Summary

Оценка функционального восстановления активности эвпноэ диафрагмы после односторонней шейной гемисекции спинного мозга у крыс

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

Респираторные осложнения являются основной причиной смерти у лиц с травмой шейного отдела спинного мозга (ТСМ). Животные модели ТСМ имеют важное значение для механистической оценки и доклинических исследований. В данной работе мы представляем воспроизводимый метод оценки функционального восстановления активности мышц диафрагмы (DIAm) после односторонней спинальной гемисекции C2 (C2SH) у крыс.

Abstract

После ТСМ активация DIAm может быть нарушена в зависимости от степени травмы. В настоящей рукописи описана односторонняямодель C2-гемисекции (C2SH) cSCI, которая нарушает электромиографическую (ЭМГ) эвпноэ-ипсилатеральную диафрагму (iDIAm) во время дыхания у крыс. Чтобы оценить восстановление моторного контроля DIAm, сначала необходимо четко определить степень дефицита, вызванногоC2SH. При проверке полной первоначальной потери iDIAm EMG во время дыхания последующее восстановление может быть классифицировано как отсутствующее или присутствующее, а степень восстановления может быть оценена с помощью амплитуды ЭМГ. Кроме того, путем измерения продолжительного отсутствия активности ЭМГ iDIAm во время дыхания после периода острого спинального шока после C2SH можно подтвердить успех исходного C2SH. Измерение активности контралатеральной диафрагмы (cDIAm) ЭМГ может дать информацию о компенсаторных эффектах C2SH, которые также отражают нейропластичность. Кроме того, записи DIAm EMG от бодрствующих животных могут предоставить жизненно важную физиологическую информацию о моторном контроле DIAm после C2SH. В этой статье описывается метод создания строгой, воспроизводимой инадежной C2SH модели cSCI у крыс, которая является отличной платформой для изучения дыхательной нейропластичности, компенсаторной активности cDIAm, а также терапевтических стратегий и фармацевтических препаратов.

Introduction

В Соединенных Штатах насчитывается более 300 000 человек с травмой спинного мозга (ТСМ), примерно половина из которых имеет травмы шейного отдела1. Эти травмы приводят к значительным потерям благосостояния и создают финансовую нагрузку на людей, их семьи и систему здравоохранения. К счастью, большинство ТСМ являются неполными, что обеспечивает потенциал для укрепления спасенных путей1. Эта нейропластичность может позволить восстановить, по крайней мере, некоторые функции, включая активность DIAm, которая важна для вентиляционного и невентиляционного поведения. Таким образом, содействие нейропластичности является многообещающим направлением исследований для помощи людям с ТСМ2.

Модели ТСМ на грызунах могут внести существенный вклад в открытие методов лечения для улучшения здоровья человека. Одной из классических моделей ТСМ, используемых для изучения нейропластичности, является односторонняя перерезка (гемисекция) спинного мозга в точкеС2 (С2SH), при которой контралатеральная сторона остается нетронутой 3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13. ВлияниеC2SH на диафрагмальный выброс и важность щадящих контралатеральных путей были впервые обнаружены более ста лет назадПортером, чья основополагающая статья заложила основу для современных исследований дыхательной нейропластичности. Модель C2SH прерывает нисходящие входы от ростральной вентральной группы дыхания (rVRG) в продолговатом мозге, который содержит премоторные нейроны, ответственные за передачу выходных сигналов генерации дыхательного ритма14. Эти премоторные нейроны rVRG также передают возбуждающий нейронный драйв диафрагмальным моторным нейронам (рис. 1). Некоторые исследователи использовали различные подходы к модели C2SH 10,11,15,16, что может частично объяснить некоторую вариативность восстановления в разных исследованиях. Вкратце, подходы различаются с точки зрения сохранения дорсальных фуникулов, выполнения полной гемисекции или выполнения латеральной частичной транссекции, которая не полностью прерывает нисходящие входы от ипсилатеральной rVRG. В целом, модели C2SH особенно полезны для изучения дыхательной нейропластичности из-за скорости спонтанного восстановления электромиографической активности (ЭМГ) eupneic iDIAm с течением времени, которая может быть улучшена несколькими факторами, включая нейротрофическую передачу сигналов 17,18,19,20,21. Тем не менее, первоначальная потеря функции, определяемая как подавление активности эвноэической ЭМГ iDIAm, должна быть сначала установлена, прежде чем можно будет четко классифицировать восстановление. Такая проверка бездействия во время C2SH не проводилась в нескольких исследованиях 3,4,6,7,11,22,23.

Гистологические оценки иссеченного спинного мозга свидетельствуют только о повреждении соответствующего расположения ипсилатеральных возбуждающих бульбоспинальных путей, иннервирующих диафрагмальные мотонейроны в спинном мозге, но гистология не заменяет физиологические доказательства (например, ДИАм ЭМГ). Кроме того, гистологические оценки проводятся in vivo в терминальных временных точках (часто через несколько недель или месяцев после травмы) и не предоставляют информацию в режиме реального времени. Некоторые исследователи отметили, что величина поражения связана с величиной функционального дефицита или его отсутствием 5,24,25,26. Важно отметить, что обоснованность таких утверждений, вероятно, в значительной степени зависит от того, как классифицируется «функция» (т.е. каковы функциональные задачи и как они количественно оцениваются), а вариативность между исследованиями подчеркивает сложность создания функционально идентичных поражений у животных. Действительно, исследователи подчеркнули, что связь между степенью травмы и опорно-двигательной функцией мышц конечностей (количественно оцененной по шкале Бассо, Битти и Бреснахана (BBB)24) не является линейной27,28. В предыдущих исследованиях мы не обнаружили связи между распространенностьюC2 SH и степенью восстановления активности эвпноэ iDIAm EMG после травмы 10,29,30,31, хотя другие исследователи сообщали о взаимосвязи между вентиляционной функцией и степенью щадящего белого вещества 5. Таким образом, в случае модели C2SH подход к функциональной валидации бездействия iDIAm во время операции и предпочтительно на ранних этапах экспериментов с хронической травмой спинного мозга является как полезным, так и необходимым.

В настоящей статье подчеркивается использование ДИАм ЭМГ для подтверждения в реальном времени первоначальной потери ДИАм ЭМГ при дыхании после C2SH, а также последующих подтверждающих оценок через 3 дня (день 3) после травмы 18,21,31,32,33. В более ранней работе с моделью C2SH выполнялись повторные лапаротомии для записи DIAm EMG 10,13,30,34. Тем не менее, в более поздних работах использовались хронические электроды ЭМГ, которые позволяют регистрировать ЭМГ у крыс под наркозом и в сознании. Кроме того, хронические электроды снижают риск пневмоторакса и не требуют повторных лапаротомий, которые могут вызвать ингибирование DIAm35,36. Несмотря на то, что версии модели C2SH использовались многими исследователями, подтверждение подавления активности iDIAm не было сделано во время операции 3,4,6,7,11,22,23. Без такого подтверждения бездействия трудно понять, какую часть последующего восстановления отнести к нейропластичности ипсилатеральных и контралатеральных путей, которые могут оказывать дифференцированное воздействие. Это важное соображение, потому что инспираторный нервный драйв от rVRG к диафрагмальным мотонейронам является преимущественно ипсилатеральным, с потерей около 50% возбуждающих глутаматергических входов к диафрагмальным моторным нейронам после C2SH33. Тем не менее, существуют остаточные входы возбуждения вдоха от контралатерального rVRG, которые декуссируются ниже места поражения, иннервируя ипсилатеральные диафрагмальные мотонейроны и могут быть усилены за счет нейропластичности, способствуя функциональному восстановлению. При удалении преобладающего ипсилатерального возбуждающего входа в диафрагмальные моторные нейроны, активность эвпноэ iDIAm EMG теряется (по крайней мере, под анестезией), в то время как активность cDIAm продолжается и даже усиливается. Таким образом, потеря активности ЭМГ iDIAm во время дыхания является мерой успешногоC2SH (Рисунок 2).

Некоторый уровень активности iDIAm ЭМГ наблюдается уже через 1-4 дня после C2SH у бодрствующих животных23,37. Кроме того, у животных с децеребрацией активность iDIAm присутствует в течение нескольких минут или часов после верхней шейной гемисекции и подавляется анестезией38. Кроме того, успехC2SH подтверждается подтверждением отсутствия активности iDIAm EMG во время дыхания (эвпэа) у крыс, получавших анестезию, на 3-й день после травмы. Конфокальные визуализационные исследования подтвердили потерю глутаматергических синаптических входов на диафрагмальных моторных нейронах во время этой начальной стадии травмы37. На 3-й день после травмы, если имеется какая-либо остаточная эвноэиновая активность iDIAm ЭМГ, это интерпретируется как свидетельство неполного удаления ипсилатерального нисходящего инспираторного драйва из rVRG. Настоящая статья разделена на три раздела: (1) запись хронической ДИАм ЭМГ, (2) С2SH и (3) сбор данных ЭМГ у бодрствующих и обезболенных животных. Этот протокол описывает строгую, воспроизводимую и надежную C2SH модель cSCI у крыс, которая является отличной платформой для изучения дыхательной нейропластичности, компенсаторной активности cDIAm, а также терапевтических стратегий и фармацевтических препаратов.

Protocol

Этот протокол был одобрен Комитетом по уходу за животными и их использованию клиники Майо (номер протокола: A00003105-17-R23). Животные в настоящем исследовании представляли собой смесь самцов и самок крыс породы Спрэг-Доули в возрасте около 3 месяцев и весом от 200 г до 350 г. Подробная информация …

Representative Results

Подход, представленный в данной статье, минимизирует межоператорную вариабельность за счет установления четких критериев оценки DIAm ЭМГ в модели C2SH на крысе. Во-первых, необходимо наблюдать прекращение эвпноэальной активности iDIAm EMG сразу после C2SH, как показано на <strong class="xfig…

Discussion

С2 спинальная гемисекция
Процедура, описанная в этой статье, делает акцент на оценке активности DIAm EMG, которая служит валидацией поражения позвоночникаC2, которое пересекает латеральные и вентральные фуникулы с сохранением дорсальных фуникулов (рис. 2A</…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы указывают источник финансирования NIH (NIH R01HL146114).

Materials

25 G Needle Cardinal Health 1188825100 Covidien Monoject Hypdermic Standard Needles: 25 G x 1" (0.508 mm x 2.5 cm) A
3-0 Vicryl Violet Braided Ethicon J774D 3-0 Suture
Adson-Brown Forceps Fine Science Tools 11627-12 Tip Shape: Straight, Tips: Shark Teeth, Tip Width: 1.4mm, Tip Dimensions: 2 x 1.4 m, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Bowman Style Cage Braintree Scientific POR-530 Weight range: 250 up to 750 g; Maximum length: 9" (228 mm); Basic unit is constructed of .5" (123 mm) jeweled acrylic.
Castroviejo Needle Holder Fine Science Tools 12565-14 Tip Shape: Straight, Tip Width: 1.5 mm, Clamping Length: 10 mm, Lock: Yes, Scissors: No, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14 cm, Serrated:
Yes, Feature: Tungsten Carbide
Clip Lead 1m TP Shielded Biopac Systems, Inc LEAD110S Shielded lead wires for EMG
Data Acquisition Software LabChart LabChart 7.3.8 Data recording, visualization, and analysis software for multi-channel recordings and real-time assessments
Data Analysis Software – Matlab 2023b Mathworks, Inc. Version 23.2 General purpose programming language for post hoc analysis
Dissecting Knife Fine Science Tools 10056-12 Cutting Edge: 4 mm, Thickness: 0.5 mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12.5 cm, Blade Shape: Angled 30°
Dumont #3 Forceps Fine Science Tools 11293-00 Style: #3, Tip Shape: Straight, Tips: Standard, Tip Dimensions: 0.17 x 0.1 mm, Length: 12 cm, Alloy / Material: Dumostar
Electromyogram Amplifier Biopac Systems, Inc EMG100C EMG amplifier
Friedman Rongeur Fine Science Tools 16000-14 Tip Shape: Curved, Cup Size: 2.5mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 13cm, Joint Action: Single
Friedman-Pearson Rongeurs Fine Science Tools 16021-14 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Joint Action: Single, Cup Size: 1mm, Tip Shape: Curved
Isolated Power Supply Module Biopac Systems, Inc IPS100C Operates 100-series amplifier modules indepdent of the Biopac Systems, Inc.'s MP series Data Acquisition System
Kelly Hemostats Fine Science Tools 13019-14 Tips: Serrated, Tip Width: 1.5mm, Clamping Length: 22mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Tip Shape: Curved
Knife Curette V. Mueller VM101-4414 Tip: Sharp, Tip Diameter: 2 mm
Micro Dissecting Scissors Biomedical Research Instruments, Inc. 11-2420 Length: 4", Angle: Straight, Blade Length: 23 mm
Multistranded stainless steel wire Cooner Wire, Inc. AS 631 AWG 40; Overall diameter: 0.011 mm (with insulation), 0.008 mm (without insulation).
PowerLab 8/35 ADInstruments PL3508 Data acquisition system
Scalpel Blade #11 Fine Science Tools 10011-00 Blade Shape: Angled, Cutting Edge: 20 mm, Thickness: 0.4 mm, Alloy / Material: Carbon Steel
Scalpel Handle #3 Fine Science Tools 10003-12 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Sprague Dawley Rat Inotiv Order code: 002 Sprague Dawley outbred rats (female and male)
Surgical Microscope Olympus SZ61 Surgical microscope 
Suture Cutting Scissors George Tiemann & Co. 110-1250SB Alloy / Material: Stainless Steel, Tip Shape: Straight, Tips: Sharp/Blunt, Length: 4.5"
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-08 Tips: Sharp, Cutting Edge: 2.5 mm, Tip Diameter: 0.05 mm, Length: 8 cm, Alloy / Material: Stainless Steel, Serrated: No, Tip Shape: Straight
Weitlaner Retractor Codman 50-5647 Prongs: 2 x 3 Blunt, Length: 4.5"

References

  1. Center NSCIS. . Spinal cord injury model systems 2022 annual report – complete public version. , (2023).
  2. Punjani, N., Deska-Gauthier, D., Hachem, L. D., Abramian, M., Fehlings, M. G. Neuroplasticity and regeneration after spinal cord injury. N Am Spine Soc J. 15, 100235 (2023).
  3. El-Bohy, A. A., Goshgarian, H. G. The use of single phrenic axon recordings to assess diaphragm recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 156 (1), 172-179 (1999).
  4. Fuller, D. D., et al. Modest spontaneous recovery of ventilation following chronic high cervical hemisection in rats. Exp Neurol. 211 (1), 97-106 (2008).
  5. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165 (2-3), 245-253 (2009).
  6. Golder, F. J., et al. Respiratory motor recovery after unilateral spinal cord injury: Eliminating crossed phrenic activity decreases tidal volume and increases contralateral respiratory motor output. J Neurosci. 23 (6), 2494-2501 (2003).
  7. Golder, F. J., Reier, P. J., Davenport, P. W., Bolser, D. C. Cervical spinal cord injury alters the pattern of breathing in anesthetized rats. J Appl Physiol. 91 (6), 2451-2458 (2001).
  8. Goshgarian, H. G. The role of cervical afferent nerve fiber inhibition of the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 72 (1), 211-225 (1981).
  9. Keomani, E., et al. A murine model of cervical spinal cord injury to study post-lesional respiratory neuroplasticity. J Vis Exp. 87, e51235 (2014).
  10. Miyata, H., Zhan, W. Z., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Myoneural interactions affect diaphragm muscle adaptations to inactivity. J Appl Physiol. 79 (5), 1640-1649 (1995).
  11. Moreno, D. E., Yu, X. J., Goshgarian, H. G. Identification of the axon pathways which mediate functional recovery of a paralyzed hemidiaphragm following spinal cord hemisection in the adult rat. Exp Neurol. 116 (3), 219-228 (1992).
  12. Porter, W. T. The path of the respiratory impulse from the bulb to the phrenic nuclei. J Physiol. 17 (6), 455-485 (1895).
  13. Zhan, W. Z., Miyata, H., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Metabolic and phenotypic adaptations of diaphragm muscle fibers with inactivation. J Appl Physiol. 82 (4), 1145-1153 (1997).
  14. Smith, J. C., Ellenberger, H. H., Ballanyi, K., Richter, D. W., Feldman, J. L. Pre-botzinger complex: A brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals. Science. 254 (5032), 726-729 (1991).
  15. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23 (7), 1137-1146 (2006).
  16. Warren, P. M., et al. Rapid and robust restoration of breathing long after spinal cord injury. Nat Commun. 9 (1), 4843 (2018).
  17. Fogarty, M. J., Dasgupta, D., Khurram, O. U., Sieck, G. C. Chemogenetic inhibition of TrkB signalling reduces phrenic motor neuron survival and size. Mol Cell Neurosci. 125, 103847 (2023).
  18. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Targeted delivery of TrkB receptor to phrenic motoneurons enhances functional recovery of rhythmic phrenic activity after cervical spinal hemisection. PLoS One. 8 (5), e64755 (2013).
  19. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Localized delivery of brain-derived neurotrophic factor-expressing mesenchymal stem cells enhances functional recovery following cervical spinal cord injury. J Neurotrauma. 32 (3), 185-193 (2015).
  20. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Stowe, J. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. TrkB kinase activity is critical for recovery of respiratory function after cervical spinal cord hemisection. Exp Neurol. 261, 190-195 (2014).
  21. Sieck, G. C., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B. Acute intrathecal BDNF enhances functional recovery after cervical spinal cord injury in rats. J Neurophysiol. 125 (6), 2158-2165 (2021).
  22. Fuller, D. D., Golder, F. J., Olson, E. B., Mitchell, G. S. Recovery of phrenic activity and ventilation after cervical spinal hemisection in rats. J Appl Physiol. 100 (3), 800-806 (2006).
  23. Bezdudnaya, T., Hormigo, K. M., Marchenko, V., Lane, M. A. Spontaneous respiratory plasticity following unilateral high cervical spinal cord injury in behaving rats. Exp Neurol. 305, 56-65 (2018).
  24. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  25. Cloud, B. A., et al. Hemisection spinal cord injury in rat: The value of intraoperative somatosensory evoked potential monitoring. J Neurosci Methods. 211 (2), 179-184 (2012).
  26. Hurd, C., Weishaupt, N., Fouad, K. Anatomical correlates of recovery in single pellet reaching in spinal cord injured rats. Exp Neurol. 247, 605-614 (2013).
  27. Fouad, K., Hurd, C., Magnuson, D. S. Functional testing in animal models of spinal cord injury: Not as straight forward as one would think. Front Integr Neurosci. 7, 85 (2013).
  28. Fouad, K., Popovich, P. G., Kopp, M. A., Schwab, J. M. The neuroanatomical-functional paradox in spinal cord injury. Nat Rev Neurol. 17 (1), 53-62 (2021).
  29. Fogarty, M. J., et al. Novel regenerative drug, SPG302 promotes functional recovery of diaphragm muscle activity after cervical spinal cord injury. J Physiol. 601 (12), 2513-2532 (2023).
  30. Prakash, Y. S., Miyata, H., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Inactivity-induced remodeling of neuromuscular junctions in rat diaphragmatic muscle. Muscle Nerve. 22 (3), 307-319 (1999).
  31. Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Role of neurotrophins in recovery of phrenic motor function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169 (2), 218-225 (2009).
  32. Brown, A. D., et al. Mitochondrial adaptations to inactivity in diaphragm muscle fibers. J Appl Physiol. 133 (1), 191-204 (2022).
  33. Rana, S., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Disproportionate loss of excitatory inputs to smaller phrenic motor neurons following cervical spinal hemisection. J Physiol. 598 (20), 4693-4711 (2020).
  34. Mantilla, C. B., Rowley, K. L., Zhan, W. Z., Fahim, M. A., Sieck, G. C. Synaptic vesicle pools at diaphragm neuromuscular junctions vary with motoneuron soma, not axon terminal, inactivity. Neurosciences. 146 (1), 178-189 (2007).
  35. Ford, G. T., Whitelaw, W. A., Rosenal, T. W., Cruse, P. J., Guenter, C. A. Diaphragm function after upper abdominal surgery in humans. Am Rev Respir Dis. 127 (4), 431-436 (1983).
  36. Road, J. D., Burgess, K. R., Whitelaw, W. A., Ford, G. T. Diaphragm function and respiratory response after upper abdominal surgery in dogs. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 57 (2), 576-582 (1984).
  37. Rana, S., Sunshine, M. D., Greer, J. J., Fuller, D. D. Ampakines stimulate diaphragm activity after spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (24), 3467-3482 (2021).
  38. Ghali, M. G., Marchenko, V. Dynamic changes in phrenic motor output following high cervical hemisection in the decerebrate rat. Exp Neurol. 271, 379-389 (2015).
  39. Ditunno, J. F., Little, J. W., Tessler, A., Burns, A. S. Spinal shock revisited: A four-phase model. Spinal Cord. 42 (7), 383-395 (2004).
  40. Khurram, O. U., Gransee, H. M., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Automated evaluation of respiratory signals to provide insight into respiratory drive. Respir Physiol Neurobiol. 300, 103872 (2022).
  41. Khurram, O. U., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromotor control of spontaneous quiet breathing in awake rats evaluated by assessments of diaphragm emg stationarity. J Neurophysiol. 130 (5), 1344-1357 (2023).
  42. Rana, S., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Cervical spinal hemisection alters phrenic motor neuron glutamatergic mRNA receptor expression. Exp Neurol. 353, 114030 (2022).
  43. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Zhan, W. Z., Seven, Y. B., Sieck, G. C. Prolonged c2 spinal hemisection-induced inactivity reduces diaphragm muscle specific force with modest, selective atrophy of type IIx and/or IIb fibers. J Appl Physiol. 114 (3), 380-386 (2013).
  44. Jensen, V. N., Romer, S. H., Turner, S. M., Crone, S. A. Repeated measurement of respiratory muscle activity and ventilation in mouse models of neuromuscular disease. J Vis Exp. 122, e55599 (2017).
  45. Navarrete-Opazo, A., Mitchell, G. S. Recruitment and plasticity in diaphragm, intercostal, and abdominal muscles in unanesthetized rats. J Appl Physiol. 117 (2), 180-188 (2014).
  46. Redfern, M., Hughes, R., Chaffin, D. High-pass filtering to remove electrocardiographic interference from torso emg recordings. Clin Biomech (Bristol, Avon). 8 (1), 44-48 (1993).
  47. Seven, Y. B., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Non-stationarity and power spectral shifts in emg activity reflect motor unit recruitment in rat diaphragm muscle. Respir Physiol Neurobiol. 185 (2), 400-409 (2013).
  48. Christensen, H., Sogaard, K., Jensen, B. R., Finsen, L., Sjogaard, G. Intramuscular and surface emg power spectrum from dynamic and static contractions. J Electromyogr Kinesiol. 5 (1), 27-36 (1995).
  49. Belman, M. J., Sieck, G. C. The ventilatory muscles. Fatigue, endurance and training. Chest. 82 (6), 761-766 (1982).
  50. Belman, M. J., Sieck, G. C., Mazar, A. Aminophylline and its influence on ventilatory endurance in humans. Am Rev Respir Dis. 131 (2), 226-229 (1985).
  51. Levine, S., Gillen, J., Weiser, P., Gillen, M., Kwatny, E. Description and validation of an ecg removal procedure for emgdi power spectrum analysis. J Appl Physiol. 60 (3), 1073-1081 (1986).
  52. Schweitzer, T. W., Fitzgerald, J. W., Bowden, J. A., Lynne-Davies, P. Spectral analysis of human inspiratory diaphragmatic electromyograms. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 46 (1), 152-165 (1979).
  53. Sharp, J. T. The respiratory muscles in emphysema. Clin Chest Med. 4 (3), 421-432 (1983).
  54. Sinderby, C., Spahija, J., Beck, J. Changes in respiratory effort sensation over time are linked to the frequency content of diaphragm electrical activity. Am J Respir Crit Care Med. 163 (4), 905-910 (2001).
  55. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183 (3), 186-192 (2012).
  56. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235 (1), 197-210 (2012).
  57. Burns, D. P., Murphy, K. H., Lucking, E. F., O’halloran, K. D. Inspiratory pressure-generating capacity is preserved during ventilatory and non-ventilatory behaviours in young dystrophic mdx mice despite profound diaphragm muscle weakness. J Physiol. 597 (3), 831-848 (2019).
  58. Dow, D. E., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. EMG-based detection of inspiration in the rat diaphragm muscle. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2006, 1204-1207 (2006).
  59. Rana, S., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Diaphragm electromyographic activity following unilateral midcervical contusion injury in rats. J Neurophysiol. 117 (2), 545-555 (2017).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Citer Cet Article
Khurram, O. U., Fogarty, M. J., Zhan, W., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Assessing Functional Recovery of Eupneic Diaphragm Activity Following Unilateral Cervical Spinal Cord Hemisection in Rats. J. Vis. Exp. (208), e66828, doi:10.3791/66828 (2024).

View Video