th2) 면역 반응, 기생충 감염의 특징, 천식과 알레르기 염증의 강력한 stimulators 있습니다. 이 프로토콜은 S.을 활용 CD4 Th2 시토킨 유도된 염증성 계란 주위에 폐 granuloma 형성을 특징으로 폐에 반응, eosinophilia와 대식 세포 대안 활성화를 생성하는 mansoni 계란 분사.

Abstract

Schistosoma의 기생충은 전세계 약 2억명 1 감염 혈액 flukes입니다. Schistosoma, 간 섬유증 및 splenomegaly 포함한 심각한 병리,과 만성 감염에 오히려 기생충 자체가 2보다 기생충 달걀에 대한 면역 반응 때문에 발생합니다. 기생충 알은 IL-4의 생산, IL-5 및 IL-13, macrophages의 대안 활성화 및 호산구의 채용 특징으로 Th2 반응을 유도. 여기서는 기생충 특정 폐에 Th2 시토킨 반응 및 배수 림프절, 계란을 둘러싼 폐 granulomas의 형성과기도 염증을 검사하기위한 모델로 Schistosoma mansoni 달걀의 주입을 설명합니다.

intraperitoneal sensitization과 정맥 도전, S. 따라 mansoni 달걀은 그들이 폐 실질 조직 내에 갇혀있다 폐의 동맥을 통해 폐로 이송된다lymphocytes, 호산구 및 또는 활성화 macrophages 3-6로 구성되어 granulomas에 의해. 야생마 – 폐포 공간에서 granuloma 형성, 염증과 연관된, 배수 림프절과 CD4의 확장은 T 세포 활성을 관찰할 수있다. 여기서 우리가 세부 사항, 감염된 간은 (7에서 변경)에서 Schistosoma mansoni 달걀을 분리 쥐를 sensitizing과 도전, 그리고 분석을위한 기관 (야생마 – 폐포 세척 (BAL), 폐 및 배수 림프절)를 복구하는 프로토콜. 우리는 또한 대표 histologic 및 추가 immunologic 분석을위한 immunologic 데이터 및 제안을 포함합니다.

전반적으로,이 방법은 생체내 모델에서이 기생충 감염, fibrotic 질환, 알레르기 염증과 천식을 포함한 Th2 염증 질환의 연구에 광범위하게 적용하는 폐 안에 기생충 유발 immunologic 응답을 조사합니다. 일반의 연구에 대해이 모델의 장점폐에서 전자이 염증은 폐에 유력한 Th2 염증 반응의 재현성 및 배수 림프절, 계란을 둘러싼 granulomas의 histologic 심사에 의한 염증의 평가의 용이성, 그리고 기생충의 장기 보관의 가능성을 포함 계란.

Protocol

1. Schistosoma mansoni 달걀을 정화 Schistosoma 수명주기 8 전염성 무대 schistosome cercariae와 스위스 웹스터 쥐를 감염. 양자 택일로, NIAID Schistosomiasis 리소스 센터 (에서 schistosome에 감염된 생쥐를 얻을 http://www.schisto-resource.org/~~V ). 그 시간을 포인트로, 계란은 간장에 존재하며 아래 설명에 따라 (그림을 참조하십시오. 1)</stro…

Discussion

여기에 2를 입력 폐 염증을 유발해서 Schistosoma mansoni 달걀을 고용 모델이 설명되어 있습니다. 이 모델의 특징 특징은 강력한 Th2 면역 반응,기도 염증과 폐의 granuloma 형성을 포함합니다. 이러한 매개 변수가 CD4 Th2 세포 반응 11 의존 때문에, 이것은 Th2 세포 반응에 대한 단백질의 특정 또는 혈통 고유의 삭제 효과를 조사하기위한 유용한 모델입니다. 여기에 설치 했어요는 항원에 특정?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 건강 (NIH) AI091759과 Crohn의와 미국의 윌리엄과 셀비 모델이란 가족 재단 연구 수상 (MN까지)의 대장염 재단의 국립 연구소에 의해 지원되었다. Schistosome에 감염된 생쥐는 NIAID Schistosome 리소스 센터 (NIAID 계약 N01 A130026)가 제공되었다.

Materials

Reagent Size/Description Company Catalog #
Collagenase/Dispase 500 mg Roche Applied Science 11 097 113 001
Diff Quik Hema 3 Stain Pack Fisher Scientific Co. LLC 122-911
DMEM Liquid Gibco 11965
Falcon 50mL Pack Falcon 352070
Intramedic PE Tubing 0.58 mm Becton Dickinson and Co. 427410
Isoflurane 250 mL Abbot Animal Health 52600405
Ketamine 100 mg/mL Fort Dodge, Animal Health N/A
Mannose receptor antibody Biotin AbD Serotec MCA2235B
Metallic Strainer Standard kitchen strainer Target Laurentiis
Paraformaldehyde 16% Electron Microsc. Sciences 15710
Penicillin/ Streptomycin 100x Gibco 15070
Percoll 1 Liter GE Healthcare Biosciences 17 0891 01
RELMα antibody 50 μg Peprotech 500-P214
Surgical Thread 2.0 USP 100 yds Surgical Specialties Corp. SP118
Syringe Needle 23g, 3/4 inch BD Vacutainer Lab. Med. 305143
USA Standard Testing Sieve 150 μm, 0.0059″ W.S. Tyler, Inc. ASTME-11, Spec. No. 100
Xylazine 20 mg/mL Butler N/A

Riferimenti

  1. World Health Organization. Prevention and control of schistosomiasis and soil-transmitted helminthiasis: report of a WHO expert committee. WHO Technical Report Series 912. , (2002).
  2. Pearce, E. J., MacDonald, A. S. The immunobiology of schistosomiasis. Nat. Rev. Immunol. 2, 499-511 (2002).
  3. Sandler, N. G. Global gene expression profiles during acute pathogen-induced pulmonary inflammation reveal divergent roles for Th1 and th2 responses in tissue repair. J. Immunol. 171, 3655-3667 (2003).
  4. Perrigoue, J. G. IL-31-IL-31R interactions negatively regulate type 2 inflammation in the lung. J. Exp. Med. 204, 481-487 (2007).
  5. Sandor, M., Weinstock, J. V., Wynn, T. A. Granulomas in schistosome and mycobacterial infections: a model of local immune responses. Trends Immunol. 24, 44-52 (2003).
  6. Nair, M. G. Alternatively activated macrophage-derived RELM-{alpha} is a negative regulator of type 2 inflammation in the lung. J. Exp. Med. 206, 937-952 (2009).
  7. Dalton, J. P. A method for the isolation of schistosome eggs and miracidia free of contaminating host tissues. Parasitology. 115, 29-32 (1997).
  8. Lewis, F. A. Large-scale laboratory maintenance of Schistosoma mansoni, with observations on three schistosome/snail host combinations. J. Parasitol. 72, 813-829 (1986).
  9. Tilney, N. L. Patterns of lymphatic drainage in the adult laboratory rat. J. Anat. 109 (Pt. 3), 369-383 (1971).
  10. Lewis, F., Coligan, J. E. Schistosomiasis. Current protocols in immunology. Chapter 19, Unit 19 (2001).
  11. Kaplan, M. H. Th2 cells are required for the Schistosoma mansoni egg-induced granulomatous response. J. Immunol. 160, 1850-1856 (1998).
  12. Wynn, T. A. Fibrotic disease and the T(H)1/T(H)2 paradigm. Nat. Rev. Immunol. 4, 583-594 (2004).
  13. Cheever, A. W. Variation of hepatic fibrosis and granuloma size among mouse strains infected with Schistosoma mansoni. Am. J. Trop. Med. Hyg. 37, 85-97 (1987).

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Citazione di questo articolo
Joyce, K. L., Morgan, W., Greenberg, R., Nair, M. G. Using Eggs from Schistosoma mansoni as an In vivo Model of Helminth-induced Lung Inflammation. J. Vis. Exp. (64), e3905, doi:10.3791/3905 (2012).

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