Summary

液体クロマトグラフィー、トラップ型イオンモビリティー分光分析、飛行時間型質量分析を用いたヒストン修飾スクリーニング(英語)

Published: January 12, 2024
doi:

Summary

液体クロマトグラフィー、トラップ型イオンモビリティー分光、飛行時間型質量分析(LC-TIMS-ToF MS/MS)に基づく分析ワークフローにより、主要パラメーター(保持時間[RT]、衝突断面積[CCS]、正確な質量電荷比[m/z])に基づくヒストン修飾および同定の高信頼性で再現性の高い「ボトムアップ」分析を実現します。

Abstract

ヒストンタンパク質は真核生物に豊富に存在し、保存されており、翻訳後修飾(PTM)として知られる構造の結果として、遺伝子制御に大きな役割を果たしています。外的要因または遺伝的要因を参照して、各PTMの位置と性質またはPTMのパターンを特定することで、この情報をDNA転写、複製、修復などの生物学的応答と統計的に相関させることができます。本研究では、生体試料からヒストンPTMを検出するためのハイスループット分析プロトコルについて説明します。相補的な液体クロマトグラフィー、トラップドイオンモビリティースペクトロメトリー、飛行時間型質量分析(LC-TIMS-ToF MS/MS)を使用することで、1 回の分析で最も生物学的に関連性の高い修飾を分離し、PTM に割り当てることができます。説明されているアプローチは、モビリティトラップでの並列蓄積とそれに続く連続的なフラグメンテーションと衝突による解離を使用した依存データ収集(DDA)の最近の開発を利用しています。Histone PTMは、保持時間、移動度、フラグメンテーションパターンに基づいて確実に割り当てられます。

Introduction

真核細胞では、DNAはクロマチンとしてヌクレオソームと呼ばれる機能単位にパッケージ化されています。これらのユニットは、4つのコアヒストン(H2A、H2B、H3、H4の各2つ)の八量体で構成されています1,2,3,4。ヒストンは、真核生物の中で最も豊富で保存性の高いタンパク質の一つであり、遺伝子調節に大きく関与しています5。ヒストンの翻訳後修飾(PTM)は、クロマチン動態の調節に大きな役割を果たし、DNAの転写、複製、修復などのさまざまな生物学的プロセスに関与しています6。PTMは、主にDNAと接触しているヒストンのN末端領域のアクセス可能な表面に発生します3,7。しかし、尾部とコアの修飾はクロマチン構造に影響を与え、ヌクレオソーム間の相互作用を変化させ、特定のタンパク質を動員します3,8

液体クロマトグラフィー質量分析(LC-MS)ベースのプロテオミクスにおける現在の課題は、目的の分析種の共溶出の可能性です。データ依存性分析(DDA)の場合、これはMS/MS取り込みプロセス中にいくつかのプリカーサーイオンが失われる可能性があることを意味します9。飛行時間型(ToF)機器は、非常に高い周波数9,10(最大数十kHz)でスペクトルを取得します11。これにより、複合体サンプル(MS1)内の全プリカーサーイオンを迅速にスキャンできるため、最適な感度とMS/MSシーケンシングレート(最大100 Hz)が約束され9、生物学的サンプル分析に理想的です10。それにもかかわらず、これらの高いスキャンレートで利用可能な感度は、MS/MSレート9によって制限されます。これらの制限を軽減するために、直交四重極飛行時間型(qToF)質量分析計と組み合わせたトラップドイオンモビリティースペクトロメトリー(TIMS)の追加が使用されました。TIMSでは、すべての前駆体イオンは、四重極9で単一の前駆体質量を選択するのではなく、それらの移動度の関数としてタンデムで蓄積され、溶出されます。PASEF(Parallel Accumulation-Serial Fragmentation)により、感度を損なうことなく、毎秒数百のMS/MSイベントを処理できます9。

この研究の主な目的は、移動トラップでの並列蓄積とそれに続く連続的な断片化と衝突誘起解離(CID)を使用して、DDAの最近の発展を示すことでした。Histone PTM は、保持時間(RT)、移動度、およびフラグメンテーションパターンに基づいて、自信を持って割り当てました。

Protocol

注:ヒストンサンプルは、Bhanu et al.(2020)12から採用された方法を使用して抽出されました。 1. サンプル調製 培養細胞の回収細胞が80%コンフルエントになったら、トリパンブルー排除法を用いて細胞が生存可能であることを確認します。注:これらの実験にはHeLa S3細胞株を使用しましたが、この方法はあらゆる培養細胞に適用?…

Representative Results

ボトムアッププロテオミクスワークフロー(図7)では、通常、粗サンプルから標的タンパク質を抽出し、タンパク質の濃度を定量し、通常はゲル電気泳動または液体クロマトグラフィーで分画します。分画後、タンパク質はタンパク質分解酵素(しばしばトリプシン)を用いて消化され、最後に、得られたペプチドの質量分析および確立されたデータベースを用いたタンパ?…

Discussion

ヒストンは、4つのコアヒストン(H2A、H2B、H3、H4の各2つ)からなる八量体の形でDNAと相互作用することにより、クロマチン構造を調節する基本的なタンパク質です20。ヒストンには多数のリジン残基とアルギニン残基が含まれており、これらは容易に修飾され、ヒストン機能に影響を与えたり、他の細胞タンパク質に結合したりしてクロマチンの化学的性質を変化させる広範な…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この資料は、助成金番号の下で全米科学財団が支援する研究に基づいています。HRD-1547798およびグラント番号HRD-2111661 です。これらのNSF助成金は、科学技術研究センター(CREST)プログラムの一環としてフロリダ国際大学に授与されました。これは、フロリダ国際大学の卓越したプログラムである環境研究所からの寄稿番号1672です。米国国立衛生研究所(NIH)は、助成金No.フランシスコ・フェルナンデス・リマとグラントNo.にR21AI135469。ベンジャミン・A・ガルシア(Benjamin A. Garcia)にR01HD106051され、全米科学財団(National Science Foundation)から助成金番号で授与された。CHE-2127882 から Benjamin A. Garcia 宛て。著者らは、分析法開発の初期における Mario Gomez Hernandez 博士の初期サポートに感謝します。

Materials

-80 °C Freezer
1x Phosphate Buffered Saline (PBS), pH 7.4 Thermo Fisher Scientific 10010023 Animal Origin-Free
1 mL Pipette Tips Thermo Fisher Scientific 94060710 Finntip Flex 1000 μL, nonsterile, nonfiltered, racked tips
1.5 mL Microcentrifuge Tubes Thermo Fisher Scientific 14-282-300 Use these tubes for the simple and safe processing of sample volumes up to 1.5 mL
10 µL Pipette Tips Thermo Fisher Scientific 94060100 Finntip Flex, 10 μL, nonsterile, non-filtered, racked
10% NP-40 Thermo Fisher Scientific 28324 NP-40 Surfact-Amps Detergent Solution
10x Dulbecco’s PBS without Ca2+/Mg2+ (Mediatech) MT21031CM
15 mL Conical Tubes Corning 352196 Falcon Conical Centrifuge Tubes
200 µL Gel-Loading Pipette Tips Thermo Fisher Scientific 02-707-138 Fisherbrand Gel-Loading Tips, 1–200 μL
200 µL Pipette Tips Thermo Fisher Scientific 94060310 Finntip Flex 200μL, nonsterile, nonfiltered, racked tips
2x Laemmli Sample Buffer Bio-Rad 1610737 Premixed protein sample buffer for SDS-PAGE
50 mL Conical Tubes Corning 352070 Falcon Conical Centrifuge Tubes
96-well flat bottom plate Thermo Fisher Scientific 12565501
96-well plate, V-Bottom 600 μL Axygen P-DW-500-C-S
Acetone Sigma Aldrich 179124 ACS reagent, ≥99.5%
Acetonitrile (ACN) Thermo Fisher Scientific A998 HPLC, Fisher Chemical
Acetonitrile with 0.1% Formic acid (v/v), LC/MS Grade Thermo Fisher Scientific LS120 Optima LC/MS Grade, Thermo Scientific
AEBSF Thermo Fisher Scientific 328110500 AEBSF hydrochloride, 98%
Ammonium bicarbonate, NH4HCO3 Sigma Aldrich 09830 BioUltra, ≥99.5% (T)
Ammonium hydroxide solution, NH4OH Sigma Aldrich AX1303 Meets ACS Specifications, Meets Reagent Specifications for testing USP/NF monographs GR ACS
Argon (Ar) Airgas AR HP 300
BEH C18 HPLC column Waters 186003625 XBridge Peptide BEH C18 Column, 300 Å, 5 µm, 4.6 mm X 250 mm, 1K–15K
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma Aldrich A7906 Heat shock fraction, pH 7, ≥98%
Calcium chloride, CaCl2 Sigma Aldrich C4901 Anhydrous, powder, ≥97%
Cell dissociation buffer Thermo Fisher Scientific 13151014
Ceramic scoring wafer Restek 20116
Compass DataAnalysis 6.0 Bruker Datonics
Compass HyStar 6.2 Bruker Daltonics
Compass IsotopePattern Bruker Daltonics
Compass timsControl 4.1 Bruker Daltonics
Coomassie Brilliant Blue R-250 Bio-Rad 1610436
Deep Well, 96-Well Microplate, 2.0 mL Thermo Fisher Scientific 89237526
Disposable Cell Lifters Thermo Fisher Scientific  08100240 Fisherbrand Cell Lifters; Disposable lifters quickly remove cell layers
Disposable Pellet Pestles Thermo Fisher Scientific 12-141-363 Fisherbrand Pellet Pestles; Resuspend protein and DNA pellets or grind soft tissue in microcentrifuge tubes
Dithiothreitol (DTT) Thermo Fisher Scientific P2325 1 M
Formic acid (FA) Sigma Aldrich 695076 ACS reagent, ≥96%
Fused silica capillary 75 μm ID x 363 μm OD (Molex (Polymicro) TSP075375
Glacial Acetic Acid Thermo Fisher Scientific A38S Acetic Acid, Glacial (Certified ACS), Fisher Chemical
Glass Pasteur Pipettes Sigma Aldrich BR747725-1000EA
High-Performance Liquid Chromatograph  Shimadzu Shimadzu Prominence 20 HPLC UFLC System
Hydrochloric acid, HCl Sigma Aldrich 258148 ACS reagent, 37%
Hypercarb 30-40 μm Carbon 150–300 Å Thermo Fisher Scientific 60106-402
Hypersep cartridge Thermo Fisher Scientific 60109-404
LC/MS Calibration Standard, for ESI-ToF Agilent G1969-85000 TuningMix
Magnesium chloride, MgCl2 Sigma Aldrich M8266 Anhydrous, ≥98%
Methanol, for HPLC Thermo Fisher Scientific A454 Optima for HPLC, Fisher Chemical  
Microcentrifuge Tube Adapters GL Sciences 501021514
Microcystin Thermo Fisher Scientific 50-200-8727 Enzo Life Sciences Microcystin-LA
MS sample vial, LaPhaPack, Snap, 12 mm x 32 mm LEAP PAL Parts LAP.11190933
Nanodrop Thermo Fisher Scientific model: ND3300
Nitrogen (N2) Airgas NI UHP300
PEAKS Studio X+ Bioinformatic Solutions
pH indicator strips, Instachek Micro Essential Lab JR-113 Model: Hydrion
Potassium chloride, KCl Sigma Aldrich P3911 ACS reagent, 99.0%–100.5%
Pressure Injection Cell Next Advance  model: PC77
Propionic Anhydride Sigma Aldrich 8.00608 For synthesis
Refrigerated Centrifuge (700–18,000 x g) NuAire, model: Nuwind NU-C200V
Reprosil-Pur 120 C18-AQ 3 μm, 3 g ESI Source Solutions r13.aq.0003
SDS-PAGE Gels Bio-Rad 4569035 Any kD precast polyacrylamide gel, 8.6 cm × 6.7 cm (W × L), for use with Mini-PROTEAN Electrophoresis Cells
Sodium butyrate Thermo Fisher Scientific A11079.06 98+%
Sodium chloride, NaCl Sigma Aldrich S9888 ACS reagent, ≥99.0%
SPE disk, C18 VWR 76333-134 Empore SPE disk, C18, CDS Analytical, 90 mm x 0.5 mm, 12 µm
SpeedVac+ vacuum pump and plate rotor Savant model: SC210A
Sucrose Millipore 1.07651 suitable for microbiology
Sulfuric acid, H2SO4  Sigma Aldrich 339741 99.999%
TIMS-ToF Mass Spectrometer Bruker Daltonics model Tims tof ms
Trichloroacetic acid solution, TCA Sigma Aldrich T0699 6.1 N
Trifluoroacetic acid (TFA) Sigma Aldrich 302031 Suitable for HPLC, ≥99.0%
Triversa Nanomate Advion model: TR263
TrypsinProtease, MS Grade Thermo Fisher Scientific 90057
Tube rotator Thermo Fisher Scientific 88881001
Vortex Mixer Thermo Fisher Scientific 88880017
Water with 0.1% Formic acid (v/v), LC/MS Grade Thermo Fisher Scientific LS118 Optima LC/MS Grade, Thermo Scientific 

References

  1. Zhao, Z., Shilatifard, A. Epigenetic modifications of histones in cancer. Genome Biology. 20, 245 (2019).
  2. Luger, K., Mader, A. W., Richmond, R. K., Sargen, D. F., Richmond, T. J. Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 Å resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  3. Bentley, G. A., Lewit-Bentley, A., Finch, J. T., Podjarny, A. D., Roth, M. Crystal structure of the nucleosome core particle at 16 Å resolution. Journal of Molecular Biology. 176 (1), 55-75 (1984).
  4. Kornberg, R. D., Thomas, J. O. Chromatin structure: Oligomers of the histones: The histones comprise an (F2A1)2(F3)2 tetramer, a different oligomer of F2A2 and F2B, and monomer of F1. Science. 184 (4139), 865-868 (1974).
  5. Borghini, A., Cervelli, T., Galli, A., Andreassi, M. G. DNA modifications in atherosclerosis: From the past to the future. Atherosclerosis. 230 (2), 202-209 (2013).
  6. Jeanne Dit Fouque, K., et al. 34;Double-Down" mass spectrometry of histone H4 proteoforms: Tandem ultraviolet-photon and mobility/mass-selected electron capture dissociations. Analytical Chemistry. 94 (44), 15377-15385 (2022).
  7. Lawrence, M., Daujat, S., Schneider, R. Lateral thinking: How histone modifications regulate gene expression. Trends in Genetics. 32 (1), 42-56 (2016).
  8. Bannister, A. J., Kouzarides, T. Regulation of chromatin by histone modifications. Cell Research. 21 (3), 381-395 (2011).
  9. Meier, F., et al. Parallel accumulation-serial fragmentation (PASEF): Multiplying sequencing speed and sensitivity by synchronized scans in a trapped ion mobility device. Journal of Proteome Research. 14 (12), 5378-5387 (2015).
  10. Chernushevich, I. V., Loboda, A. V., Thomson, B. A. An introduction to quadrupole-time-of-flight mass spectrometry. Journal of Mass Spectrometry. 36 (8), 849-865 (2001).
  11. Andrews, G. L., Simons, B. L., Young, J. B., Hawridge, A. M., Muddiman, D. C. Performance characteristics of a new hybrid quadrupole time-of-flight tandem mass spectrometer (TripleTOF 5600). Analytical Chemistry. 83 (13), 5442-5446 (2011).
  12. Bhanu, N. V., Sidoli, S., Garcia, B. A Workflow for ultra-rapid analysis of histone posttranslational modifications with direct-injection mass spectrometry. Bio-Protocol. 10 (18), e3756 (2020).
  13. Xue, A., et al. Discovery of serum biomarkers for pancreatic adenocarcinoma using proteomic analysis. British Journal of Cancer. 103 (3), 391-400 (2010).
  14. Wang, Y., et al. Reversed-phase chromatography with multiple fraction concatenation strategy for proteome profiling of human MCF10S cells. Proteomics. 11 (10), 2019-2026 (2011).
  15. Mertins, P., et al. Integrated proteomic analysis of posttranslational modifications by serial enrichment. Nature Methods. 10 (7), 634-637 (2012).
  16. Meier, F., Park, M. A., Mann, M. Trapped ion mobility spectrometry and parallel accumulation-serial fragmentation in proteomics. Molecular & Cellular Proteomics. 20, 100138 (2021).
  17. Romson, J., Emmer, A. Mass calibration options for accurate electrospray ionization mass spectrometry. International Journal of Mass Spectrometry. 467, 11619 (2021).
  18. Dupree, E. J., Jayathirtha, M., Yorkie, H., Mihasan, M., Petre, B. A., Darie, C. C. A critical review of bottom-up proteomics: The good, the bad, and the future of this field. Proteomes. 8 (3), 14 (2020).
  19. Ho, C. M., et al. Bottom-up structural proteomics: cryoEM of protein complexes enriched from the cellular milieu. Nature Methods. 17 (1), 79-85 (2020).
  20. Eickbush, T., Moudrianakis, E. The histone core complex: an octamer assembled by two sets of protein-protein interactions. Biochimie. 17 (23), 4955-4964 (1978).
  21. Sadakierska-Chudy, A., Filip, M. A Comprehensive view of the epigenetic landscape. Part II: Histone posttranslational modification, nucleosome level, and chromatin regulation by ncRNAs. Neurotoxicity Research. 27 (2), 172-197 (2015).
  22. Tan, H. T., Low, J., Lim, S. G., Chung, M. C. M. Serum autoantibodies as biomarkers for early cancer detection. The FEBS Journal. 276 (23), 6880-6904 (2009).
  23. Huang, R. X., Zhou, P. K. DNA damage response pathways and targets for radiotherapy sensitization in cancer. Signal Transduction and Targeted Therapy. 5 (1), 60 (2020).
  24. Dantuma, N. P., van Attikum, H. Spatiotemporal regulation of posttranslational modifications in the DNA damage response. The EMBO Journal. 35 (1), 6-23 (2016).
  25. Tanner, S., Pevzner, P. A., Bafna, V. Unrestrictive identification of posttranslational modifications through peptide mass spectrometry. Nature Protocols. 1 (1), 67-72 (2006).
  26. Dolan, J. LC column problems everywhere 1. LCGC North America. 28 (9), 500-504 (2015).
  27. Brusniak, M. K., et al. An assessment of current bioinformatic solutions for analyzing LC-MS data acquired by selected reaction monitoring technology. Proteomics. 12 (8), 1176-1184 (2012).
  28. Cham, J. A., Bianco, L., Bessant, C. Free computational resources for designing selected reaction monitoring transitions. Proteomics. 10 (6), 1106-1126 (2010).
  29. Colangelo, C. M., Chung, L., Bruce, C., Cheung, K. Review of software tools for design and analysis of large scale MRM proteomic datasets. Methods. 61, 287-298 (2013).

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Citer Cet Article
Fernandez-Rojas, M., Fuller, C. N., Valadares Tose, L., Willetts, M., Park, M. A., Bhanu, N. V., Garcia, B. A., Fernandez-Lima, F. Histone Modification Screening using Liquid Chromatography, Trapped Ion Mobility Spectrometry, and Time-Of-Flight Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (203), e65589, doi:10.3791/65589 (2024).

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