نقدم هنا بروتوكولا لزرع الخلايا بدقة مكانية وزمانية عالية في أجنة الزرد واليرقات في أي مرحلة بين 1 و 7 أيام على الأقل بعد الإخصاب.
يحدث التطور والتجديد من خلال عملية التفاعلات الخلوية الديناميكية المكانية الزمانية المشفرة وراثيا. يعد استخدام زرع الخلايا بين لتتبع مصير الخلية وإحداث عدم تطابق في الخصائص الجينية أو المكانية أو الزمانية للخلايا المانحة والمضيفة وسيلة قوية لفحص طبيعة هذه التفاعلات. قدمت الكائنات الحية مثل الفرخ والبرمائيات مساهمات حاسمة في فهمنا للنمو والتجديد ، على التوالي ، ويرجع ذلك إلى حد كبير إلى قابليتها للزرع. ومع ذلك ، كانت قوة هذه النماذج محدودة بسبب انخفاض قابلية السحب الجيني. وبالمثل ، فإن الكائنات الحية النموذجية الجينية الرئيسية لديها قابلية أقل للزرع.
يعتبر الزرد نموذجا وراثيا رئيسيا للتطور والتجديد ، وعلى الرغم من أن زرع الخلايا شائع في الزرد ، إلا أنه يقتصر عموما على نقل الخلايا غير المتمايزة في المراحل المبكرة من تطور البلاستولا والمعدة. في هذه المقالة ، نقدم طريقة بسيطة وقوية تمتد نافذة زراعة الزرد إلى أي مرحلة جنينية أو يرقية بين 1 و 7 أيام على الأقل بعد الإخصاب. تسمح دقة هذا النهج بزرع أقل من خلية واحدة بدقة مكانية وزمانية شبه مثالية في كل من المانحة والمضيفة. بينما نسلط الضوء هنا على زرع الخلايا العصبية الجنينية واليرقات لدراسة تطور الأعصاب وتجديدها ، على التوالي ، فإن هذا النهج ينطبق على مجموعة واسعة من أنواع الخلايا السلفية والمتمايزة وأسئلة البحث.
زرع الخلايا له تاريخ طويل وحافل كتقنية أساسية في علم الأحياء التنموي. في مطلعالقرن العشرين ، حولت الأساليب التي تستخدم التلاعب الجسدي لإزعاج العملية التنموية ، بما في ذلك الزرع ، علم الأجنة من علم قائم على الملاحظة إلى علم تجريبي 1,2. في إحدى التجارب التاريخية، قام هانز سبيمان وهيلدا مانغولد بزرع الشفة الظهرية لجنين السمندل على الجانب الآخر من الجنين المضيف، مما أدى إلى تحفيز الأنسجة القريبة على تشكيل محور جسم ثانوي3. أظهرت هذه التجربة أن الخلايا يمكن أن تحفز الخلايا الأخرى على تبني مصائر معينة ، وبعد ذلك ، تم تطوير عملية الزرع كطريقة قوية لاستجواب الأسئلة الحرجة في علم الأحياء التنموي فيما يتعلق بالكفاءة وتحديد مصير الخلية ، ونسب الخلية ، والقدرة الاستقرائية ، واللدونة ، وقوة الخلايا الجذعية1،4،5.
وقد وسعت التطورات العلمية الحديثة من قوة نهج الزرع. في عام 1969 ، سمح اكتشاف نيكول لو دواران أن تلطيخ النواة يمكن أن يميز الأنواع الأصلية في كيميرا كتكوت السمان بتتبع الخلايا المزروعة وذريتها6. تم تعزيز هذا المفهوم لاحقا من خلال ظهور علامات الفلورسنت المعدلة وراثيا وتقنيات التصوير المتقدمة5 ، وتم الاستفادة منه لتتبع مصير الخلية 6,7 ، وتحديد الخلايا الجذعية وقوتها 8,9 ، وتتبع حركات الخلايا أثناء نمو الدماغ10. بالإضافة إلى ذلك ، سهل ظهور علم الوراثة الجزيئية عملية الزرع بين المضيفين والمتبرعين بالأنماط الجينية المتميزة ، مما يدعم التشريح الدقيق للوظائف المستقلة وغير المستقلة للعوامل التنموية11.
قدمت عملية الزرع أيضا مساهمات مهمة في دراسة التجدد ، لا سيما في الكائنات الحية ذات القدرات التجديدية القوية مثل المستوية و axolotl ، من خلال توضيح الهويات الخلوية والتفاعلات التي تنظم نمو ونمط الأنسجة المتجددة. كشفت دراسات الزرع عن مبادئ الفاعلية12 ، والأنماط المكانية 13,14 ، ومساهمات الأنسجة المحددة15,16 ، وأدوار الذاكرة الخلوية12,17 في التجديد.
الزرد هو نموذج الفقاريات الرائد لدراسة التطور والتجديد ، بما في ذلك في الجهاز العصبي ، بسبب برامجه الوراثية المحفوظة ، وقابلية السحب الوراثية العالية ، والإخصاب الخارجي ، وحجم القابض الكبير ، والوضوح البصري18،19،20. الزرد هي أيضا قابلة للغاية للزرع في مراحل النمو المبكرة. النهج الأبرز هو زرع الخلايا من جنين متبرع مسمى إلى جنين مضيف في مرحلة البلاستولا أو المعدة لتوليد الفسيفساء. سوف تتشتت الخلايا المزروعة خلال مرحلة البلاستولا وتتشتت مع بدء epiboly ، مما ينتج عنه فسيفساء من الخلايا والأنسجة الموسومة عبر الجنين21. تسمح عمليات زرع المعدة ببعض الاستهداف للخلايا المزروعة وفقا لخريطة مصير تقريبية حيث يتشكل الدرع ويمكن تحديد محاور A-P و D-V21. كانت الفسيفساء الناتجة ذات قيمة في تحديد ما إذا كانت الجينات تعمل بشكل مستقل ، واختبار التزام الخلية ، ورسم خرائط حركة الأنسجة وهجرة الخلايا طوال فترة التطوير 5,11. يمكن توليد الزرد الفسيفسائي بعدة طرق ، بما في ذلك التثقيب الكهربائي22 ، وإعادة التركيب23 ، و F0 التحوير24 والطفرات25 ، لكن الزرع يوفر أكبر قدر من التلاعب والدقة في المكان والزمان وعدد وأنواع الخلايا. تقتصر الحالة الحالية لزراعة الزرد إلى حد كبير على الخلايا السلفية في المراحل المبكرة ، مع استثناءات قليلة بما في ذلك زرع الخلايا العصبية الحركية الشوكية26,27 ، وخلايا العقدة الشبكية28,29 ، وخلايا القمة العصبية في أول 10-30 ساعة بعد الإخصاب (HPF) 30 ، والخلايا المكونة للدم والخلايا السرطانية في الزرد البالغ 5,31. إن توسيع طرق الزرع لتشمل مجموعة واسعة من الأعمار ومراحل التمايز وأنواع الخلايا من شأنه أن يعزز بشكل كبير قوة هذا النهج لتوفير رؤى حول عمليات النمو والتجدد.
هنا ، نعرض تقنية مرنة وقوية لزراعة الخلايا عالية الدقة فعالة في أجنة الزرد واليرقات حتى 7 أيام على الأقل بعد الإخصاب. يمكن استخدام الأسماك المضيفة والمانحة المعدلة وراثيا التي تعبر عن البروتينات الفلورية في الأنسجة المستهدفة لاستخراج الخلايا المفردة وزرعها بدقة مكانية وزمانية شبه مثالية. يسمح الوضوح البصري لأجنة ويرقات الزرد بتصوير الخلايا المزروعة حية أثناء تطور المضيف أو تجديده. تم استخدام هذا النهج سابقا لدراسة كيفية تأثير ديناميكيات الإشارات الزمانية المكانية على الهوية العصبية وتوجيه المحور العصبي في الجنين32 ، وفحص المنطق الذي تعزز به العوامل الجوهرية والخارجية توجيه المحور العصبي أثناء التجدد في أسماك اليرقات33. بينما نركز هنا على زرع الخلايا العصبية المتمايزة ، فإن طريقتنا قابلة للتطبيق على نطاق واسع على كل من أنواع الخلايا غير المتمايزة والمتمايزة عبر العديد من المراحل والأنسجة لمعالجة الأسئلة في التطوير والتجديد.
اعتمدت البيولوجيا التنموية والتجديدية لأكثر من قرن على تجارب الزرع لفحص مبادئ إشارات الخلية وتحديد مصير الخلية. يمثل نموذج الزرد بالفعل اندماجا قويا للنهج الجينية وزراعة الأعضاء. يعد الزرع في مرحلتي البلاستولا والمعدة لتوليد الفسيفساء أمرا شائعا ولكنه محدود في أنواع ?…
The authors have nothing to disclose.
نشكر سيسيليا موينز على التدريب على زراعة الزرد. مارك تاي لرعاية الأسماك الممتازة ؛ وإيما كارلسون للحصول على تعليقات على المخطوطة. تم دعم هذا العمل من خلال منحة المعاهد الوطنية للصحة NS121595 إلى A.J.I.
10 mL "reservoir syringe" | Fisher Scientific | 14-955-459 | |
150 mL disposable vacuum filter, .2 µm, PES | Corning | 431153 | |
20 x 12 mm heating block | Corning | 480122 | |
3-way stopcock | Braun Medical Inc. | 455991 | |
3 x 1 Frosted glass slide | VWR | 48312-004 | |
40x water dipping objective | Nikon | MRD07420 | |
Calcium chloride dihydrate | Sigma-Aldrich | C3306 | |
Coarse Manipulator | Narishige | MN-4 | |
Custom microsyringe pump | University of Oregon | N/A | Manufactured by University of Oregon machine shop (tsa.uoregon@gmail.com). A commercially available alternative is listed below. |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 1129500 | |
Eclipse FN1 "Transplant Microscope" | Nikon | N/A | |
electrode handle | World Precision Instruments | 5444 | |
Feather Sterile Surgical Blade, #11 | VWR | 21899-530 | |
Fine micromanipulator, Three-axis Oil hydraulic | Narishige | MMO-203 | |
HEPES pH 7.2 | Sigma-Aldrich | H3375-100G | |
High Precision #3 Style Scalpel Handle | Fisher Scientific | 12-000-163 | |
Kimble Disposable Borosilicate Pasteur Pipette, Wide Tip, 5.75 in | DWK Life Sciences | 63A53WT | |
KIMBLE Chromatography Adapter | DWK Life Sciences | 420408-0000 | |
Kimwipes | Kimberly-Clark Professional | 34120 | |
Light Mineral Oil | Sigma-Aldrich | M3516-1L | |
LSE digital dry bath heater, 1 block, 120 V | Corning | 6875SB | |
Manual microsyringe pump | World Precision Instruments | MMP | Commercial alternative to custom microsyringe pump |
Microelectrode Holder | World Precision Instruments | MPH310 | |
MicroFil Pipette Filler | World Precision Instruments | MF28G67-5 | |
Nail Polish | Electron MIcroscopy Sciences | 72180 | |
Nuclease-free water | VWR | 82007-334 | |
P-97 Flaming/Brown Type Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | |
Penicillin-streptomycin | Sigma-Aldrich | p4458-100ML | 5,000 units penicillin and 5 mg streptomycin/mL |
pipette pump 10 mL | Bel-Art | 37898-0000 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P3911 | |
Professional Super Glue | Loctite | LOC1365882 | |
Round-Bottom Polystyrene Test Tubes | Falcon | 352054 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S9888 | |
Stage micrometer | Meiji Techno America | MA285 | |
Syringes without Needle, 50 mL | BD Medical | 309635 | |
Tricaine Methanosulfonate | Syndel USA | SYNCMGAUS03 | |
Trilene XL smooth casting Fishing line | Berkley | XLFS6-15 | |
Tubing, polyethylene No. 205 | BD Medical | 427445 | |
UltraPure Low Melting Point Agarose | Invitrogen | 16520050 | |
Wiretrol II calibrated micropipettes | Drummond | 50002010 |
.