כאן, מתוארת שיטה מבוססת לביצוע מדידות התכווצות וסידן בקרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם באמצעות פלטפורמה מבוססת אופטיקה. פלטפורמה זו מאפשרת לחוקרים לחקור את השפעת המוטציות ואת התגובה לגירויים שונים באופן מהיר וניתן לשחזור.
קרדיומיוציטים פלוריפוטנטיים המושרים על ידי תאי גזע אנושיים (hiPSC-CMs) מייצגים כלי רב עוצמה לחקר שינויים בתיווך מוטציות בתפקוד קרדיומיוציטים והגדרת ההשפעות של גורמי לחץ והתערבויות תרופתיות. במחקר זה, הוכח כי מערכת מבוססת אופטיקה זו היא כלי רב עוצמה להערכת הפרמטרים הפונקציונליים של hiPSC-CMs בדו-ממד. באמצעות פלטפורמה זו, ניתן לבצע מדידות זוגיות בסביבת טמפרטורה שמורה היטב על פריסות לוחות שונות. יתר על כן, מערכת זו מספקת לחוקרים ניתוח נתונים מיידי.
מאמר זה מתאר שיטה למדידת ההתכווצות של hiPSC-CMs שלא שונו. קינטיקה של התכווצות נמדדת ב-37°C בהתבסס על שינויי מתאם פיקסלים ביחס למסגרת ייחוס שנלקחה בהרפיה בתדירות דגימה של 250 הרץ. בנוסף, ניתן להשיג מדידות סימולטניות של מעברי סידן תוך תאיים על ידי העמסת התא עם פלואורופור רגיש לסידן, כגון Fura-2. באמצעות היפרסוויץ’, ניתן לבצע מדידות סידן יחסיות על נקודת הארה בקוטר 50 מיקרומטר, המתאימה לאזור מדידות ההתכווצות.
אי ספיקת לב היא סיבת המוות המובילה בעולם. בשנת 2019, מחלות לב וכלי דם גרמו ל -18.6 מיליון מקרי מוות ברחבי העולם, המשקף עלייה של 17.1% בעשור האחרון1. למרות מאמצי החוקרים לזהות מטרות תרופתיות למניעה וריפוי של אי ספיקת לב, תוצאות החולים עדיין גרועות2. ההבדל בפתופיזיולוגיה של מודלים של בעלי חיים ביחס לבני אדם יכול להיות אחד הגורמים הבסיסיים להצלחה המוגבלת של אופטימיזציה של טיפול באי ספיקת לב3. מודלים דמויי אדם נוספים נדרשים למדל מחלות ולבדוק את הרעילות והיעילות של תרכובות תרופות חדשות.
קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hiPSC-CMs) מייצגים כלי רב עוצמה להגדרת פתומנגנונים תאיים הנגרמים על ידי גורמי לחץ, איסכמיה, חילוף חומרים שונה או וריאנטים של גנים פתוגניים, ואת היעילות והרעילות של התערבויות תרופתיות4. כדי להגדיר השפעות על התכונות הפונקציונליות של hiPSC-CMs, מערכת במהירות גבוהה המודדת את התכונות הסיסטוליות והדיאסטוליות של התכווצויות סלולריות באופן בלתי משוחד וניתן לשחזור. המטרה הכוללת של המחקר הנוכחי היא להראות כי מערכת מבוססת אופטיקה היא כלי רב עוצמה לביצוע ניתוחים בזמן אמת של הפרמטרים הפונקציונליים של hiPSC-CMs.
נכון לעכשיו, ישנן פלטפורמות מרובות להערכת ההתכווצות של hiPSC-CMs. עם זאת, המערכות הנוכחיות מציעות קריאה איטית, או שמספר התאים הנדרש עשוי להוות אתגר. מערכות מדידת וידאו ללא תוויות5,6 מסתמכות על ניתוח פוסט-הוק של סרטונים, הדורש אחסון רב וחסר משוב ישיר במהלך רכישת וידאו. בנוסף, קשה להשיג רזולוציה זמנית ומרחבית מספקת, והיא עלולה לגרום לתת-דגימה. שיטות אחרות לקביעת תכונות קרדיומיוציטים, כגון חזרות פלינדרומיות קצרות מקובצות במרווחים קבועים (CRISPR)/HiPSC-CMs7 ערוכות Cas9 עם כתבים פלואורסצנטיים עשויות להפריע ליציבות הגנים של התאים ודורשות מומחיות מעבדה מיוחדת.
כדי להתגבר על המגבלות שהוזכרו לעיל, פותחה והוצגה במחקר זה מערכת מדידה ייחודית מבוססת אופטיקה. פלטפורמה זו מאפשרת מדידות כיווץ על hiPSC-CMs ללא שינוי פשוט על ידי ציפוי מחדש שלהם בכל פורמט צלחת נדרש, ללא כל הגבלה בגודל הצלחת. יתר על כן, מדידות בזמן אמת מאפשרות תצפית ישירה וניתוח של הפרמטרים הפונקציונליים של hiPSC-CMs, ובכך מספקות הגדרה ניסיונית להתאמה מיידית ואופטימיזציה של פרוטוקולים. יתר על כן, המיקום של כל מדידה נשמר, מה שמאפשר מדידות זוגיות על אותה דגימה, ובכך להגדיל את עוצמת הניסויים.
כדי להדגים את המערכת מבוססת האופטיקה, בוצעו מדידות כיווץ בקו בקרה hiPSC-CM. קו hiPSC בקרה זה נוצר מפיברובלסט עורי של תורם זכר בריא עם קריוטיפ8 תקין. קינטיקה של התכווצות נמדדה ב-37 מעלות צלזיוס, בהתבסס על שינויי מתאם פיקסלים ביחס למסגרת ייחוס שנלקחה במהלך הרפיה בתדר דגימה של 250 הרץ. מכיוון שלא תמיד ניתן לקבוע באופן חד משמעי את תחילת ההתכווצות, נקודת הזמן שבה הושגו 20% מגובה השיא (זמן לשיא 20%) נלקחה כנקודת המוצא למדידות של זמן לשיא. בכך נמצאה שונות פחותה לפרמטר זה במדגם אחד. באופן דומה, מכיוון שקשה להעריך את הרגע המדויק שבו האות חוזר לקו הבסיס, הזמן שלקח להגיע ל-80% מהחזרה לקו הבסיס מהשיא (זמן לקו הבסיס 80%) שימש לתיאור זמן הרגיעה.
מדידות ההתכווצות הכלליות כללו תדרי פעימות במנוחה, הזמן משיא של 20% להתכווצות שיא (TP. חסרונות), והזמן משיא ההתכווצות ל-80% מקו הבסיס (שחפת. Con80) (איור 1B). כדי לבדוק את ההשפעה של גורם דחק, התאים הודגרו עם איזופרנלין (ISO). בנוסף, במקרה עם מדידות התכווצות, Ca 2+ transients נמדדו על ידי העמסת התאים עם Fura-2-acetoxymethyl ester (Fura-2 AM) בתדר דגימה של 250 הרץ. מדידות Ca2+ רציומטריות9 באמצעות היפר-מתג נעשו על שטח הארה בקוטר 50 מיקרומטר, המתאים לאזור מדידות ההתכווצות. נתוני מדידה של Ca 2+ מתוארים כזמן משיא של 20% לשיא במעבר Ca2+ (TP.Ca) והזמן מהשיא ל-80% מקו הבסיס (TB.Ca80) (איור 1C). כלי ניתוח נתונים מהיר ואוטומטי שימש כדי להניב פרמטרים קינטיים של התכווצות וסידן ממוצעים עבור כל אזור.
במחקר זה מתוארת שיטה לביצוע מדידות התכווצות וסידן חולפות על hiPSC-CMs ולחקור את ההשפעה של גורמי סטרס/תרופות על תאים אלה. מדידות התכווצות, מדידות סידן יחסיות והתגובה ל-ISO בוצעו בשלושה סבבי התמיינות שונים כשכפולים ביולוגיים. עבור כל העתק ביולוגי, בוצעו מדידות על שלוש בארות כאשר השכפול הטכני. הסיבה לביצוע המדידות בדרך זו הייתה כדי להבטיח שניתן יהיה להעריך את השונות הביולוגית ואת השונות הטכנית של הדגימה והפלטפורמה. מלבד התחשבות במספר המתאים של שכפולים ביולוגיים וטכניים, מצב הרבייה hiPSC-CM יכול למלא תפקיד חשוב להשגת תוצאות קבועות וחזקות. חשוב להיות עקביים עם קריטריונים, כגון גיל hiPSC-CMs, הרכב בינוני, תנאי ציפוי מחדש, וזמן הדגירה המורכבת במהלך המדידות. במחקר זה, נדרשו בממוצע 568 ± 24 שניות כדי למדוד 11 אזורים פעמיים במשך 10 שניות בבאר אחת. זה כולל זמן דגירה ISO של 79 ± 11 שניות. זה מסתכם בערך 10 דקות לכל באר, מה שאמור לאפשר לחוקרים למדוד צלחת מלאה של 24 בארות ב~4 שעות. בקרת האקלים משמשת לשמירה על CO2 יציב. זה מאפשר למדוד את ההשפעה של תרכובות / גורמי עקה על hiPSC-CMs במהירות גבוהה.
כדי למדוד את תפקוד ההתכווצות של iPSC-CMs, קיימות מספר מערכות המסתמכות על אופטוגנטיקה13 או מיקרוסקופיה מבוססת וידאו ללא תוויות 5,6. מערכות אופטוגנטיקה הן מורכבות למדי ודורשות טכניקות מיוחדות כדי להשיג נתונים אלקטרופיזיים ו / או התכווצות. מערכות אחרות מסתמכות על ניתוח פוסט-הוק של סרטונים, הדורש אחסון רב וחסר משוב ישיר במהלך רכישת וידאו. בנוסף, קשה להשיג רזולוציה זמנית ומרחבית מספקת, מה שעלול לגרום לתת-דגימה. באופן דומה, hiPSC-CMs ערוכים על ידי CRISPR/CAS-9 עם כתבים פלואורסצנטיים7 עלולים לגרום להשפעות לא רצויות על התנהגות קרדיומיוציטים. השימוש בצבעים פלואורסצנטיים למדידות התכווצות-הרפיה הוא גם גישה אלגנטית, אך מגביל ביצוע ניסויים על אותה דגימה על פני תקופה ארוכה יותר14.
פלטפורמת מדידה מבוססת אופטיקה זו, לעומת זאת, יכולה לשמש למדידת זמני התכווצות-הרפיה ללא שימוש בצבע פלואורסצנטי או בשיטות פולשניות. עם זאת, מכיוון שמתאם פיקסלים אינו מספק מידע מרחבי, לא ניתן להשתמש בשיטה זו כדי למדוד את עוצמת ההתכווצות, אלא רק לזהות באופן אמין שינויים במהירות ההתכווצות וההרפיה. מערכת המדידה שהוצגה היא מבוקרת טמפרטורה ויכולה לקבל נתוני סידן והתכווצות בזמן אמת ברזולוציה של >200 פריימים לשנייה. בנוסף, נשמר המיקום של כל מדידה, מה שמאפשר מדידות זוגיות, ובכך מגדיל את עוצמת הניסויים. יתר על כן, פלטפורמה זו מספקת לחוקרים את היכולת לאחסן נתונים ולנתח אותם מיד לאחר הניסוי. בסך הכל, מערכת מדידה מבוססת אופטיקה זו מתגלה כשיטה מבטיחה לחקר פתומנגנונים תאיים, יכולה להעריך את ההשפעה של תרכובות על הפונקציונליות של hiPSC-CMs, ויכולה לעזור בתהליך הפרה-קליני בסינון תרופות.
The authors have nothing to disclose.
מחקר זה מומן בחלקו על ידי מענק Eurostars Estars2 113937 CARDIOMYO (EM & DK), ומענק NWO-VICI 91818602 (JV).
µ-Plate 24 Well Black ID 14 mm | ibidi | 82421 | |
B-27 Supplement (50x) | Thermo Fisher | 17504044 | |
CytoSolver transient analysis tool | CytoCypher | A fast automatic data analysis tool | |
DMEM/F-12 | Thermo Fisher | 11320033 | |
Fura-2, AM | Thermo Fisher | F1221 | |
Isoprenaline hydrochloride | Merck | 15627 | |
KnockOut™ Serum Replacement | Thermo Fisher | 10828010 | |
Matrigel | Merck | CLS3542C | Basement membrane |
MultiCell CytoCypher with Nikon 20x Super Fluor objective and 730 nm LED light source and Ionwizard software | CytoCypher | Optics-based measurement system | |
ROCK inhibitor Y-27632 | Tocris | 1254 | |
RPMI 1640 | Thermo Fisher | 11875119 | |
Tyrode | Self-made solution with final concentration of the following components: NaCl 134 mM, KCl 5 mM, Hepes 12 mM, MgSO4 1.2 mM, NaH2PO4 H2O 1.2 mM, Glucose 11 mM, Sodium Pyrovate 5 mM, 1 mM CaCl2 |