Модели легких на чипе превосходят традиционные 2D-культуры, имитируя воздушно-жидкостную границу раздела и перфузию эндотелиальных клеток, имитируя кровоток и обмен питательных веществ, что имеет решающее значение для исследований физиологии легких. Это повышает актуальность исследований легких, предлагая динамичную, физиологически точную среду для улучшения понимания и лечения респираторных инфекций.
Мы представляем передовую иммунокомпетентную модель легкого на чипе, предназначенную для воспроизведения альвеолярной структуры и функции человека. В этой инновационной модели используется микрофлюидно-перфузионный биочип, который поддерживает воздушно-жидкостную границу, имитирующую окружающую среду в альвеолах человека. Тканевая инженерия используется для интеграции ключевых клеточных компонентов, включая эндотелиальные клетки, макрофаги и эпителиальные клетки, для создания репрезентативной тканевой модели альвеолы. Модель облегчает углубленное изучение иммунных реакций слизистых оболочек на различные патогены, включая вирусы, бактерии и грибки, тем самым улучшая наше понимание иммунитета легких. Основная цель этого протокола состоит в том, чтобы предоставить подробную информацию для создания этой модели альвеолы на чипе в качестве надежной платформы in vitro для изучения инфекций, позволяющей исследователям внимательно наблюдать и анализировать сложные взаимодействия между патогенами и иммунной системой хозяина в легочной среде. Это достигается за счет применения микрофлюидных методов для моделирования ключевых физиологических состояний альвеол человека, включая кровоток и биомеханическую стимуляцию эндотелиальных клеток, а также поддержания границы раздела воздух-жидкость, имеющего решающее значение для реалистичного воздействия воздуха на эпителиальные клетки. Модельная система совместима с рядом стандартизированных анализов, таких как иммунофлуоресцентное окрашивание, профилирование цитокинов и анализ колониеобразующих единиц (КОЕ)/бляшек, что позволяет получить всестороннее представление об иммунной динамике во время инфекции. Альвеола-он-чип состоит из основных типов клеток, включая эпителиальные клетки дистального отдела легких человека (H441) и эндотелиальные клетки пупочной вены человека (HUVECs), разделенные пористыми мембранами из полиэтилентерефталата (ПЭТ), при этом первичные макрофаги, полученные из моноцитов, стратегически расположены между эпителиальным и эндотелиальным слоями. Тканевая модель расширяет возможности препарирования и анализа нюансов факторов, участвующих в легочных иммунных реакциях in vitro. Являясь ценным инструментом, он должен способствовать развитию исследований легких, обеспечивая более точную и динамичную модель in vitro для изучения патогенеза респираторных инфекций и тестирования потенциальных терапевтических вмешательств.
Легкое человека играет замечательную роль в дыхании и иммунной защите, со сложными взаимодействиями между иммунными реакциями альвеолярной слизистой оболочки1. Способность альвеол создавать эффективный иммунный ответ жизненно важна для предотвращения инфекций легких и обеспечения здоровья легких. Поскольку легкие постоянно подвергаются воздействию широкого спектра потенциальных рисков, включая бактерии, вирусы, грибки, аллергии и твердые частицы, понимание сложностей иммунных реакций слизистых оболочек альвеол имеет решающее значение для выявления механизмов респираторных инфекций, воспалительных заболеваний и лечения легочныхзаболеваний.
Для изучения инфекций и воспалительных процессов дыхательных путей in vitro требуются модели, которые могли бы точно имитировать альвеолярную среду и иммунные реакции. Двухмерные клеточные культуры и модули животных на протяжении десятилетий использовались в качестве важных инструментов для биомедицинских исследований иммунного ответа легких. Тем не менее, они часто имеют ограничения в своем трансляционном потенциале в человеческих ситуациях. Модели «легкое на чипе» могут способствовать заполнению пробела между традиционными моделями in vitro и in vivo и обеспечить новый подход к изучению специфических иммунных реакций человека 2,3. Модели «легкое на чипе» могут имитировать границу раздела воздух-жидкость, которая необходима клеткам легких для повторения физиологических условий дыхательных путей и разработки более точной и надежной модели ткани. Этот метод культивирования позволяет точно исследовать дифференцировку, функционирование и реакцию клеток на лекарства или стимулы, связанные с заболеванием, in vitro 2.
В этом исследовании мы представляем микрофлюидную модель альвеолы человека в качестве эффективного инструмента для повторения альвеолярной среды человека путем применения перфузии для имитации кровотока и биомеханической стимуляции эндотелиальных клеток, а также включения воздушно-жидкостного интерфейса с эпителиальными клетками, подвергшимися воздействию воздушной фазы4. Мы разработали микрофлюидную перфузную альвеолу на кристалле, которая имитирует физическую структуру и биологические взаимодействия альвеолы человека, уделяя особое внимание границе раздела воздух-жидкость. Этот интерфейс играет решающую роль в дифференцировке эпителиальных клеток дыхательных путей, что имеет важное значение для точного моделирования легочной среды. В модели используются эпителиальные клетки дистального отдела легких человека (H441) и эндотелиальные клетки пупочной вены человека (HUVECs), разделенные пористыми мембранами из полиэтилентерефталата (ПЭТ), с первичными макрофагами, полученными из моноцитов, расположенными между слоями клеток. Эта установка воспроизводит сложное клеточное расположение альвеолы и имеет решающее значение для точного моделирования границы раздела воздух-жидкость, которая является важным фактором физиологической функции легочной ткани.
Обоснование разработки модели распространяется на интеграцию как циркулирующих, так и тканевых резидентных иммунных клеток. Этот подход предназначен для точной имитации воспалительной реакции хозяина на респираторные инфекции человека, обеспечивая динамическую среду для изучения взаимодействий патогена и хозяина. Присутствие макрофагов позволяет исследовать непосредственные иммунные реакции и их взаимодействие с патогенами, отражая первую линию защиты от респираторных инфекций. Кроме того, конструкция платформы биочипа способствует удобному и точному манипулированию как биофизическими, так и биохимическими сигналами, что имеет решающее значение для репликации функции альвеол in vitro. Такая гибкость играет важную роль в анализе факторов, способствующих инфицированию человека, позволяя исследователям корректировать условия в соответствии с различными состояниями заболевания или тестировать потенциальные терапевтические вмешательства. Совместимость платформы с несколькими технологиями считывания, включая передовую микроскопию, микробиологический анализ и биохимический анализ сточных вод, повышает ее полезность. Эти возможности позволяют всесторонне оценить реакцию тканей на инфекции, включая оценку клеточного поведения, пролиферации патогенов и эффективности иммунных реакций.
Мы представляем подробный протокол и методы создания и использования модели альвеолы на чипе человека, ориентированной на репликацию границы раздела воздух-жидкость и интеграцию иммунных клеток для изучения инфекций человека in vitro.
Модель альвеолы на чипе представляет собой многослойную тканевую модель альвеолы человека, объединяющую основные типы клеток нижних дыхательных путей, включая эпителиальные клетки легких, эндотелиальные клетки и макрофаги, культивируемые в органотипической компоновке в ОПЛ со сред?…
The authors have nothing to disclose.
H.K. и A.S.M. выражают признательность за финансирование от Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, финансируемое по линии финансирования Strategic Networking Ассоциации Лейбница. M.A. и A.S.M. были поддержаны проектом IGF IMPROVE, финансируемым Федеральным министерством экономики и энергетики на основании постановления Бундестага Германии. Компания A.S.M также выражает признательность за финансовую поддержку со стороны Кластера передового опыта Balance of the Microverse в рамках Стратегии совершенствования Германии – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.
Consumables | ||
Cellcounting chamber slides (Countess) | Invitrogen | C10283 |
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril | Greiner Bio-One | 662 160 |
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril | Greiner Bio-One | 657 160 |
Coverslips (24x40mm; #1.5) | Menzel-Gläser | 15747592 |
Eco wipes | Dr. Schuhmacher | 00-915-REW10003-01 |
Eppies 2.0 | Sarstedt | 72.691 |
Eppis 0.5 | Sarstedt | 72.699 |
Eppis 1.5 | Sarstedt | 72.690.001 |
Falcons 15mL | Greiner Bio-One | 188 271-TRI |
Falcons 50mL | Greiner Bio-One | 227 261-TRI |
Gauze swab | Noba | PZN 2417767 |
Gloves Nitril 3000 | Meditrade | 1280 |
Microscope slides | Menzel-Gläser | AAAA000001##12E |
Multiwell Plates 24 Well, sterile | Greiner Bio-One | 662 160 |
Pasteur pipettes (glass) 150mm | Assistent | 40567001 |
Pasteur pipettes (glass) 230mm | Assistent | 40567002 |
Round-bottom tubes (PS, 5mL) | Falcon | 352052 |
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm | Sarstedt | 85.1637.235 |
Scalpels | Dahlhausen | 11.000.00.715 |
Serological pipettes 10mL | Greiner Bio-One | 607 160-TRI |
Serological pipettes 25mL | Greiner Bio-One | 760 160-TRI |
Serological pipettes 2mL | Greiner Bio-One | 710 160-TRI |
Serological pipettes 50mL | Greiner Bio-One | 768 160-TRI |
Serological pipettes 5mL | Greiner Bio-One | 606 160-TRI |
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel | Sarstedt | 1.1602 |
S-Monovette, 9,0ml K3E | Sarstedt | 02.1066.001 |
Softasept N | Braun | 3887138 |
T25 flask | Greiner Bio-One | 690 960 |
Tips sterile 10µL | Greiner Bio-One | 771 261 |
Tips sterile 1250µL | Greiner Bio-One | 750 261 |
Tips sterile 300µL | Greiner Bio-One | 738 261 |
Tips unsterile 10µL | Greiner Bio-One | 765 290 |
Tips unsterile 1000µL | Greiner Bio-One | 739 291 |
Tips unsterile 200µL | Greiner Bio-One | 686 290 |
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) | Roth | K343.1 |
Chemicals | ||
Descosept AF | Dr. Schuhmacher | N-20338 |
Ethanol 96% | Nordbrand-Nordhausen | 410 |
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) | Sigma Aldrich | FD4-100MG |
Fluorescent Mounting Medium | Dako | S3023 |
Methanol | VWR | 20847.295 |
Saponin | Fluka | 47036 |
Tergazyme | Alconox | 1304-1 |
Cell culture | ||
Collagen IV | Sigma-Aldrich | C5533-5MG |
Dexametason | Sigma-Aldrich | D4902 |
DPBS (-/-) | Lonza | BE17-516F |
DPBS (+/+) | Lonza | BE17-513F |
EDTA solution | Sigma-Aldrich | E788S |
Endothelial Cell Growth Medium | Promocell | C-22020 |
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix | Promocell | C-39225 |
Fetal bovine Serum | Sigma-Aldrich | E2129-10g |
H441 | ATCC | |
Human recombinant GM-CSF | Peprotech | 300-30 |
Lidocain | Sigma-Aldrich | L5647-15G |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140-122 /-163 |
RPMI | Gibco | 72400047 |
Trypane blue stain 0.4% | Invitrogen | T10282 |
Trypsin | Gibco | 15090-046 |
Primary antibodies | ||
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) | BD | 610252 |
CD68 (rabbit) | CellSignaling | 76437 |
E-Cadherin (goat) | R&D | AF748 |
SP-A (mouse) | Abcam | ab51891 |
Secondary antibodies | ||
AF488 (donkey anti mouse) | Invitrogen | R37114 |
AF647 (donkey anti mouse) | invitrogen | A31571 |
AF647 (donkey anti rabbit) | Invitrogen | A31573 |
Cy3 (donkey anti goat) | jackson research | 705-165-147 |
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) | Invitrogen | D3571 |
Microfluidic | ||
Chip | Dynamic 42 | BC002 |
Male Luer Lock (small) | ChipShop | 09-0503-0270-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, green | Microfluidic chipshop | 09-0558-0336-11 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque | Microfluidic chipshop | 09-0556-0336-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, red | Microfluidic chipshop | 09-0557-0336-10 |
Plugs | Cole Parmer | GZ-45555-56 |
Reservoir 4.5mL | ChipShop | 16-0613-0233-09 |
Tubing | Dynamic 42 | ST001 |
Equipment | ||
Autoclave | Tuttnauer | 5075 ELV |
Centrifuge | Eppendorf | 5424 |
CO2 Incubator | Heracell | 150i |
Countess automated cell counter | Invitrogen | C10227 |
Flowcytometer | BD | FACS Canto II |
Freezer (-20 °C) | Liebherr | LCexv 4010 |
Freezer (-80 °C) | Heraeus | Herafreeze HFU 686 |
Fridge | Liebherr | LCexv 4010 |
Heraeus Multifuge | Thermo Scientific | X3R |
Microscope | Leica | DM IL LED |
Orbital shaker | Heidolph | Reax2000 |
Peristaltic pump | REGLO Digital MS-4/12 | ISM597D |
Pipettes 10µL | Eppendorf Research plus | 3123000020 |
Pipettes 100µL | Eppendorf Research plus | 3123000047 |
Pipettes 1000µL | Eppendorf Research plus | 3123000063 |
Pipettes 2.5µL | Eppendorf Research plus | 3123000012 |
Pipettes 20µL | Eppendorf Research plus | 3123000039 |
Pipettes 200µL | Eppendorf Research plus | 3123000055 |
Scale | Sartorius | 6101 |
Scale | Sartorius | TE1245 |
Sterile bench | Kojair | Biowizard SL-130 |
Waterbath | Julabo | SW-20C |
Fluorescence Microscope Setup | ||
Apotome.2 | Zeiss | |
Illumination device | Zeiss | HXP 120 C |
Microscope | Zeiss | Axio Observer 5 |
Optical Sectioning | Zeiss | ApoTome |
Power Supply Microscope | Zeiss | Eplax Vp232 |
Software | ||
ZEN Blue Edition | Zeiss |