GFP的表达和使用的大里基于图像流式细胞仪的可行性评估

1。大里可行性套件 – 死细胞红试剂染色细胞此过程开始与U2OS细胞（美国典型培养物保藏）已转用CellLight核- GFP * BacMam 2.0 *. （注：细胞也可以降速，并在培养基或PBS重悬）。 与PI染色死细胞，100μL的细胞转移到一个新的离心管。需要注意的是1 × 10 5 1 × 10 7细胞/ ml的浓度是这个实验的建议，虽然浓度不准确。 下一步，染色的死细胞，加入1μLPI为基础的大里死细胞红试剂。涡简单地混合。孵育室温在黑暗时间为1-5分钟的大里死细胞红试剂和细胞混合物。 孵化后，立即进行的大里基于图像流式细胞仪分析样品。 2。使用执行细胞活性测定大里图像基于流式细胞仪大里流式细胞仪使用的一次性塑料大里细胞分析幻灯片，特别适合到流式细胞仪，可容纳在两个单独的封闭商会（A和B）25μL样品。处理幻灯片时，一定要始终坚持由双方。 慢慢进入半月亮形的样品装卸区要加载的幻灯片，移液器25μL的样品，照顾，以避免形成气泡或回飞溅。不要超过或低于填写。 在这里，控制细胞（未染色，非转）装在室A和染绿色荧光蛋白表达细胞室B.加载控制样本将有助于分析数据时确定的自体荧光的水平。 要执行一个可行性测定的流式细胞仪的主屏幕上触摸GFP / RFP。检测选项就会出现在右侧。选择绿色荧光蛋白“+”生存能力“。 下一步，名称的样本序列， 立即按名称 </strong>。然后，使用触摸屏，键入样品系列的名称，然后按保存。 （注： 选择名称 ，自动分配每个样品系列的日期和时间的名称。 ） 命名后的样品，大里流式细胞仪将自动进入测量屏幕。按测量屏幕的右下角一半“ 背景 ”选项卡。 接下来，与对照样本（一）面临从流式细胞仪，插入幻灯片在装货港，直到它停止。不要使用武力。 在背景屏幕，触摸按插入新的未染色细胞控制。幻灯片将自动被拉进流式细胞仪和一个细胞的实时图像将显示在屏幕上。 使用对焦旋钮，把适当的平面细胞。细胞应均匀黑暗与每一个细胞周围的耀眼光环（图1左）。 细胞s可能会undercounted时的背景和细胞边缘之间的过渡是模糊的，使细胞界限没有明确界定（图1，中心）。细胞可能overcounted当他们有明亮的中心和黑暗的周长（图1右）。 为了更好地观察细胞的人口，同时重点，幻灯片的红色变焦指示灯按钮为4X或16X 。 一旦细胞已成为关注的焦点带来的， 触摸按运行未染色细胞控制措施的背景荧光。 流式细胞仪将自动采集和分析样品的图像。这大约需要1分钟默认（9图像）模式图像捕获和分析。 每个视野的缩略图显示，因为它们是捕获和进度条提供了一个持续的更新。图像采集完成后，流式细胞仪自动弹出的幻灯片，拍摄的图像进行分析，并提供数据。 存储的数据将显示在下拉菜单的“ 背景 ”选项卡上流式细胞仪下降。背景对照样品将被分配名称相同的实验，将在下拉菜单中进口。注：如果是无法运行的背景下控制，流式细胞仪会自动分配一个荧光阈值。这可以手动更改后执行检测。 运行PI染色转样本，从流式细胞仪中删除幻灯片，翻转它重新插入转样品面临从仪器。 按样本选项卡，然后触摸按插入新样品 。当图像出现在屏幕上，使用图像调整旋钮，使细胞像以前那样成为关注的焦点。然后触摸按运行示例 。 图像采集完成后，出现在样品标签和流式细胞仪自动分析数据盟友退出幻灯片。 妥善处理大里细胞作为生物危险废物分析幻灯片。大里细胞分析幻灯片不能重复使用。 3。设置阈值和盖茨一旦样品运行，阈值现在可以适用于家样本在一个特定的细胞群。在这里，我们将调整阈值来确定的活细胞和死细胞百分比GFP的细胞。 根据样品标签，表达GFP的细胞，活的和死的细胞表达绿色荧光蛋白，总的生存能力，平均细胞大小，计算细胞数量，细胞浓度的数量和百 ​​分比显示。 此外，直方图显示细胞的大小，绿色荧光和红色荧光（PI）的图显示在屏幕的底部。 若要设置单元格的大小门，触摸细胞大小的缩略图，打开细胞大小的直方图。虽然培养的细胞中很少有Debris，其他样品可能含有大于或小于细胞的碎片。 为了排除这种碎片，滑动的滑块上的蓝色按钮，排除大型和小型的事件。然后，触摸应用的数据重新分析和更新的结果。 接下来，添加GFP荧光分析，触摸GFP直方图缩略图来打开它。滑动蓝色栏设置的阈值，只是权利的最暗的高峰，为指导的对照样品。 这使得分析，包括GFP阳性细胞，但不包括autofluorescent细胞。自体荧光经常观察到细胞内生物分子很高兴。 触摸应用 ，以确认并返回到前一个画面。 样品标签下所显示的数据，现在应该反映两个荧光通道的大门，设置阈值。 下一步，要分开PI染色细胞的自体荧光，按T他PI直方图缩略图打开PI的直方图。 同样，控制样品峰将显示为一个直方图的灰色高峰。红峰是样品的荧光。背景荧光显示流式细胞仪0 RFU值最接近的一个高峰。 为了消除在P​​I通道的背景荧光，移动滑块上的蓝色按钮来调整阈值排除的高峰，代表背景荧光，从控制样本作为参考使用灰色的高峰。触摸应用 ，以确认并返回到前一个画面。 接下来，直观地确认每一个细胞都正确分配，按缩放 “选项卡中的图像的缩略图中选择捕获领域的审查，然后按“图层”选项卡。 接下来，按GFP或PI按钮，以显示拍摄的图像通过特定渠道。再次按下相同的按钮，删除显示层;或叠加层，触摸多层按钮。 要确定如何通过计算一个特定的通道，触摸圈的细胞。通过只有亮场的通道，不表达荧光将盘旋在蓝色计数细胞。这表明，特定的细胞是活的（即有价证券负）。 将出现在细胞表达绿色荧光蛋白GFP的通道，将在绿色盘旋。死细胞与死细胞红染，将在PI通道，将在红色圆圈。 ，在红色和绿色通道的计数细胞将黄色盘旋，这表明细胞表达GFP，但也与PI染色，因此是死的。 偶尔，黑色圆圈会出现在屏幕上，这些都是已经确定的对象，但已经从基于细胞大小的分析排除。 继续到FINE调整使用刚才所描述的，用适当的颜色盘旋，直到每个细胞表达荧光的步骤上的荧光直方图的阈值。 所有分析参数自动保存数据“选项卡下。大里流式细胞仪可以存储大约500个样品运行的数据文件。 在数据选项卡中存储的每个文件再分析。通过选择“ 数据 ”选项卡文件将被打开，所有直方图和层变得活跃。 存档数据，并生成报告，在流式细胞仪中存储的数据可能被转移到一台电脑使用USB驱动器。 4。代表性的成果： 大里图片基于流式细胞仪是用来测量荧光蛋白在细胞中的表达水平与核针对性GFP BacMam 2.0表达式构造转。四个有代表性的细胞类型，转（U2OS，293MSR，HEKn和CHO – S）。对于这些细胞株，表达GFP的细胞数据报道大里流式细胞仪和流式细胞仪分析同一样品的数据相比，。此外，细胞被染成红色的死细胞试剂的使用大里可行性套件上大里流式细胞仪和流式细胞仪，以确定死者的细胞群。 图2中的图形表示显示的不同的细胞类型，表达GFP的总人口的百分之。这些数据表明，大里流式细胞仪产生的数据具有可比性，以流式细胞仪产生的数据。 图1。细胞的重点应妥善分析前 。适当的分析（建议1 × 10 5到1 × 10 7细胞）与细胞浓度大里细胞分析幻灯片（左）在重点细胞均匀ð方舟整个细胞与周围每个细胞（中心）细胞的耀眼光环，可能undercounted时之间的背景和细胞边缘的过渡是模糊和细胞有不确定的边界（右）细胞也许overcounted当他们有明亮中心和黑暗的周长。 图2。从大里基于图像流式细胞仪荧光蛋白表达数据与使用流式细胞仪获得一个4在活细胞不同的细胞系的结果计算GFP表达侧方比较。