פיתחנו מקיף, משוחדת הגנום כולו מסכי להבין גנים סמים גנים הסביבה אינטראקציות. שיטות סינון אלה אוספים מוטציה מוצגים.
בזכות ההתקדמות בטכנולוגיות הדור הבא ריצוף, יש לנו גישה רצפי גנום חדש כמעט מדי יום. קצב ההתקדמות אלה מואצת, מבטיח יותר עומק ורוחב. לאור ההתפתחויות הללו יוצא דופן, את הצורך, שיטות מהיר במקביל להגדיר פונקציה הגן הופך להיות יותר ויותר חשוב. אוספים של הגנום כולו מוטציות מחיקה של שמרים וא coli שימשו סוסי עבודה לאפיון פונקציונלי של תפקוד הגנים, אך גישה זו אינה מדרגית הנוכחית גנים המחיקה גישות דורשים כל אחד אלפי גנים אשר מהווים הגנום למחיקה ומאומת. רק לאחר השלמת עבודה זו נוכל לפתח תפוקה גבוהה phenotyping. במהלך העשור האחרון, במעבדה שלנו מעודן פורטפוליו של הגנום כולו תחרותי, מיניאטורי תפוקה גבוהה, מבחני שניתן לבצע במקביל. הקבלה זה אפשרי בשל הכללת "תגים" ה-DNA, או "ברקודים," לתוך כל מוטציה, עם הברקוד משמש פרוקסי עבור המוטציה, ואפשר למדוד את שפע ברקוד כדי להעריך את כושר מוטנטי. במחקר זה, אנו מבקשים למלא את הפער בין רצף הדנ"א ואוספים מוטציה המינימרקטים. לשם כך אנחנו מציגים transposon בשילוב שיבוש-barcoding גישה שנפתחת מבחני ברקוד במקביל רצף החדש, אך מאופיינת גרוע חיידקים. כדי להמחיש זאת אנו מציגים גישה חדשה קנדידה אלביקנס אוסף שיבוש המבורקדים לתאר איך הן microarray המבוסס על רצף הבא מבוססי פלטפורמות הדור ניתן להשתמש כדי לאסוף 10,000 – 1,000,000 גנים גנים סמים גן אינטראקציות בניסוי יחיד.
כאן, אנו התווה פרוטוקול, עם שינוי צנוע, יכול בקלות להיות מותאמים למגוון רחב של אוספים קיימים אוספים מוטציה המינימרקטים של מיקרואורגניזמים שונים על מנת ליצור קולקציות מוטציה מתויג. אנו מדגישים כי בעוד אנו מדווחים על פרוטוקול mutagenesis transposon מתוייגים עבור שמרים פתוגניים ג אלביקנס, פרוטוקול דומה מאוד יכול להתאים למגוון רחב של פטריות unicellular. השתנה, פרוטוקול זה עובד היטב בחיידקים 13, וכיום אוספים במשך מספר הגנום פטריות וחיידקים נוספים בבנייה. נכון לעכשיו, assay זה מספק מקיף בלבד, הגנום כולו מסך משוחדת עבור גנים קטנים אינטראקציות מולקולה. תכונה אחת משכנעת במיוחד של assay הוא לא ידע קודם של הגן או מולקולה קטנה נדרשת. למרות ההיקף והעוצמה של מבחני אלה, עבירות שלהם במעבדות אחרות כבר הפריע במקצת על ידי השקעות ההון הראשוני אינפורמטיקה וכלים לניתוח התוצאות. עם אימוץ של readout רצף הדור הבא בשילוב עם כלים חזקים לניתוח, אנו מצפים להגדיל את האימוץ שלהם.
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים רון דייויס, אדם Deutschbauer, ואת HIP HOP כולו במעבדה באוניברסיטת טורונטו לדיונים וייעוץ. CN הוא נתמך על ידי מענקים הלאומי לחקר הגנום האנושי (מספר גרנט HG000205), RO1 HG003317, CIHR MOP-84305, ו – סרטן האגודה הקנדית (# 020380). JO נתמך על ידי תוכנית סטנפורד הדרכה הגנום (מספר גרנט T32 HG00044 מן הלאומי לחקר הגנום האנושי) לבין המכון הלאומי לבריאות (מספר גרנט P01 GH000205). ג"ג נתמך על ידי RO1 NHGRI HG003317 והחברה הקנדית למלחמה בסרטן, גרנט # 020380, TD ואת סידור דונלי המרכז נתמך בחלקו על ידי מענקי הקרן הקנדית חדשנות לד"ר. ברנדה אנדרוז וג'ק גרינבלט. AMS נתמך על ידי האוניברסיטה של אחוות פתח טורונטו.
Antibiotics | Vendor and catalogue numbers |
Carbenicillin | Sigma, part# C1613 |
Kanamycin | Sigma, part# K1876 |
spectinomycin | Sigma, part# S0692 |
Chloramphenicol | Sigma, part# C0378 |
DNA Clean-up and concentration kits | |
QIAprep Spin Miniprep Kit | Qiagen, part# 27106 |
HiSpeed Plasmid Maxi Kit | Qiagen, part# 12663 |
QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen, part# 28106 |
QIAquick Gel Extraction Kit | Qiagen, part# 28704 |
PCR and electrophoresis reagents | |
Taq DNA Polymerase (Mg-free) Buffer | New England Biolabs, part# M0320L |
Deoxynucleotide Solution Mix | New England Biolabs, part# N0447L |
25 mM MgCl2 | Sigma, part# 63036 |
Agarose, loading dye, and nucleic acid stain suitable for gel electrophoresis | Various |
10X TAE buffer | Sigma, part# T8280 |
1 Kb Plus DNA Ladder | Invitrogen, part# 10787026 |
YPD broth | |
10 g of yeast extract | Sigma, part# Y1625 |
20 g Bacto peptone | BD Biosciences, part# 211677 |
20 g of dextrose | Sigma, part# D9434 |
Labware | |
Multichannel pipettes (1000, 200, and 20 μL) | Various |
Disposable pipetting reservoirs | Various |
15 and 50 mL centrifuge tubes | Various |
96- and 384-Well Deep Well Plates | Axygen Scientific, part# P-2ML-SQ-C-S & P-384240SQCS |
96-well and 384-well PCR plates and seal film | Various |
Plate roller for sealing multi-well plates | Sigma, part# R1275 |
30°C and 37°C shaking incubators for growing bacterial and yeast on plates and in tubes | Various |
In vitro transposon mutagenesis | |
EZ-Tn5 Transposase | Epicentre Biotechnologies, part# TNP92110 |
High-throughput transformation | |
Seqprep 96 HT Plasmid Prep Kit | Edge Biosystems, part# 84359 |
polyethylene glycol, molecular weight 3350 | Various |
lithium acetate | Sigma, part# 517992 |
6-well plates, sterile | Corning, part# 3335 |
50 mg/mL uridine | Sigma, part# U3750 |
100X Tris-EDTA buffer solution | Sigma, part# T9285 |
1X TE/0.1M LiOAc | Various |
salmon testis DNA | Sigma, part# 1626 |
Growth of barcoded collections | |
48-well plates; if growing cultures in plates | Greiner, part# M9437 |
Adhesive plate seals | ABgene, part# AB-0580 |
200 mL culture flasks | Various |
Spectrophotometer capable of absorbance | Various |
Temperature-controlled shaker for 250 ml flasks or shaking spectrophotometer | Various |
Safe-Lock Microcentrifuge Tube, 2 mL | Eppendorf, part# 0030 120.094 |
Hybridization equipment | |
Hybridization Oven 640 | Affymetrix, part# 800138 |
GeneChip Fluidic Station 450 | Affymetrix, part# 00-0079 |
GeneArray Scanner 3000 | Affymetrix, part# 00-0212 |
Boiling water bath with floating rack | Various |
Hybridization consumables | |
Genflex Tag 16K Array v2 | Affymetrix, part# 511331 |
Denhardt’s Solution, 50X concentrate | Sigma, part# D2532 |
Streptavidin, R-phycoerythrin conjugate (SAPE) | Invitrogen, part# S866 |
Safe-Lock Microcentrifuge Tube, 0.5 mL | Eppendorf, part# 0030 123.301 |
Teeny Tough-Spots | Diversified Biotech, part# LTTM-1000 |
0.5 M EDTA | BioRad, part# 161-0729 |
10% Tween | Sigma, part# T2700 |
MES free acid monohydrate | Sigma, part# M5287 |
MES sodium salt | Sigma, part# M5057 |
5 M NaCl | Sigma, part# 71386 |
20X SSPE | Sigma, part# S2015 |
Molecular biology grade water | Sigma, part# W4502 |
Hybridization Primers | Various suppliers (standard desalting) |
Uptag | 5′ GATGTCCACGAGGTCTCT 3′ |
Buptagkanmx4 | 5′ biotin-GTCGACCTGCAGCGTACG 3′ |
Dntag | 5′ CGGTGTCGGTCTCGTAG 3′ |
Bdntagkanmx4 | 5′ biotin-GAAAACGAGCTCGAATTCATCG 3′ |
B213 | 5′ biotin-CTGAACGGTAGCATCTTGAC 3′ |
Uptagkanmx | 5′ GTCGACCTGCAGCGTACG 3′ |
Dntagkanmx | 5’GAAAACGAGCTCGAATTCATCG 3′ |
Uptagcomp | 5’AGAGACCTCGTGGACATC 3′ |
Dntagcomp | 5’CTACGAGACCGACACCG 3′ |
Upkancomp | 5’CGTACGCTGCAGGTCGAC 3′ |
Dnkancomp | 5’CGATGAATTCGAGCTCGTTTTC 3′ |
Sequencing Primers: Illumina Platform | Various suppliers |
UpTag Forward (100uM) | 5′ CAA GCA GAA GAC GGC ATA CGA GCT CTT CCG ATC T GAT GTC CAC GAG GTC TCT 3′ |
UpTag Reverse (100uM) | 5′ AAT GAT ACG GCG ACC ACC GAC ACT CTT TCC CTA CAC GAC GCT CTT CCG ATC T NNNNN GTC GAC CTG CAG CGT ACG 3′ |
DownTag Forward (100uM) | 5′ CAA GCA GAA GAC GGC ATA CGA GCT CTT CCG ATC T GAA AAC GAG CTC GAA TTC ATC G 3′ |
DownTag Reverse (100uM) | 5′ AAT GAT ACG GCG ACC ACC GAC ACT CTT TCC CTA CAC GAC GCT CTT CCG ATC T NNNNN CGG TGT CGG TCT CGT AG 3` |
Read 1 UP-tag seq primer (100uM) | 5′ GTC GAC CTG CAG CGT ACG 3′ |
Read 1 DOWN-tag seq primer (100uM) | 5′ CGG TGT CGG TCT CGT AG 3′ |
Read 2 Index Sequencing primer (standard Illumina R1 primer) (100uM) | 5′ AC ACT CTT TCC CTA CAC GAC GCT CTT CCG ATC T 3′ |
Additional Sequencing Reagents/Equipment | |
Qiagen MinElute 96 UF PCR purification Kit | Qiagen, part# 29051 |
Vaccum pump | Any vendor |
Macherey-Nagel Vaccum Manifold | Macherey-Nagel, part# 740 681 |
Invitrogen Quant-iT dsDNA BR Assay Kit | Invitrogen, part# Q32853 |
Invitrogen Qubit assay tubes | Invitrogen, part# Q32856 |
40% acrylamide plus 1% N,N’-methylene-bis-acrylamide, 37.5:1 | Bio Rad, part# 161-0148 |
Tris Base | Sigma, part# T1503-1KG |
Boric Acid | Sigma, part# B6768-500G |
0.5M EDTA, pH 8.0 | Teknova, part# E0306 |
Ammonium Persulfate | Sigma, part# A3678-25G |
TEMED | Bioshop, part# TEM001.25 |
Ethidium Bromide Solution | Bioshop, part# ETB444.10 |
0.5M Ammonium acetate | Teknova, part# A2000 |
10mM Magnesium acetate tetrahydrate | Sigma, part# M0631-100G |
1mM EDTA, pH 8.0 | See 0.5M EDTA, pH 8.0 |
Ethanol | Various |
Sodium acetate, pH 5.2 | Teknova, part# S0297 |
Speed vacuum | Various |
Single-Read Cluster Generation Kit | Illumina, part# GD-300-1001 |
36c Sequencing Kit v4 | Illumina, part# FC-104-4002 |
10X TBE recipe
Amounts | Reagents |
108 grams | Tris Base |
55 grams | Boric Acid |
40mL | 0.5M EDTA (pH 8.0) |
Add dH2O to 1L mark |
12% Polyacrylamide gel recipe
Volumes | Reagents |
5.8 ml | 40% acrylamide plus 1% N,N’-methylene-bis-acrylamide, 37.5:1 |
12 ml | dH2O |
2 ml | 10X TBE |
140 μl | 10% Ammonium Persulfate |
Total volume: 20ml |
Uptag primer mix:
Resuspend Uptag and Buptagkanmx4 each in ddH2O at 100 μM, then mix in a 1:1 ratio for a final concentration of 50 μM each. Store at -20°C.
Downtag primer mix:
Resuspend Dntag and Bdntagkanmx4 each in ddH2O at 100 μM, then mix in a 1:1 ratio for a final concentration of 50 μM each. Store at -20°C.
Mixed oligonucleotides:
Resuspend each of the following eight oligos (standard desalted) in ddH2O at 100 μM:
Uptag, Dntag, Uptagkanmx, Dntagkanmx, Uptagcomp, Dntagcomp, Upkancomp, Dnkancomp.
Mix an equal volume of the eight oligonucleotides for a final concentration of 12.5 μM each.
12X MES stock:
For 10 ml, dissolve 0.7 g MES free acid monohydrate and 1.93 g MES sodium salt in 8 ml molecular biology grade water. After mixing well, check pH and adjust if needed to a pH 6.5-6.7. Add water to a total volume of 10 ml. Filter sterilize and store at 4°C protected from light (e.g., wrap the tube in foil). Replace if solution becomes visibly yellow or after 6 months.
2X Hybridization buffer:
For 50 ml, mix 8.3 ml of 12X MES stock (from 2.9.14), 17.7 ml of 5 M NaCl, 4.0 ml of 0.5 M EDTA, 0.1 ml of 10% Tween 20 (vol/vol), and 19.9 ml filtered ddH2O. Filter sterilize.
Wash A: Mix 300 ml 20X SSPE, 1 mL 10% Tween (vol/vol), 699 ml ddH2O. Filter sterilize.
Wash B: Mix 150 ml 20X SSPE, 1 mL 10% Tween (vol/vol), 849 ml ddH2O. Filter sterilize.
Barcode sequencing primers
In UP-tag primer sequences the 5′ tail (bold) are Illumina specific adaptor sequences incorporated into the F and R primer. The variable sequence (italics) represents the 5-mer indexing tag used in multiplexing/ index read-out. The 3′ tail (underlined) represents the common primer flanking the uptag barcode and is required to amplify the yeast barcodes.
In DOWN-tag primer sequences the 5′ tail is identical to 5′ tail of UP-tag primers (Illumina specific sequence), however, the 3′ tail (underlined) is replaced with the common primers that are used to amplify the DOWN-tag barcodes.