在体内的双基体生物光学成像

1。稳定CMV启动子驱动的Renilla荧光素酶的表达转染和一个稳定的无性系种群的选择是首选的方法为本海肾荧光素酶报告基因的表达。这种方法获得更加一致和统一的海肾荧光素酶的表达，随后推出的额外的辅助记者的结构（ 例如 ，萤火虫荧光素酶或荧光蛋白）。 转染编码海肾荧光素酶的表达载体，如质粒pcDNA3.1-温湿度计或另一个质粒转染的可选择标记感兴趣的恶性细胞。 转染后，将下一个优化的抗生素浓度的转染几天周，以便隔离的单个菌落，它们随后分离单独和传代培养。 选择≥10个人Renilla荧光素酶表达的殖民地监测的海肾表达的程度。 <li> Renilla荧光素酶高表达量的殖民地随后进行功能性分析，以确保他们的父母（一）病理生理特性的保留，及（ii），海肾表达式的值不偏离或随时间而改变。这些措施是绝对必要的，以避免孤立和研究克隆变种/离经叛道，并验证适当的整合到基因组的Renilla的结构。 一旦获得稳定的转染子中分离和验证，可以删除的选择压力，并放心，海肾荧光素酶的表达将在延长的时间的长度，无论是在体外和体内的保持不变。 2。诱导型启动子驱动的萤火虫荧光素酶的表达，筛选和功能验证成pGL4荧光素酶报告质粒转染的选择标记（ 例如 ，购买亚克隆启动子的兴趣霉素），选择稳定的海肾表达（ 例如 ，潮霉素）是不同的。 恶性细胞转染的步骤我，随后选择一个稳定的的多克隆人口的萤火虫荧光素酶表达的细胞。由于报告基因整合到基因组中的位置可以引起错误的表达和调控的影响，我们强烈建议，而不是选择为的多克隆人口的萤火虫荧光素酶表达细胞无性系种群，以确保（i）报告基因的表达更准确地反映在亲代细胞中的内源基因，及（ii）对基因表达的平均积分效应和减少跨异构细胞种群。 设计，以稳定地同时表达海肾和萤火虫荧光素酶的恶性细胞统称为双的生物发光记者细胞，或DBR细胞。 使用传统的<em>的体外细胞为基础的荧光素酶报告基因检测，验证，DBR细胞调节萤火虫荧光素酶的表达，无论是正面或负面的，一致的，用这些载体转染的亲本细胞中观察到的方式。同样，验证CMV启动子驱动表达的海肾受各种细胞刺激或处理条件。 这样做，文化DBR和亲代细胞在24孔板中，并与原来的CMV-海肾和启动子-萤火虫其后瞬时共转染亲代细胞构造用于生成DBR细胞。 随后，治疗DBR和转染的亲本细胞被称为调节启动子的兴趣，随后定量使用Promega公司的双荧光素酶检测试剂盒的萤火虫和海肾发光的因素或药物制剂。 3。 ，建立4T1原发性乳腺肿瘤转移性乳腺癌细胞，4T1我们重新发现缺乏外膜啮齿动物病原体的设计，稳定地表达了CMV启动子驱动的海肾荧光素酶（转染CMV-Renilla荧光素酶HYGRO）和SBE-驱动的萤火虫荧光素酶（pGL4.2-SBE-萤火虫荧光素酶PURO）如上所述。这些乳腺癌细胞的查询结果自发转移，主要在肺部形成原位植入。 不应该被允许4T1细胞达到汇合在他们的传统的2 -维组织培养系统中的传播，和他们应传代他们在体内接种的前一天。 4T1细胞，通过胰蛋白酶消化分离，充分洗涤后，在生长培养基中，并在PBS中稀释至2×10 5个细胞/ ml的浓度，并立即在冰上储存。 应该是带有感应剂量的3％异氟醚和剂量为1％异氟烷维持麻醉下在麻醉的雌性Balb / C小鼠（4-6周龄）。准备注射部位的擦拭，70％的异丙醇。使用钳子，轻轻抓住并提起第4腹股沟的乳垫。小心地将27.5号针头斜面的一面朝上，并直接注入乳腺脂肪垫下的乳头，特别注意不要推针进入腹腔。松开密封压盖和慢慢注入50微升的细胞悬浮液（1×10 4个细胞）到乳腺脂肪垫。 4。最初的双发光成像后立即嫁接到乳腺脂肪垫的4T1细胞，而小鼠仍麻醉，成横向的尾静脉注入100μl的RediJect腔肠素。这是最适底物浓度的供应商和耐受性的动物。 立即将鼠标异氟醚鼻锥内的IVIS 200成像系统，获得一个0.5分钟的荧光图像。注入和图像采集之间的效率是非常重要的，因为信号Renilla荧光素酶急剧下降约30秒后注射。将鼠标到它的笼子里，让它恢复≥1小时，以确保任何残留Renilla荧光素酶信号已经消失，鼠标已经完全从麻醉中恢复过来。 管理通过 IP注射150毫克/公斤，D-荧光素钾盐，并等待5分钟。这是最佳的浓度，D-荧光素，它提供了一个稳定的发光信号为5-15分钟后，注入试验动物。麻醉在IVIS-200鼠标采用isoflourane和替换，照顾的动物的位置在一个非常相似的位置，相对于原来的海肾收购。整体强度本萤火虫信号的依赖的启动子的活性的利益，因此，可视化萤火虫荧光素酶的活性可能会延长收购时间。 使用的IVIS生活图片软件设置为“光子”模式，建立有价值ES Renilla的和萤​​火虫收购的作为一种手段来建立基线的相对发光率（RLR）。 5。纵向发光成像 4T1细胞是高度侵略性的，例如，1×10 4个细胞接种通常会导致扪肿瘤形成，1星期内，并在4-5周的动物的杀伤力。 4T1肿瘤有一种内在的倾向溃烂第4周。溃疡肿瘤的生长和维持的可能需要单独的IACUC批准。本文所示的4T1肿瘤的研究已批准的IA​​CUC在凯斯西储大学。 如上所述，被注入小鼠应每周RediJect腔肠素监测一般肿瘤的生长和转移，以及与D-荧光素，肿瘤的发展的各个阶段期间监测路径特定的信令。小心，以确保每次Renilla荧光素酶信号已完全消退之前收购萤火虫荧光素酶信号。 由于4T1肿瘤发展和进步，海肾荧光素酶的收购应被归一化到在作为一种手段正常化和跟踪初级肿瘤生长的肿瘤细胞接种的时间的测量值的初始海肾。更重要的是，计算RLR值随着时间的推移，将建立单独信令系统相对于肿瘤的生长和发展的时间调节。 在3-4周后，的4T1细胞移植到乳腺脂肪垫明显肺转移明显。比较计算原发肿瘤的肺RLR值与建立个人相对于肿瘤的生长和转移的信号系统调节的空间。 6。双生物发光成像的两个独特的细胞类型中的一种动物工程师1乳腺癌细胞系中稳定表达的CMV启动子驱动的海肾荧光素酶作为如上所述。重复此工程过程使用CMV启动子驱动的第二不同的乳腺癌细胞株上的萤火虫荧光素酶。 在此，我们混合Renilla荧光素酶表达的4T1细胞的转移性和同源的萤火虫荧光素酶的表达4T07同行10，11。这些混合的乳腺癌细胞群的不同比例的如上述那样的乳腺脂肪垫随后注入。 立即获得萤火虫和海肾荧光素酶的图像，到建立初始RLRs，代表一个给定的接种细胞混合物。 纵向双生物发光成像将可视化和跟踪变化的原发肿瘤内的细胞的组合物，以及每个乳腺癌衍生物相对于肿瘤的生长和发展的时空转移的。 可选地，个体乳腺癌细胞种群可以在小鼠接种到不同的位置（ 即左，右腹部乳腺脂肪垫）评估的系统性影响这两个群体表现出了彼此在各阶段的肿瘤生长和转移的。 7。代表性的成果： 双生物发光成像的主要优势在于一个事实，即每幅图像是内部一致的控制，如持续信号来自原发肿瘤的功能作为一个重要的指标来衡量整体成功或失败的每个海肾和萤火虫收购。这方面的摄像程序的过程中是特别重要的收购海肾荧光素酶的活性，其腔肠素的基板是高度敏感的氧化，在其标注自动致发光的结果。图1A示出了该副作用的一个例子，它立即表现作为非特异性的荧光信号是来自于肠道中，不是既定的原发肿瘤。通常情况下，这些非特异性的腔肠素信号transpirË下列失败静脉注射本海肾荧光素酶底物。然而，一旦健壮原发性肿瘤衍生的海肾信号已经获得（图1B中， 左图像 ），它是安全的，继续进行在捕获来自成像萤火虫荧光素酶（图1B中， 右面板 ），其D-荧光素的特定的信令通路测量IP注射后的基板是高度稳定的，并产生背景自动发光的可以忽略不计的水平。 图1。，获取海肾和萤火虫-衍生的生物发光图像计算体内 RLRs。（A）的一个例子的一个失败的IV注射腔肠素，导致非特异性信号从肠道。圈和PT表示原发肿瘤的大致位置。（B）鼠标一个成功的海肾收购轴承4T1原发肿瘤和pulmonary转移（左图脂肪垫的植入4周后）。的相应的萤火虫的收购使计算从原发肿瘤和肺转移的RLRs。（C）原发肿瘤和肺转移RLRs的图形表示从小鼠B组（n = 4）计算的。