הפרוטוקול מציג שיטה לא פולשנית לאבחון מהיר של זיהומי קיבה של הליקובקטר פילורי באמצעות בדיקת מיתרים וקובע את עמידותו האנטיביוטית לקלריתרומיצין ולבופלוקסצין באמצעות תגובת שרשרת כמותית של פולימראז (qPCR).
הליקובקטר פילורי הוא פתוגן אנושי עיקרי המדביק כמחצית מאוכלוסיית העולם והופך לאיום בריאותי חמור בשל עמידותו הגוברת לאנטיביוטיקה. זהו הגורם הסיבתי של דלקת גסטריטיס פעילה כרונית, מחלת כיב פפטי וסרטן קיבה והוא סווג כמסרטן מקבוצה I על ידי הסוכנות הבינלאומית לחקר הסרטן. לכן, האבחון המהיר והמדויק של H. pylori וקביעת עמידותו לאנטיביוטיקה חשובים למיגור יעיל של פתוגן חיידקי זה. כיום, שיטות האבחון של H. pylori כוללות בעיקר את בדיקת הנשימה אוריאה (UBT), בדיקת האנטיגן, בדיקת נוגדנים בסרום, גסטרוסקופיה, בדיקת אוראז מהיר (RUT) ותרבית חיידקים. ביניהן, שלוש שיטות הגילוי הראשונות אינן פולשניות, כלומר הן בדיקות קלות לביצוע. עם זאת, לא ניתן לאחזר חיידקים באמצעות טכניקות אלה; לפיכך, לא ניתן לבצע בדיקות עמידות לתרופות. שלוש האחרונות הן בדיקות פולשניות, אך הן יקרות, דורשות מיומנויות גבוהות ויש להן פוטנציאל לגרום נזק לחולים. לכן, שיטה לא פולשנית, מהירה וסימולטנית לזיהוי H . pylori ובדיקת עמידות לתרופות חשובה מאוד למיגור יעיל של H. pylori בפרקטיקה הקלינית. פרוטוקול זה נועד להציג הליך ספציפי הכולל את בדיקת המיתרים בשילוב עם תגובת שרשרת כמותית של פולימראז (qPCR) לזיהוי מהיר של זיהום H. pylori ועמידות לאנטיביוטיקה. בניגוד לתרביות חיידקים, שיטה זו מאפשרת אבחון קל, מהיר ולא פולשני של מצב זיהום הליקובקטר פילורי ועמידות לתרופות. באופן ספציפי, השתמשנו ב-qPCR כדי לזהות rea עבור זיהום H. pylori ומוטציות בגנים 23S rRNA ו-gyrA , אשר מקודדים עמידות נגד clarithromycin ו-levofloxacin, בהתאמה. בהשוואה לטכניקות גידול שגרתיות, פרוטוקול זה מספק טכניקה לא פולשנית, בעלות נמוכה וחוסכת זמן כדי לזהות זיהום H. pylori ולקבוע את עמידותו לאנטיביוטיקה באמצעות qPCR.
H. pylori הוא חיידק בצורת ספירלה, תנועתי מאוד, גראם-שלילי שחי בעיקר באזור הפילורוס של הקיבה1. זהו פתוגן נפוץ שמדביק כמעט 50% מאוכלוסיית העולם2. לרוב האנשים עם זיהום H. pylori אין ביטויים קליניים, ורובם מפתחים מחלות שונות לאחר מספר שנים של זיהום, כולל דלקת קיבה כרונית, כיבים פפטיים, כיבי קיבה וסרטן קיבה3. במספר מחקרים המבוססים על אוכלוסיות שונות,הודגמה יעילות סילוק H. pylori למניעת סרטן הקיבה ונגעים טרום סרטניים 4,5. לכן, ארגון הבריאות העולמי (WHO) הסוכנות הבינלאומית לחקר הסרטן המליצה על מיגור H. pylori כאמצעי מניעה6.
השימוש בשיטות לא פולשניות לזיהוי זיהום H. pylori הוא מרכיב מרכזי בטיפול עבור רוב האנשים עם דיספפסיה אסימפטומטית. בדיקת נשימה אוריאה (UBT), בדיקת אנטיגן צואה H. pylori (SAT) ובדיקות סרולוגיות הן טכניקות לא פולשניות פופולריות. מבין אלה, UBT הוא ההליך הכי פחות פולשני ומדויק ביותר שיש. UBT משתמש באוראז, המצוי בשפע בהליקובקטר פילורי, כדי לבצע הידרוליזה של אוריאה עם תווית איזוטופית לאמוניה ופחמן דו חמצני (13C או 14C). לעומת זאת, הבדיקה האימונוכרומטוגרפית (ICA)7 נוחה, פשוטה ולא פולשנית לדגימה. עם זאת, דיוק הבדיקה מושפע ממספר גורמים, כגון איכות דגימת הצואה, הטמפרטורה והמרווח בין איסוף הדגימה לבדיקה. בדיקה נוספת המבוססת על התגובה החיסונית היא בדיקת נוגדנים בסרום H. pylori , המזהה נוגדנים בסרום של המטופל. עם זאת, בדיקה זו אינה מתאימה לניתוח לאחר הטיפול שכן הנוגדנים נשארים זמן רב לאחר ניקוי החיידק8. חסרון משמעותי נוסף הוא ששיטות אלה מאבחנות רק זיהום בהליקובקטר פילורי ואינן מאפשרות בדיקות עמידות לתרופות כדי להנחות טיפול מבוסס רגישות.
עבור שיטות בדיקה פולשניות, רקמת ביופסיית קיבה צריכה להילקח על ידי אנדוסקופיה ולאחר מכן נתון להיסטולוגיה, הבדיקה המהירה urase, ואת התרבות חיידקית. שיטות בדיקה אלה גם מוגבלות מאוד בשל מספר גורמים. כיום, טכניקות אלה מוגבלות לחולים קשישים, חולים בסיכון גבוה למחלה טרום סרטנית או ממאירה, וחולים שנכשלו בטיפול קו ראשון למחלת ריפלוקס קיבתי-ושטי או זיהום H. pylori 9. שנית, בשל מאפייני הגידול הייחודיים של H. pylori, שיעור ההצלחה של תרבית חיידקים מגיע רק 50%10. לפיכך, שיטות זיהוי מולקולרי מציעות תקווה חדשה להתגבר על הדרישות הגבוהות של שיטות גילוי פולשניות ולהנחות טיפול מבוסס רגישות. בין שיטות הזיהוי המולקולרי, PCR כמותי התפתח מאוד בשנים האחרונות. qPCR, בניגוד ל-PCR מסורתי, אינו דורש אלקטרופורזה בג’ל ומכמת במדויק DNA/RNA בדגימות על ידי הוספת פריימרים ובדיקות בשלב החישול. ערכות qPCR לזיהוי זיהום H. pylori ועמידות לתרופות זמינות כעת באופן מסחרי. עם זאת, לכל שיטה יש מגבלות; לכן, יש לשקול את האבחנה הקלינית והטיפול של המטופל בשילוב עם הסימפטומים שלו, הסימנים, ההיסטוריה, בדיקות מעבדה אחרות והתגובה לטיפול.
כיום, השיטה העיקרית לטיפול בזיהומים מסוג H.pylori היא נטילת אנטיביוטיקה, אך לאחרונה נעשה קשה יותר ויותר לטפל בזיהומים אלה בשל העלייה בעמידות לאנטיביוטיקה. לאחר מכן, נצפתה ירידה משמעותית ביעילות הטיפול בהליקובקטר פילורי ברחבי העולם, מה שהופך את מיגור ההליקובקטר פילורי לבעיה מרכזית בבריאות הציבור11.
Clarithromycin ו- levofloxacin הן שתי האנטיביוטיקות רחבות הטווח המשמשות לטיפול בזיהומים הנגרמים על ידי H.pylori, אך מספר מחקרים דיווחו על עמידות נרחבת נגד שתי תרופות אלה במבודדי H.pylori. A2143G, A2142G ו-A2142C הן שלוש מתוך מוטציות נקודתיות רבות שנמצאו בגן rRNA 23S 2.9 kb שגורמות לעמידות לקלריתרומיצין על ידי מניעת קישור המקרוליד. יחד עם זאת, מוקדי המוטציה של הגן לעמידות ללבופלוקסצין ממוקמים בעיקר בששת אתרי המוטציות (A260T, C261A, T261G, G271A, G271T, A272G) של הגן gyrA 12. גילוי מנגנוני עמידות אלה המבוססים על מוטציות גנטיות הוביל למעבר הדרגתי בזיהוי H. pylori דרך מחקרים מבוססי תרבות לבדיקות מולקולריות.
באופן כללי, קיים צורך קליני דחוף בשיטת אבחון לא פולשנית, יעילה וסימולטנית לאיתור זיהומים בהליקובקטר פילורי ועמידות לתרופות. אימצנו בדיקת מחרוזת משולבת ושיטת qPCR כדי להתגבר על קשיי הדגימה ולהשיג את המטרה של זיהוי סימולטני של זיהום H. pylori ועמידות לתרופות באמצעות בדיקות פריימר שונות.
זיהוי H. pylori יכול להתבצע בשיטות פולשניות ולא פולשניות13. טכניקות פולשניות נפוצות כגון היסטופתולוגיה, בדיקת אוראז מהירה, תגובת שרשרת פולימראז (PCR) ותרבית חיידקים דורשות אנדוסקופיה וביופסיה. בדיקות סרולוגיות, בדיקות נשימה של אוריאה ובדיקות אימונוסורבנטיות מקושרות אנזימים (…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי פרויקט Sanming של רפואה בשנג’ן (מענק מס ‘. SZSM201510050) וקרן המחקר הבסיסי והיישומי של גואנגדונג (מענק מס’ 2022A1515220023). קרן המחקר לכישרונות מתקדמים של בית החולים העממי המחוזי גואנדונג (לא. KJ012021097), והקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (81871734, 82072380, 82272423). למממנים לא היה כל תפקיד בעיצוב המחקר, באיסוף הנתונים ובניתוחם, בהחלטה לפרסם או בהכנת כתב היד.
23S rRNA and gyrA gene point mutations detection kit (PCR-Fluorescence Probing) | Hongmed Infagen | Detection of Helicobacter pylori resistance to clarithromycin and levofloxacin | |
ABI 7500 fluorescence quantitative PCR machine | Thermo Fisher Scientific | SEDA 20163220767 | Fluorescent quantitative PCR amplification |
ABI 7500 software | Thermo Fisher Scientific | Data Analysis | |
BSC-1500IIA2-X | BIOBASE | SEDA 20143222263 | Biosafety cabinet |
DNA extraction kit | Daan Gene | ||
E-Centrifuge | WEALTEC | Centrifuge the residual liquid off the wall of the tube. | |
H. Pylori DNA detection kit (PCR-Fluorescence Probing) | Hongmed Infagen | Testing for H. pylori infection | |
Stream SP96 automated nucleic acid extractor | Daan Gene | SEDA 20140104 | For DNA extraction |
String test kit | Hongmed Infagen | It contains a capsule attached to a string, scissors, cotton swab, and sample preservation tube | |
Ultra-low temperature freezers (DW-YL450) | MELING | SEDA 20172220091 | -20 °C for storing reagents |
Vortex-5 | Kylin-bell | For mixing reagent |