פרוטוקול זה מתאר שיטה מקיפה להערכת הפעלת קספאז (קספאז-1, קספאז-3, קספאז-7, קספאז-8, קספאז-9 וקספאז-11) בתגובה הן למודלים במבחנה והן ב-in vivo (בעכברים) של זיהום, עלבונות סטריליים וסרטן כדי לקבוע את התחלתם של מסלולי מוות תאי, כגון פירופטוזיס, אפופטוזיס, נקרופטוזיס ו-PANoptosis.
חסינות מולדת מספקת את קו ההגנה הראשון הקריטי בתגובה לפתוגנים ולעלבונות סטריליים. מרכיב מכניסטי מרכזי בתגובה זו הוא התחלת מוות תאי מתוכנת חיסוני מולד (PCD) כדי לחסל תאים נגועים או פגומים ולהפיץ תגובות חיסוניות. עם זאת, עודף PCD קשור דלקת ופתולוגיה. לכן, הבנת ההפעלה והוויסות של PCD היא היבט מרכזי באפיון תגובות חיסוניות מולדות ובזיהוי מטרות טיפוליות חדשות על פני ספקטרום המחלה.
פרוטוקול זה מספק שיטות לאפיון הפעלת PCD חיסונית מולדת על ידי ניטור קספזות, משפחה של פרוטאזות תלויות ציסטאין הקשורות לעתים קרובות למסלולי PCD מגוונים, כולל אפופטוזיס, פירופטוזיס, נקרופטוזיס ו- PANoptosis. דיווחים ראשוניים אפיינו את קספאז-2, קספאז-8, קספאז-9 וקספאז-10 כקספזות יוזמות ואת קספאז-3, קספאז-6 וקספאז-7 כקספזות משפיעות באפופטוזיס, בעוד שמחקרים מאוחרים יותר מצאו שהקספזות הדלקתיות, קספאז-1, קספאז-4, קספאז-5 וקספאז-11, מניעות פירופטוזיס. כיום ידוע כי קיימת הצלבה נרחבת בין הקספזות לבין מולקולות אחרות של מערכת החיסון המולדת ומוות תאי על פני מסלולי PCD שהוגדרו קודם לכן, מה שזיהה פער ידע מרכזי בהבנה המכניסטית של חסינות מולדת ו-PCD והוביל לאפיון של PANoptosis. PANoptosis הוא מסלול PCD דלקתי חיסוני מולד ייחודי המווסת על ידי קומפלקסים של PANoptosome, המשלבים רכיבים, כולל קספזות, ממסלולי מוות תאים אחרים.
כאן ניתנות שיטות להערכת הפעלת קספזות בתגובה לגירויים שונים. שיטות אלו מאפשרות אפיון של מסלולי PCD הן במבחנה והן in vivo, כאשר קספזות פעילות עוברות מחשוף פרוטאוליטי שניתן להמחיש על ידי כתם מערבי באמצעות נוגדנים אופטימליים ותנאי כתש. נקבעו פרוטוקול וזרימת עבודה מערבית המאפשרים הערכה של הפעלה של קספזות מרובות מאותה אוכלוסייה סלולרית, ומספקים אפיון מקיף של תהליכי PCD. שיטה זו יכולה להיות מיושמת על פני תחומי מחקר בפיתוח, הומאוסטזיס, זיהום, דלקת וסרטן כדי להעריך מסלולי PCD לאורך תהליכים תאיים בבריאות ובמחלות.
מערכת החיסון המולדת פועלת כקו ההגנה הראשון במהלך זיהום ובתגובה לגירויים סטריליים, כגון פגיעה ברקמות ושינויים בהומאוסטזיס. חיישנים חיסוניים מולדים על פני התא ובציטופלסמה מגיבים לדפוסים מולקולריים הקשורים לפתוגן או נזק (PAMPs או DAMPs, בהתאמה) כדי להפעיל מסלולי איתות דלקתיים ותגובות תאיות. אחד התהליכים המרכזיים של התגובה החיסונית המולדת הוא השראת מוות תאי כדי להסיר תאים נגועים או פגומים ולהניע תגובות חיסוניות מולדות ונרכשות נוספות. מוות תאי מתוכנת (PCD) הוא תהליך שמור מאוד בין מינים, מה שמדגיש את חשיבותו האבולוציונית כמנגנון חיסוני מולד.
ישנם מספר מסלולי PCD חיסוניים מולדים שיכולים להיות מופעלים בכל סוגי התאים. קספזות הן משפחת מפתח של פרוטאזות תלויות ציסטאין שהשתמרו מאוד, תוך תאיות ותלויות ציסטאין, שהן קריטיות במסלולי PCD רבים, כולל מסלול אפופטוזיס לא דלקתי מסורתי, כמו גם מסלולי PCD דלקתיים כמו פירופטוזיס, נקרופטוזיס ו-PANoptosis 1,2,3,4,5 . ישנם 11 קספזות אנושיות ו -10 קספזות מורין המוגדרות היטב, כמו גם פסאודו-קספזות שעשויות להיות פונקציונליות, ורובן מבוטאות באופן מכונן כפרו-קספזות מונומריות או דימריות לא פעילות הדורשות מחשוף להפעלה 6,7. Caspases מכילים גם תחומים חשובים עבור גיוס והיווצרות של מתחמי multiprotein. אלה כוללים את תחום ההפעלה והגיוס של קספאז (CARD), שניתן למצוא בקספאז-1, קספאז-2, קספאז-4, קספאז-5, קספאז-9 וקספאז-11, או תחום אפקט המוות (DED), שנמצא בקספאז-8 ובקספאז-10. הן באמצעות הפעילות הפרוטאוליטית שלהם והן באמצעות יכולתם ליצור קומפלקסים של מולטי-חלבונים, קספזות הן מניעים קריטיים של PCD חיסוני מולד.
תפקידן של קספזות ב-PCD של מערכת החיסון המולדת זוהה לראשונה באפופטוזיס, כאשר הקספזות היוזמות, קספאז-2, קספאז-8, קספאז-9 וקספאז-10, מפעילות את קספזות התליינים, קספאז-3, קספאז-6 וקספאז-7, כדי לגרום למוות תאי 8,9,10,11,12. קספזות יוזמות יכולות להיות מופעלות על ידי מפל איתות מגוון; המסלול החיצוני מפעיל את קספאז-8 באמצעות איתות קולטן מוות חוץ-תאי המושרה על ידי ליגנד, והמסלול הפנימי מפעיל את קספאז-9 באמצעות הפרעה לשלמות המיטוכונדריה13. קספזות יוזמות מופעלות מנתקות את המקשר המפריד בין תת-היחידות הקטליטיות הגדולות והקטנות של קספזות התליין כדי לייצר את צורתן הפעילה. לאחר מכן, קספזות התליין קורעות את הסובסטרטים שלהן כדי לפרק את התא, וכתוצאה מכך מתפרקת הדנ”א, ממברנות מפוצלות, פיצול גרעיני ושחרור גופים אפופטוטיים14,15. תהליך זה מסתיים בדרך כלל בצורה לא ליטית ולא דלקתית של מוות תאי כאשר הוא יחד עם פינוי מיידי של התאים הגוססים על ידי אפרוציטוזה16. עם זאת, פגמים efferocytosis או חוסר תאים phagocytic יכול להוביל הצטברות של תאים אפופטוטיים, אשר לאחר מכן לעבור מוות תאים ליטיים ודלקתיים17,18.
הקספזות הדלקתיות, כולל קספאז-1 (אדם ועכבר), קספאז-4 וקספאז-5 (אדם) וקספאז-11 (עכבר), התגלו כמופעלות במהלך צורה של PCD (III-PCD) דלקתי של מערכת החיסון המולדת הנקראת פירופטוזיס. הפעלת קספאז-1 קשורה להיווצרות של דלקתיות, שהן קומפלקסים רב-חלבוניים המכילים חיישן חיסוני מולד ציטוסולי, מולקולת מתאם (חלבון דמוי גרגיר הקשור לאפופטוזיס המכיל CARD [ASC]) וקספאז-1. היווצרות קומפלקס זה מאפשרת לקספאז-1 לעבור אוטופרוטאוליזה בתיווך קרבה כדי לשחרר את צורתו הפעילה, אשר יכולה לבקע את מצעי המטרה כולל הציטוקינים מעודדי הדלקת אינטרלוקין (IL)-1β ו- IL-18 ומולקולה יוצרת הנקבוביות Gasdermin D (GSDMD)19,20,21,22,23 . קספאז-11, קספאז-4 וקספאז-5 יכולים גם להפעיל GSDMD ללא היווצרות מעלה הזרם של הדלקתיות לאחר חישה של PAMPs כגון ליפופוליסכריד (LPS)19,20. קספזות אלה עוברות דימריזציה ואחריה אוליגומריזציה ומחשוף עצמי להפעלה עם קשירה ל- LPS ציטוסולי, מה שמוביל להפעלה דלקתית לא קנונית 24,25,26 והפעלת קספאז-1 באופן פנימי לתאים כדי לגרום להבשלת IL-1β ו- IL-18 20. ההבשלה והשחרור של ציטוקינים מעודדי דלקת אלה מאפיינים קספזות אלה כ”דלקתיות”. בנוסף, נמצא כי הקספאז-8 האפופטוטי מתמקם בדלקת, ומספק קשר בין תהליכים אפופטוטיים ופירופטוטיים. מחקרים מצאו כי קספאז-8 אפופטוטי הוא גם קריטי לוויסות צורה אחרת של PCD הנקראת נקרופטוזיס. אובדן קספאז-8 גורם לאינטראקציה ספונטנית של קולטן סרין-תראונין קינאז 3 (RIPK3) בתיווך שושלת מעורבת קינאז דמוי תחום פסאודוקינאז (MLKL) כדי להניע את מסלול III-PCD של נקרופטוזיס 27,28,29,30,31,32,33,34,35.
בעוד שקספזות סווגו בעבר כ”אפופטוטיות” או “דלקתיות” בהתבסס על סוג המוות התאי שהן יוזמות, עדויות הולכות וגדלות מצביעות על כך שיש הצלבה נרחבת בין מסלולי PCD של מערכת החיסון המולדת דרך קספזות 3,4. לדוגמה, הקספאז-1 הדלקתי מדלקת קוטע את הקספאז-7 האפופטוטי באתר ההפעלה הקנוני שלו34. הפעלת קספאז-1 יכולה גם להוביל לפיצול של מצעים אפופטוטיים כגון פולי(ADP-ריבוז) פולימראז 1 (PARP1)36. בתאים חסרי GSDMD, קספאז-1 יכול גם לבקע קספאז-337,38. בנוסף, קספאז-3 אפופטוטי קנוני יכול לבקע gasdermin E (GSDME) כדי לגרום PCD17,18 וגם מעבד GSDMD לתוך צורהלא פעילה 40. יתר על כן, גיוס קספאז-8 לקומפלקס הדלקתי נצפה 39,40,41,42,43,44,45, וקספאז-8 הוא וסת מרכזי של הפעלה דלקתית קנונית ולא קנונית 39. ישנם גם תפקידים חופפים ומיותרים עבור קספאז-8 וקספאז-1 במצבים דלקתיים רבים, ו-PCD חיסוני מולד המאופיין בהפעלת רכיבים פירופטוטיים, אפופטוטיים ונקרופטוטיים, מתרחש על פני ספקטרום המחלה 39,46,47,48,49,50.
בהתבסס על קשר גומלין זה בין קספזות דלקתיות ואפופטוטיות, זוהה פער מרכזי בהבנה המכניסטית של חסינות מולדת ו- PCD, מה שהוביל לגילוי PANoptosis. PANoptosis היא צורה ייחודית של III-PCD המופעלת בתגובה לפתוגנים, PAMPs, DAMPs ושינויים בהומאוסטזיס ומווסתת על ידי PANoptosomes – קומפלקסים מקרומולקולריים רבגוניים המשלבים רכיבים ממסלולי מוות תאי אחרים 44,50,51,52,53,54,55 . מכלול ההשפעות הביולוגיות ב-PANoptosis אינו יכול להיות מוסבר באופן אינדיבידואלי על ידי פירופטוזיס, אפופטוזיס או נקרופטוזיס בלבד 3,4,35,36,39,46,47,48, שכן PANoptosis מאופיין בהפעלה של קספזות מרובות, כולל קספאז-1, קספאז-11, קספאז-8, קספאז-9, קספאז-3 ו/או קספאז-7, בהתאם להקשר 44,48,49,50,51,52,53,54,56,57,58,59,60,61,62 . PANoptosis היה מעורב יותר ויותר במחלות זיהומיות ודלקתיות, כמו גם בסרטן וטיפולים בסרטן 3,4,35,36,39,44,46,47,48,49,50,51,52,53 ,54,56
,57,58,59,60,61,62,63,64,65,66.
בהתחשב בתפקיד החיוני של קספזות על פני מסלולי מוות תאי, כולל אפופטוזיס, פירופטוזיס, נקרופטוזיס, ו PANoptosis, חשוב לפתח טכניקות כדי לאפיין את ההפעלה שלהם ולהבין את המורכבות המלאה של מסלולי PCD. הפרוטוקול כאן מפרט שיטה לגרות תאים ולמדוד את ההפעלה הבאה של קספזות (איור 1). שיטה זו ממנפת את המחשוף הפרוטאוליטי של קספזות, הנדרש בדרך כלל להפעלתן, כאמצעי לחקור אותן. באמצעות כתמים מערביים, ניתן לקבוע את גודל החלבון, המאפשר הדמיה ברורה והתמיינות של פרו-קספזות לא פעילות וצורתן הפעילה והשסועה.
היתרונות העיקריים של פרוטוקול זה הם: 1) יכולתו להעריך את ההפעלה של מספר קספזות במקביל מאוכלוסייה אחת של תאים אנדוגניים כדי לקבוע בצורה מדויקת יותר את הפעלת PCD, 2) שימוש בטכניקות מעבדה פשוטות יחסית שאינן דורשות הכשרה מקיפה או ציוד יקר. פרוטוקולים קודמים השתמשו בכתם מערבי, בכתבים פלואורסצנטיים או בצביעת נוגדנים כדי לעקוב אחר הפעלת קספז בתרביות, בליזטים של תאים ורקמות, בתאים שלמים באמצעות מיקרוסקופיה, וב-in vivo 67,68,69,70,71, אך טכניקות אלה בדרך כלל מנטרות רק קספזה אחת או שתיים בדגימה. יתר על כן, בעוד שמצעים פפטידים סינתטיים המכילים אתרי מחשוף קספז הזורמים על המחשוף שימשו לניטור הפעלת קספז בליזטים של תאים או רקמות69, מצעים אלה יכולים לעתים קרובות להיבקע על ידי יותר מקספזה אחת, מה שמקשה לקבוע את ההפעלה הספציפית של קספזות בודדות במערכת זו. בנוסף, השימוש בכתם מערבי במקום שימוש בכתבים פלואורסצנטיים או שיטות מבוססות תגיות אחרות מאפשר לחוקרים להשתמש בתאים אנדוגניים במקום ליצור קווי תאים ספציפיים עם גנים של כתב. ישנם יתרונות רבים לשימוש בתאים אנדוגניים, כולל העובדה שקווי תאים אימורטליים רבים חסרים במולקולות מפתח של מוות תאי72,73, מה שעלול להשפיע על התוצאות. בנוסף, שימוש בתאים אנדוגניים מאפשר הערכה של סוגי תאים מגוונים, כגון מקרופאגים, תאי אפיתל ותאי אנדותל, ולא שושלת אחת. המלטות מערביות הן גם טכניקה פשוטה יחסית וחסכונית שניתן לבצע במעבדות ברחבי העולם ללא צורך בציוד גדול ויקר או התקנות מסובכות.
פרוטוקול זה מיושם באופן נרחב ברחבי הביולוגיה כדי להבין הן את התפקודים התלויים במוות תאי והן את התפקודים שאינם תלויים במוות תאי של קספזות, כולל תפקידי הפיגומים שלהם ותפקודם במסלולי איתות דלקתיים אחרים74. יישום שיטה זו מאפשר גישה אחידה בחקר מסלולי PCD חיסוניים מולדים ואיתות דלקתי על פני מחלות ותנאים, וניתן להשתמש בפרוטוקול זה כדי לזהות תהליכים רגולטוריים קריטיים וקשרים מכניסטיים שיסייעו בפיתוח אסטרטגיות טיפוליות עתידיות.
ניטור הפיצול וההפעלה של הקספז מספק את אחת התמונות המקיפות ביותר של הפעלת PCD חיסוני מולד כחלק מהתגובה החיסונית המולדת. הפרוטוקול המתואר כאן מדגים אסטרטגיה לניטור הפעלת קספז בתגובה לזיהומים IAV, HSV1 ו– F. novicida והטריגר הסטרילי LPS + ATP, אך גירויים רבים אחרים יכולים לגרום ל- PCD וניתן להשתמש בהם ב?…
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים לחברי מעבדת Kanneganti על הערותיהם והצעותיהם, ומודים ל- J. Gullett, PhD, על התמיכה בעריכה מדעית. העבודה במעבדה שלנו נתמכת על ידי מענקי המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) AI101935, AI124346, AI160179, AR056296 ו- CA253095 (ל- T.-D.K.) ועל ידי ארגוני הצדקה האמריקאים הקשורים ללבנון הסורית (ל- T.-D.K). התוכן הוא באחריותם הבלעדית של המחברים ואינו מייצג בהכרח את הדעות הרשמיות של המכונים הלאומיים לבריאות.
0.45 μm filter | Millipore | SCHVU05RE | |
10 mL syringe | BD Biosciences | 309604 | |
12% polyacrylamide gel with 10 wells | Bio-Rad | 4561043 | |
12-well plate | Corning | 07-200-82 | |
18 G needle | BD Biosciences | 305195 | |
25 G needle | BD Biosciences | 305122 | |
50 mL tube | Fisher Scientific | 50-809-218 | |
70 μm cell strainer | Corning | 431751 | |
150 mm tissue culture dishes | Corning | 430597 | |
182-cm2 tissue culture flask | Genesee Scientific | 25-211 | |
Accessory white trans tray | Cytiva | 29-0834-18 | |
Anti–caspase-1 antibody | AdipoGen | AG-20B-0042-C100 | |
Anti–caspase-11 antibody | Novus Biologicals | NB120-10454 | |
Anti–caspase-3 antibody | Cell Signaling Technology | 9662 | |
Anti–caspase-7 antibody | Cell Signaling Technology | 9492 | |
Anti–caspase-8 antibody | Cell Signaling Technology | 4927 | |
Anti–caspase-9 antibody | Cell Signaling Technology | 9504 | |
Anti–cleaved caspase-3 antibody | Cell Signaling Technology | 9661 | |
Anti–cleaved caspase-7 antibody | Cell Signaling Technology | 9491 | |
Anti–cleaved caspase-8 antibody | Cell Signaling Technology | 8592 | |
Anti-mouse HRP-conjugated secondary antibody | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 315-035-047 | |
Anti-rabbit HRP-conjugated secondary antibody | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 111-035-047 | |
Anti-rat HRP-conjugated secondary antibody | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 112-035-003 | |
Anti–β-Actin antibody (C4) HRP | Santa Cruz | sc-47778 HRP | |
ATP | InvivoGen | tlrl-atpl | |
BBL Trypticase Soy Broth | BD Biosciences | 211768 | |
Bead bath | Chemglass Life Sciences | CLS-4598-009 | |
Biophotometer D30 | Eppendorf | 6133000010 | |
BME | Sigma | M6250 | |
Bromophenol blue | Sigma | BO126 | |
Cell scrapers | CellTreat Scientific Products | 229315 | |
Chemiluminescence imager (Amersham 600) | Cytiva | 29083461 | |
CO2 chamber | VetEquip | 901703 | |
Cuvettes | Fisher Scientific | 14-955-129 | |
Dissecting scissors | Thermo Fisher Scientific | 221S | |
DMEM | Thermo Fisher Scientific | 11995-073 | |
DTT | Sigma | 43815 | |
Eelectrophoresis apparatus | Bio-Rad | 1658004 | |
Ethanol | Pharmco | 111000200 | |
Fetal bovine serum | Biowest | S1620 | |
Filter paper | Bio-Rad | 1703965 | |
Forceps | Fisher Scientific | 22-327379 | |
Francisella novicida (U112 strain) | BEI Resources | NR-13 | |
Gel releaser | Bio-Rad | 1653320 | |
Gentamycin | Gibco | 15750060 | |
Glycerol | Sigma | G7893 | |
Glycine | Sigma | G8898 | |
HCl | Sigma | H9892 | |
Heat block | Fisher Scientific | 23-043-160 | |
Herpes simplex virus 1 (HF strain) | ATCC | VR-260 | |
High glucose DMEM | Sigma | D6171 | |
Human anti–caspase-1 antibody | R&D Systems | MAB6215 | |
Human anti–caspase-8 antibody | Enzo | ALX-804-242 | |
Humidified incubator | Thermo Fisher Scientific | 51026282 | |
Image analysis software | ImageJ | v1.53a | |
IMDM | Thermo Fisher Scientific | 12440-053 | |
Influenza A virus (A/Puerto Rico/8/34, H1N1 [PR8]) | constructed per Hoffmann et al. | ||
L929 cells | ATCC | CCL-1 | cell line for creating L929-conditioned media |
L-cysteine | Thermo Fisher Scientific | BP376-100 | |
Luminata Forte Western HRP substrate | Millipore | WBLUF0500 | standard-sensitivity HRP substrate |
MDCK cells | ATCC | CCL-34 | cell line for determining IAV viral titer |
Methanol | Sigma | 322415 | |
Microcentrifuge | Thermo Fisher Scientific | 75002401 | |
Non-essential amino acids | Gibco | 11140050 | |
Nonfat dried milk powder | Kroger | ||
NP-40 solution | Sigma | 492016 | |
PBS | Thermo Fisher Scientific | 10010023 | |
Penicillin and streptomycin | Sigma | P4333 | |
Petri dish | Fisher Scientific | 07-202-011 | |
PhosSTOP | Roche | PHOSS-RO | |
Power source | Bio-Rad | 164-5052 | |
Protease inhibitor tablet | Sigma | S8820 | |
PVDF membrane | Millipore | IPVH00010 | |
Rocking shaker | Labnet | S2035-E | |
SDS | Sigma | L3771 | |
Sodium chloride | Sigma | S9888 | |
Sodium deoxycholate | Sigma | 30970 | |
Sodium hydroxide | Sigma | 72068 | |
Sodium pyruvate | Gibco | 11360-070 | |
Square Petri dish | Fisher Scientific | FB0875711A | |
Stripping buffer | Thermo Fisher Scientific | 21059 | |
Super Signal Femto HRP substrate | Thermo Fisher Scientific | 34580 | high-sensitivity HRP substrate |
Tabletop centrifuge | Thermo Fisher Scientific | 75004524 | |
Trans-Blot semi-dry system | Bio-Rad | 170-3940 | |
Tris | Sigma | TRIS-RO | |
Tween 20 | Sigma | P1379 | |
Ultrapure lipopolysaccharide (LPS) from E. coli 0111:B4 | InvivoGen | tlrl-3pelps | |
Vero cells | ATCC | CCL-81 | cell line for determining HSV1 viral titer |