Summary

使用禽皮肤外植体研究组织模式和器官发生

Published: September 15, 2023
doi:

Summary

在这里,我们描述了三种类型的禽胚胎皮肤外植体培养物的方案,可用于检查组织相互作用、4D 成像延时电影(3D 加时间)、分子功能的全局或局部扰动以及系统生物学表征。

Abstract

在胚胎发生过程中发育的鸟类皮肤是一个独特的模型,可以为组织模式化提供有价值的见解。这里描述了皮肤外植体培养的三种变体,以检查皮肤发育的不同方面。首先, 离体 器官培养和操作为研究人员提供了直接观察和研究羽毛芽发育的机会。皮肤外植体培养物可以生长 7 天,从而能够直接分析细胞行为并在此生长期间每隔一段时间进行 4D 成像。这还允许对培养条件进行物理和分子操作,以可视化组织反应。例如,生长因子包被的珠子可以局部应用,以在有限的区域内诱导羽毛图案的变化。或者,病毒转导可以在培养基中在全球范围内递送,以上调或下调基因表达。其次,皮肤重组方案使研究人员能够研究表皮和间充质之间的组织相互作用,这些相互作用来自不同的皮肤区域、不同的生命阶段或不同的物种。这提供了一个机会来测试上皮细胞能够对信号做出反应的时间窗口,以及它形成不同皮肤附属物以响应来自不同间充质来源的信号的能力。第三,使用与完整上皮细胞覆盖的解离真皮细胞进行皮肤重建,可以重置皮肤发育,并能够研究周期性图案的初始过程。这种方法还增强了我们在创建重建的皮肤外植体之前操纵解离细胞中基因表达的能力。本文提供了三种培养方案和示例实验来证明其实用性。

Introduction

禽胚胎皮肤发育是研究形态发生机制的极好模型,因为它具有独特的模式以及显微外科手术和操作的可及性1,2。然而,评估完整组织中的细胞和分子事件可能很困难,因为外来组织的存在会使显微镜观察复杂化。此外,操纵基因表达以测试其在皮肤形态发生中的作用的能力并不总是一项简单的任务。我们发现我们可以使用逆转录病毒转导来测试基因功能,使用皮肤外植体模型具有更高的成功率。在这里,我们讨论了已经开发的三种皮肤外植体模型的优点。

禽胚胎皮肤培养是一种强大的系统,用于评估皮肤羽毛芽发育过程中的细胞行为、基因调控和功能3,4,5,6。它允许通过在培养基中放置生长因子的全局添加或它们从生长因子包被的珠子中局部释放来评估羽毛芽发育的分子机制。发育调控基因也可以使用完整或显性阴性形式的病毒基因转导进行操作,用于功能研究,评估它们在特定形态发生事件中的作用 7,8

禽上皮间充质重组培养 使研究人员能够确定每种皮肤成分在皮肤形态发生的早期阶段的贡献。罗尔斯(Rawles)对这种方法的使用揭示了间充质和上皮之间的相互作用对于形成皮肤附属物至关重要9。间充质可以形成凝结,需要上皮来诱导和维持间充质凝结的形成2.后来,这种方法被用来评估 为什么无鳞 鸡无法形成羽毛。发现缺陷位于间充质10 中。Dhouailly对不同物种的胚胎进行了组织上皮-间充质重组研究。这些研究为促进皮肤形态发生的上皮-间充质通讯提供了发育和进化的见解3.

这项研究被用来更好地了解控制羽毛生长的因素。该方法还改善了在羽毛起始、发育和沿前后轴伸长过程中发生的皮肤图案中涉及的细胞和分子事件的可视化。当上皮细胞与间充质分离,然后将两种成分重新组合时,新的相互作用会重新建立皮肤模式。这种方法使我们能够评估间充质诱导信号和上皮能力分子,这些信号和上皮能力分子使表皮能够对间充质信号做出反应11。还可以检查羽毛芽发育和模式形成所需的后续下游分子表达。这些研究已经确定,芽的位置是由间充质控制的。在与间充质重组之前,上皮细胞的旋转 90o 表明羽毛芽伸长的方向受上皮细胞的控制。该方法对于我们研究调控羽毛芽取向的分子机制至关重要12

禽皮肤重建培养,其中皮肤间充质解离为单细胞,然后以高细胞密度铺板并覆盖完整的上皮,将真皮细胞重置为原始状态。然后,外植体自我组织,形成独立于先前线索的新周期性模式13。这种皮肤重建模型可用于研究羽毛周期性图案的初始过程。我们使用这种方法来探索调节间充质细胞与单块上皮细胞的比例如何影响羽毛芽的大小或数量。发现随着间充质细胞比例的增加,芽的数量增加,但芽的大小没有增加。这种方法的另一个优点是,间充质细胞病毒转导比其他两种培养条件显示出更高的效率,并且可以产生更明显的表型。

Protocol

1.鸡皮外植体培养(图1) 在38°C的加湿培养箱中孵育受精的鸡蛋,并根据汉堡和汉密尔顿14进行分期。在第 28 阶段 (~E5.5),肢体的第二趾和第三脚趾比其他趾长;三个手指和四个脚趾是不同的。 在第 29 阶段 (~E6),机翼在肘部弯曲;第二个数字明显比其他数字长。 在第 30 阶段 (~E6.5)?…

Representative Results

皮肤外植体培养从离体皮肤器官培养物中可以直接在显微镜下观察到羽毛芽的发育。使用鸡第 30 阶段背皮的皮肤外植体培养模型,沿中线可以看到斑块。然后,形态发生前沿逐渐向皮肤周边横向传播,形成新的羽毛原基。这些羽毛原基在培养 2 天后会发育成短羽毛芽,培养 4 天后会发育成长羽毛芽(图 1)。 皮肤重组培养</s…

Discussion

组织重组提供了一种探索上皮细胞和间充质独特贡献的测定方法。在鸡中,羽毛在胚胎第 7 天 (E7) 开始发育,而鳞片从 E9 开始发育。当E9鳞片间充质与E7羽毛上皮重组时,重组组织形成鳞片,当E7羽毛间充质与E9鳞片上皮羽毛重组时形成11。这些研究表明,间充质控制着模式形成、间距和器官身份。当然,上皮细胞必须有能力能够适当地接收和解释间充质信号。能力只存在于上?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了 NIH NIAMS 拨款 R37 AR 060306、R01 AR 047364 和 RO1 AR078050的支持。这项工作还得到了南加州大学和台湾中国医药大学之间的合作研究合同的支持。我们感谢 USC BISC 480 发育生物学 2023 课程在几个实验室模块中成功测试了这种禽类皮肤培养协议。

Materials

6-well culture dish  Falcon REF 353502 Air-Liquid Interface (ALI) Cultures  
Cell culture inset  Falcon REF 353090. 0.4 µm Transparent PET Membrane
Collagenase Type 1 Worthington Biochemical LS004196
Dulbecco’s modified Eagle’s medium  Corning 10-013-CV 4.5 g/L glucose
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (EDTA) Sigma-Aldrich E5134
Fetal bovine serum ThermoFisher 16140-071
Glucose Sigma-Aldrich G8270
Hanks’s buffered saline solution Gibco 14170-112 No calcium, no magnesium
Penicillin/streptomycin  Gibco 15-140-122
Pogassium phosphate monobasic (KH2PO4) Sigma-Aldrich P5379
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P9333
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma-Aldrich S6014
Sodium chloride (Nacl) EMD  CAS 7647-14-5
Sodium phosphate monobasic (NaH2PO4) Sigma-Aldrich S0751
Trypsin Gibco 27250-042

References

  1. Lucas, A. M., Stettenheim, P. R. Avian anatomy: Integument part I and part II. Agriculture Handbook. 362, (1972).
  2. Sengel, P. . In Morphogenesis of Skin, l-277. , (1976).
  3. Dhouailly, D., Wilehm Roux, . Formation of cutaneous appendages in dermo-epidermal recombinations between reptiles, birds and mammals. Archives of Developmental Biology. 177 (4), 323-340 (1975).
  4. Jiang, T. -. X., Chuong, C. -. M. Mechanism of feather morphogenesis: I. Analyses with antibodies to Adhesion Molecules Tenascin, N-CAM and Integrin. Biologie du développement. 150 (1), 82-98 (1992).
  5. Li, A., et al. Shaping organs by a Wnt / Notch / non-muscle myosin module which orients feather bud elongation. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 110 (16), E1452-E1461 (2013).
  6. Li, A., et al. Calcium oscillations coordinate feather mesenchymal cell movement by SHH dependent modulation of gap junction networks. Nature Communications. 9 (1), 5377 (2018).
  7. Ting-Berreth, S. A., Chuong, C. M. Local delivery of TGF beta2 can restore epithelium dependent organization of mesenchymal condensation during skin appendage morphogenesis. Biologie du développement. 179 (2), 347-359 (1996).
  8. Widelitz, R. B., Jiang, T. -. X., Noveen, A., Chen, C. -. W. J., Chuong, C. -. M. FGF induces new feather buds from developing avian skin. Journal of Investigation Dermatology. 107 (6), 797-803 (1996).
  9. Rawles, M. E. Tissue interactions in scale and feather development as studies in dermal-epidermal recombinations. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 11, 765-789 (1963).
  10. McAleese, S. R., Sawyer, R. H. Correcting the phenotype of the epidermis from chick embryos homozygous for the gene scaleless (sc/sc). Science. 214 (4524), 1033-1034 (1981).
  11. Chuong, C. M., Widelitz, R. B., Ting-Berreth, S., Jiang, T. X. Early events during avian skin appendage regeneration: dependence on epithelial-mesenchymal interaction and order of molecular reappearance. J Invest Dermatol. 107 (4), 639-646 (1996).
  12. Jiang, T. X., et al. Global feather orientations changed by electric current. iScience. 24 (6), 102671 (2021).
  13. Jiang, T. X., Jung, H. S., Widelitz, R. B., Chuong, C. M. Self-organization of periodic patterns by dissociated feather mesenchymal cells and the regulation of size, number and spacing of primordia. Development. 126 (22), 4997-5009 (1999).
  14. Hamburger, V., Hamilton, H. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 188, 49-92 (1951).
  15. Chen, Y. P., et al. Conservation of early odontogenic signaling pathway in Aves. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 97 (18), 10044-10049 (2000).
  16. Chuong, C. -. M., Ting, S. A., Widelitz, R. B., Lee, Y. S. Mechanism of Skin Morphogenesis: II. Retinoic acid gradient modulates axis orientation and phenotypes of skin appendages. Development. 115 (3), 839-852 (1992).
  17. Noveen, A., Jiang, T. -. X., Chuong, C. -. M. Protein kinase A and protein kinase C modulators have reciprocal effects on mesenchymal condensation during skin appendage morphogenesis. Biologie du développement. 171 (2), 677-693 (1995).
  18. Wu, X. S., et al. Self-assembly of biological networks via adaptive patterning revealed by avian intradermal muscle network formation. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 116 (22), 10858-10867 (2019).

Play Video

Citer Cet Article
Jiang, T., Secor, M., Lansford, R., Widelitz, R. B., Chuong, C. M. Using Avian Skin Explants to Study Tissue Patterning and Organogenesis. J. Vis. Exp. (199), e65580, doi:10.3791/65580 (2023).

View Video