Summary

Imagem de células vivas de globos ex vivo intactos usando um novo suporte impresso em 3D

Published: October 06, 2022
doi:

Summary

O presente trabalho descreve um novo protocolo experimental que utiliza um suporte impresso em 3D para permitir imagens de células vivas de alta resolução de globos enucleados. Através deste protocolo, a atividade de sinalização celular de cálcio no epitélio corneano ferido de globos ex vivo pode ser observada em tempo real.

Abstract

A cicatrização de feridas epiteliais da córnea é um processo migratório iniciado pela ativação de receptores purinérgicos expressos em células epiteliais. Essa ativação resulta em eventos de mobilização de cálcio que se propagam de célula para célula, que são essenciais para iniciar a motilidade celular no leito da ferida, promovendo a cicatrização eficiente da ferida. O laboratório Trinkaus-Randall desenvolveu uma metodologia para a imagem da resposta de cicatrização de feridas corneanas em globos murinos ex vivo em tempo real. Esta abordagem envolve a enucleação de um globo intacto a partir de um rato que foi sacrificado de acordo com os protocolos estabelecidos e incubação imediata do globo com um corante indicador de cálcio. Uma contramancha que mancha outras características da célula pode ser aplicada nesta fase para ajudar com a imagem e mostrar marcos celulares. O protocolo funcionou bem com vários corantes de células vivas diferentes usados para contracoloração, incluindo actina SiR para manchar actina e coloração de membrana plasmática vermelha profunda para manchar a membrana celular. Para examinar a resposta a uma ferida, o epitélio da córnea é ferido usando uma agulha de 25 G, e os globos são colocados em um suporte impresso em 3D. As dimensões do suporte impresso em 3D são calibradas para garantir a imobilização do globo durante toda a duração do experimento e podem ser modificadas para acomodar olhos de diferentes tamanhos. A imagem de células vivas da resposta da ferida é realizada continuamente em várias profundidades em todo o tecido ao longo do tempo usando microscopia confocal. Este protocolo nos permite gerar imagens de alta resolução e qualidade de publicação usando uma objetiva de ar de 20x em um microscópio confocal. Outros objetivos também podem ser usados para este protocolo. Representa uma melhora significativa na qualidade da imagem de células vivas em globos murinos ex vivo e permite a identificação de nervos e epitélio.

Introduction

Córnea
A córnea é uma estrutura clara e avascular que cobre a superfície anterior do olho que refrata a luz para permitir a visão e protege o interior do olho de danos. Como a córnea é exposta ao meio ambiente, é suscetível a danos causados por causas mecânicas (arranhões) e por infecções. Uma lesão na córnea em um paciente saudável normalmente cura dentro de 1-3 dias. No entanto, em pacientes com condições subjacentes, incluindo deficiência de células-tronco límbicas e diabetes tipo II, o processo de cicatrização de feridas na córnea pode ser bastante prolongado1. Como a córnea é altamente inervada, essas úlceras corneanas não cicatrizantes e erosões recorrentes da córnea são muito dolorosas e diminuem muito a qualidade de vida dos pacientes que as vivenciam1.

Sinalização celular
Quando uma córnea saudável é lesada, os eventos de sinalização de cálcio nas células adjacentes à ferida precedem e provocam a migração celular para o leito da ferida, onde fecham a lesão sem o risco de cicatrizes 2,3. Esses eventos de sinalização têm sido bem caracterizados em modelos de cultura de células epiteliais corneanas utilizando imagens de células vivas2. Experimentos preliminares demonstram significativamente mais sinalização de cálcio após lesão em células não diabéticas em comparação com células diabéticas. No entanto, a caracterização dos eventos de sinalização celular em globos ex vivo tem se mostrado um desafio técnico.

Imagem de células vivas
Estudos anteriores registraram com sucesso eventos de sinalização de cálcio a partir de modelos de cultura celular in vitro de cicatrização de feridas corneanas 4,5,6. O desenvolvimento de uma metodologia para produzir imagens de alta qualidade desses eventos de sinalização em tecido ex vivo é de grande interesse, pois permitiria o estudo desses eventos em um sistema mais complexo e realista. Abordagens anteriores envolveram dissecção da córnea seguida de imobilização em gel PEG induzido por UV 7,8,9. A imobilização é um passo essencial, mas desafiador, ao trabalhar com tecido vivo, pois deve permanecer viável e hidratado durante todo o curso do experimento. Além disso, a imobilização não deve danificar o tecido. Enquanto a solução de PEG imobilizou o tecido, a resolução e a qualidade das imagens produzidas não foram consistentes. Portanto, os suportes impressos em 3D foram desenvolvidos para imobilizar globos intactos para produzir imagens de maior qualidade com menos risco de danos nos tecidos.

A abordagem
Um suporte impresso em 3D exclusivo foi desenvolvido para imobilizar globos ex vivo intactos para imagens de células vivas. Este suporte evita danos de duas fontes principais: permite a imagem de um globo enucleado sem a necessidade de dissecar a córnea e elimina a exposição à luz UV. Sem essas fontes de danos, as imagens obtidas representaram com mais precisão a resposta às lesões por arranhões feitas experimentalmente. Além disso, o suporte impresso em 3D foi calibrado para as dimensões precisas do olho murino. Isso proporcionou um ajuste muito melhor do que a imobilização na solução PEG, levando a uma imagem de maior qualidade em objetivos de menor potência devido à diminuição do movimento do tecido. Uma barra de cobertura presa à parte superior do suporte garante que o globo permaneça imóvel durante toda a duração do experimento e que não haja deslocamento do globo quando o meio de crescimento é aplicado para manter a hidratação e a viabilidade. A capacidade de imprimir o suporte em dimensões precisas também nos permite gerar um ajuste ideal para olhos murinos de diferentes tamanhos devido à idade ou ao status da doença. Esta tecnologia pode ser aplicada de forma mais ampla para desenvolver suportes para os olhos de diferentes espécies com base em suas dimensões.

Protocol

Os procedimentos envolvendo sujeitos animais foram aprovados pela Association for Research in Vision and Ophthalmology for the Use of Animals in Ophthalmic Care and Vision Research e pelo protocolo IACUC da Universidade de Boston (201800302). 1. Projetando os suportes impressos em 3D e a barra de cobertura Projete os suportes impressos em 3D e a barra de tampa que contabilizem o diâmetro médio dos globos do mouse e imprima o projeto em 3D (Figu…

Representative Results

Esse protocolo tem sido utilizado para produzir consistentemente dados e imagens de qualidade de publicação10. As imagens obtidas representam uma melhora significativa quando comparadas às abordagens anteriores (Figura 2). Utilizando o suporte impresso em 3D, as imagens podem ser capturadas em todas as camadas da córnea, e a mobilização de cálcio em diferentes planos z pode ser observada (Figura 3). Essa abordagem tem sido utilizad…

Discussion

Este protocolo descreve uma técnica de imagem de células vivas que usa um suporte impresso em 3D para estabilizar e imobilizar olhos de animais intactos. Ele é projetado para contornar várias desvantagens significativas reconhecidas com protocolos anteriores de imagem de células vivas de tecido corneano ex vivo. Este protocolo oferece muitas vantagens para a imagem de células vivas de globos intactos. Reduz significativamente o dano tecidual desnecessário que poderia interferir com a resposta de cicatriza…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gostaríamos de agradecer ao NIH pelo seguinte apoio financeiro: RO1EY032079 (VTR), R21EY029097-01 (VTR), 1F30EY033647-01 (KS) e 5T32GM008541-24 (KS). Também gostaríamos de agradecer ao Massachusetts Lions Eye Research Fund e ao New England Corneal Transplant Fund.

Materials

1.75 blue polylactic acid (PLA) plastic Creality (Shenzen, China) N/A Material for holder
35 mm Dish, No. 1.5 Coverslip, 14 mm glass diameter, Poly-D-Lysine Coated MatTek Corporation (Ashland, MA) P35GC-1.5-14-C Well for imaging. 
Autodesk Fusion 360 software Autodesk (San Rafael, CA). N/A Software used for printing the holders.
BD 25 G 7/8 sterile needles single use 100 needles/box Thermo Fisher Scientific (Waltham, MA) 305124 For experimentally-induced wounds to the globes
CellMask DeepRed Invitrogen (Carlsbad, CA) C10046 Cell membrane counterstain. Calcium indicator. 1:10,000 concentration with a final concentration of 1%(v/v) DMSO and 0.1% (w/v) pluronic acid
Complete Home Super Glue Walgreens (Deerfield, IL) N/A For attaching the holder to the imaging well
Ender 3 Pro 3D printer  Creality (Shenzen, China) N/A For printing the holder
FIJI/ImageJ ImageJ (Bethesda, MD) License Number: GPL2 Softwareused for confirming consistency of wound depth and diameter between independent globes using Region of Interest analysis
Fluo-4 Invitrogen (Carlsbad, CA) F14201 Calcium indicator. 1:100 concentration with a final concentration of 1%(v/v) DMSO and 0.1% (w/v) pluronic acid
Keratinocyte Serum-Free Medium Gibco (Waltham, MA) 17005042 25 mg/mL bovine pituitary extract, 0.02 nM EGF, 0.3 mM CaCl2, and penicillin-streptomycin (100 units/mL, 100 µg/mL, respectively) added to medium
Phophate-Buffered Saline (PBS) Corning, Medlabtech (Manassas, VA) 21-040-CV Used to wash excess stain off of corneas before imaging
Zeiss Confocal 880 Microscope with AiryScan Zeiss (Thornwood, NY) N/A 20x magnification objective was used

References

  1. Kneer, K., et al. High fat diet induces pre-type 2 diabetes with regional changes in corneal sensory nerves and altered P2X7 expression and localization. Experimental Eye Research. 175, 44-55 (2018).
  2. Lee, Y., et al. Sustained Ca2+ mobilizations: A quantitative approach to predict their importance in cell-cell communication and wound healing. PLoS One. 14 (4), 0213422 (2019).
  3. Stepp, M. A., et al. Wounding the cornea to learn how it heals. Experimental Eye Research. 121, 178-193 (2014).
  4. Klepeis, V. S., Cornell-Bell, A., Trinkaus-Randal, V. Growth factors but not gap junctions play a role in injury-induced Ca2+ waves in epithelial cells. Journal of Cell Science. 114 (23), 4185-4195 (2001).
  5. Lee, A., et al. Hypoxia-induced changes in Ca(2+) mobilization and protein phosphorylation implicated in impaired wound healing. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 306 (10), 972-985 (2014).
  6. Boucher, I., Rich, C., Lee, A., Marcincin, A., Trinkaus-Randall, V. The P2Y2 receptor mediates the epithelial injury response and cell migration. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 299 (2), 411-421 (2010).
  7. Awal, M. R., Wirak, G. S., Gabel, C. V., Connor, C. W. Collapse of global neuronal states in Caenorhabditis elegans under isoflurane anesthesia. Anesthesiology. 133 (1), 133-144 (2020).
  8. Burnett, K., Edsinger, E., Albrecht, D. R. Rapid and gentle hydrogel encapsulation of living organisms enables long-term microscopy over multiple hours. Communications Biology. 1, 73 (2018).
  9. Rhodes, G., et al. Pannexin1: Role as a sensor to injury is attenuated in pretype 2 corneal diabetic epithelium. Analytical Cellular Pathology. 2021, 4793338 (2021).
  10. Segars, K. L., et al. Age dependent changes in corneal epithelial cell signaling. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 886721 (2022).
  11. Xu, P., Londregan, A., Rich, C., Trinkaus-Randall, V. Changes in epithelial and stromal corneal stiffness occur with age and obesity. Bio-ingénierie. 7 (1), 14 (2020).
  12. Minns, M. S., Teicher, G., Rich, C. B., Trinkaus-Randall, V. Purinoreceptor P2X7 regulation of Ca(2+) mobilization and cytoskeletal rearrangement is required for corneal reepithelialization after injury. The American Journal of Pathology. 186 (2), 285-296 (2016).
  13. Tadvalkar, G., Pal-Ghosh, S., Pajoohesh-Ganji, A., Stepp, M. A. The impact of euthanasia and enucleation on mouse corneal epithelial axon density and nerve terminal morphology. The Ocular Surface. 18 (4), 821-828 (2020).

Play Video

Citer Cet Article
Segars, K. L., Azzari, N. A., Gomez, S., Rich, C. B., Trinkaus-Randall, V. Live-Cell Imaging of Intact Ex Vivo Globes Using a Novel 3D Printed Holder. J. Vis. Exp. (188), e64510, doi:10.3791/64510 (2022).

View Video