Summary

Cultivos organotípicos de corteza humana adulta como modelo ex vivo para el trasplante y validación de células madre humanas

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Este protocolo describe cultivos organotípicos a largo plazo de la corteza humana adulta combinados con trasplante intracortical ex vivo de progenitores corticales derivados de células madre pluripotentes inducidas, que presentan una metodología novedosa para probar aún más las terapias basadas en células madre para trastornos neurodegenerativos humanos.

Abstract

Los trastornos neurodegenerativos son comunes y heterogéneos en cuanto a sus síntomas y afectación celular, lo que complica su estudio debido a la falta de modelos animales adecuados que imiten completamente las enfermedades humanas y la escasa disponibilidad de tejido cerebral humano post-mortem. El cultivo de tejido nervioso humano adulto ofrece la posibilidad de estudiar diferentes aspectos de los trastornos neurológicos. Los mecanismos moleculares, celulares y bioquímicos podrían abordarse fácilmente en este sistema, así como probar y validar medicamentos o diferentes tratamientos, como las terapias basadas en células. Este método combina cultivos organotípicos a largo plazo de la corteza humana adulta, obtenidos de pacientes epilépticos sometidos a cirugía resectiva, y trasplante intracortical ex vivo de progenitores corticales derivados de células madre pluripotentes inducidos. Este método permitirá el estudio de la supervivencia celular, la diferenciación neuronal, la formación de entradas y salidas sinápticas y las propiedades electrofisiológicas de las células derivadas del ser humano después del trasplante en tejido cortical humano adulto intacto. Este enfoque es un paso importante previo al desarrollo de una plataforma de modelado de enfermedades humanas en 3D que acercará la investigación básica a la traducción clínica de terapias basadas en células madre para pacientes con diferentes trastornos neurológicos y permitirá el desarrollo de nuevas herramientas para reconstruir circuitos neuronales dañados.

Introduction

Los trastornos neurodegenerativos, como la enfermedad de Parkinson, la enfermedad de Alzheimer o el accidente cerebrovascular isquémico, son un grupo de enfermedades que comparten la característica común del mal funcionamiento neuronal o la muerte. Son heterogéneos en cuanto al área cerebral y población neuronal afectada. Desafortunadamente, los tratamientos para estas enfermedades son escasos o de eficacia limitada debido a la falta de modelos animales que imiten lo que ocurre en el cerebro humano 1,2. La terapia con células madre es una de las estrategias más prometedoras para la regeneración cerebral3. La generación de progenitores neuronales a partir de células madre de diferentes fuentes se ha desarrollado mucho en los últimos años 4,5. Publicaciones recientes han demostrado que las células madre neuroepiteliales autorenovadoras a largo plazo (lt-NES) derivadas de células madre pluripotentes inducidas por humanos (iPS), siguiendo un protocolo de diferenciación cortical y después del trasplante intracortical en un modelo de rata con accidente cerebrovascular isquémico que afecta a la corteza somatosensorial, generan neuronas corticales maduras. Además, las neuronas derivadas del injerto recibieron conexiones sinápticas aferentes y eferentes de las neuronas huésped, mostrando su integración en la red neuronal de ratas 6,7. Los axones derivados del injerto se mielinizaron y se encontraron en diferentes áreas del cerebro de la rata, incluida el área periinfarto, el cuerpo calloso y la corteza somatosensorial contralateral. Lo más importante es que el trasplante derivado de células iPS revirtió los déficits motores en animales con accidente cerebrovascular7.

Incluso si los modelos animales ayudan a estudiar la supervivencia del trasplante, la integración neuronal y el efecto de las células injertadas sobre las funciones motoras y cognitivas, la información sobre la interacción entre células humanas (injerto-huésped) falta en este sistema 8,9. Por esta razón, aquí se describe un método combinado de cultivo organotípico del cerebro humano a largo plazo con el trasplante ex vivo de progenitores neuronales derivados de células iPS humanas. Los cultivos organotípicos del cerebro humano obtenidos de resecciones neuroquirúrgicas son modelos 3D fisiológicamente relevantes del cerebro que permiten a los investigadores aumentar su comprensión de los circuitos del sistema nervioso central humano y la forma más precisa de probar tratamientos para trastornos cerebrales humanos. Sin embargo, no se ha realizado suficiente investigación en este contexto, y en la mayoría de los casos, se han utilizado cultivos organotípicos del cerebro del hipocampo humano10,11. La corteza cerebral se ve afectada por varios trastornos neurodegenerativos, como el ictus isquémico12 o la enfermedad de Alzheimer13, por lo que es importante contar con un sistema 3D cortical humano que nos permita ampliar nuestros conocimientos y probar y validar diferentes estrategias terapéuticas. Varios estudios realizados en los últimos años han utilizado cultivos de tejido cortical humano adulto (hACtx) para modelar enfermedades cerebrales humanas 14,15,16,17,18,19; sin embargo, hay información limitada disponible en el contexto de la terapia con células madre. Dos estudios ya han demostrado la viabilidad del sistema descrito aquí. En 2018, se demostró que las células madre embrionarias humanas programadas con diferentes factores de transcripción y trasplantadas en tejido hACtx dan lugar a neuronas corticales maduras que podrían integrarse en redes corticales humanas adultas20. En 2020, el trasplante de células lt-NES en el sistema organotípico humano reveló su capacidad para diferenciarse en neuronas corticales maduras y específicas de capa con las propiedades electrofisiológicas de las neuronas funcionales. Las neuronas injertadas establecieron contactos sinápticos aferentes y eferentes con las neuronas corticales humanas en los cortes cerebrales adultos, como lo corroboran el trazado monosináptico retrógrado del virus de la rabia, los registros de pinzas de parche de células enteras y la microscopía inmunoelectrónica21.

Protocol

Este protocolo sigue las directrices aprobadas por el Comité Regional de Ética, Lund, Suecia (número de permiso ético 2021-07006-01). Se obtuvo tejido neocortical sano de pacientes sometidos a cirugía electiva para la epilepsia del lóbulo temporal. Se obtuvo el consentimiento informado de todos los pacientes. NOTA: Todos los tejidos obtenidos fueron procesados independientemente de su tamaño. Sin embargo, los tejidos de menos de 1-1.5 mm3 de tamaño serán técnicamente difí…

Representative Results

Siguiendo el protocolo descrito, se recolectó y procesó tejido hACtx de un paciente con epilepsia del lóbulo temporal, como se explicó anteriormente. Se fijaron unas rodajas después de 24 h en cultivo para estudiar el punto de partida del tejido huésped. El análisis de diferentes poblaciones de células neuronales como neuronas (que expresan NeuN y Map2, Figura 1A), oligodendrocitos (Olig2 y MBP, Figura 1B) y astrocitos (GFAP específico para humanos, también llamado STEM123, Figura 1C</stron…

Discussion

La obtención de cortes hACtx de calidad suficiente es el paso más crítico en este protocolo. El tejido cortical se obtiene de pacientes epilépticos sometidos a cirugía resectiva24. La calidad del tejido resecado, así como el tiempo de exposición del tejido entre la resección y el cultivo, es crítica; Cuanto más rápido se transfiera el tejido de la sala de cirugía al laboratorio y se corte, más óptimo será el cultivo organotípico. Idealmente, el tejido debe cortars…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo cuenta con el apoyo de subvenciones del Consejo Sueco de Investigación, la Fundación Sueca del Cerebro, la Fundación Sueca del Accidente Cerebrovascular, la Región de Skåne, la Fundación Thorsten y Elsa Segerfalk y la Iniciativa del Gobierno Sueco para Áreas de Investigación Estratégicas (StemTherapy).

Materials

Tissue Cutting and electrophysiology
Adenosine 5'-triphosphate magnesium salt Sigma A9187
Bath temperature controller  Luigs & Neumann TC0511354
Calcium Chloride dihydrate Merck 102382
Carbogen gas Air Liquide NA
Cooler Julaba FL 300 9661012.03
D-(+)Glucose Sigma-Aldrich G7021
Double Patch-Clamp amplifier HEKA electronic EPC10
Guanosine 5'-Triphosphate disodium salt Millipore 371701
HEPES AppliChem A1069
Magnesium Chloride hexahydrate Sigma-Aldrich M2670
Magnesium Sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich 230391
Patchmaster HEKA electronic Patchmaster 2×91
Pipette Puller Sutter P-2000
Plastic Petri dish Any suitable
Potassium chloride Merck 104936
Potassium D-gluconate ThermoFisher B25135
Rubber teat + glass pipette Any suitable
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium dihydrogen phosphate monohydrate Merck 106346
Sucrose Sigma-Aldrich S7903
Tissue adhesive: Acryl super glue Loctite 2062278
Upright microscope Olympus BX51WI 
Vibratome  Leica VT1200 S
RINSING SOLUTION
D-(+)Glucose Sigma-Aldrich G7021
HBSS (without Ca, Mg, or PhenolRed) ThermoFisher Scientific 14175095
HEPES AppliChem A1069
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) ThermoFisher Scientific 15-140-122
MANTAINANCE AND CULTURE OF HUMAN NEOCORTICAL TISSUE
6-well plate ThermoFisher Scientific 140675
Alvetex scaffold 6 well insert Reinnervate Ltd AVP004-96
B27 Supplement (50x) ThermoFisher Scientific 17504001
BrainPhys without Phenol Red StemCell technologies #05791 Referenced as neuronal medium in the text
Filter units 250 mL or 500 mL Corning Sigma CLS431096/97
Forceps Any suitable
Gentamicin (50 mg/mL) ThermoFisher Scientific 15750037
Glutamax Supplement (100x) ThermoFisher Scientific 35050061 Referenced as L-glutamine in the text
Rubber teat + Glass pipette Any suitable
GENERATION OF lt-NES cells
2-Mercaptoethanol 50 mM ThermoFisher Scientific 31350010
Animal Free Recombinant EGF Peprotech AF-100-15
B27 Suplemment (50x) Thermo Fisher Scientific 17504001
bFGF Peprotech AF-100-18B
Bovine Albumin Fraction V (7.5% solution) ThermoFisher Scientific 15260037
Cyclopamine, V. calcifornicum Calbiochem # 239803
D (+) Glucose solution (45%) Sigma G8769
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma Aldrich D2438-10mL
DMEM/F12 ThermoFisher Scientific 11320074
Dulbecco's Phosphate Buffer Saline (DPBS) Thermo Fisher Scientific 14190-144 Without calcium and magnesium
Laminin Mouse Protein, Natural Thermo Fisher Scientific 23017015
MEM Non-essential aminoacids solutions (100x) ThermoFisher Scientific 11140050
N-2 Supplement (100 x) ThermoFisher Scientific 17502001
Poly-L-Ornithine Merk P3655
Recombinant Human BMP-4 Protein R&D Systems 314-BP-010
Recombinant Human Wnt-3a Protein R&D Systems 5036-WN
Sodium Pyruvate (100 mM) ThermoFisher Scientific 11360070
Soybean Trypsin Inhibitor, powder Thermo Fisher Scientific 17075029
Sterile deionized water MilliQ MilliQ filter system
Trypsin EDTA (0.25%) Sigma T4049-500ML
EQUIPMENT FOR CELL CULTURE 
Adjustable volume pipettes 10, 100, 200, 1000 µL Eppendorf Various
Basement membrane matrix ESC-qualified (Matrigel) Corning CLS354277-1EA
Centrifuge Hettich Centrifugen Rotina 420R 5% CO2, 37 °C
Incubator ThermoForma Steri-Cult CO2 HEPA Class100
Stem cell cutting tool 0.190-0.210 mm Vitrolife 14601
Sterile tubes Sarstedt Various
Sterile Disposable Glass Pasteur Pipettes 150 mm VWR 612-1701
Sterile pipette tips 0.1-1000  µL Biotix VWR Various
Sterile Serological Pipettes 5, 10, 25, 50 mL Costar Various
T25 flasks Nunc ThermoFisher Scientific 156367
IMMUNOHISTOCHEMISTRY
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-mouse IgG Jackson ImmunoReserach 715-545-151
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-rabbit IgG Jackson ImmunoReserach 711-545-152
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-chicken IgG Jackson ImmunoReserach 703-545-155
Alexa fluor 647-conjugated Streptavidin Jackson ImmunoReserach 016-600-084
Bovine Serum Albumin Jackson ImmunoReserach 001-000-162
Chicken anti-GFP Merk Millipore AB16901
Chicken anti-MAP2  Abcam ab5392
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-chicken IgG Jackson ImmunoReserach 703-165-155
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-goat IgG Jackson ImmunoReserach 705-165-147
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-mouse IgG Jackson ImmunoReserach 715-165-151
Diazabicyclooctane (DABCO) Sigma Aldrich D27802 Mounting media
Goat anti-AIF1 (C-terminal)  Biorad AHP2024
Hoechst 33342 Molecular Probes Nuclear staining
Mouse anti-MBP  BioLegend 808402
Mouse anti-SC123  Stem Cells Inc AB-123-U-050
Normal Donkey Serum Merk Millipore S30-100
Paint brush Any suitable
Paraformaldehyde (PFA) Sigma Aldrich 150127
Potassium Phospate Buffer Saline, KPBS (1x)
     Distilled water
     Potassium dihydrogen Phospate (KH2PO4) Merk Millipore 104873
     Potassium phospate dibasic (K2HPO4) Sigma Aldrich P3786
     Sodium chloride (NaCl) Sigma Aldrich S3014
Rabbit anti-NeuN  Abcam ab104225
Rabbit anti-Olig2  Abcam ab109186
Rabbit anti-TMEM119  Abcam ab185333
Sodium azide Sigma Aldrich S2002-5G
Sodium citrate
       Distilled water
       Tri-Sodium Citrate Sigma Aldrich S1804-500G
       Tween-20 Sigma Aldrich P1379
Triton X-100 ThermoFisher Scientific 327371000 
EQUIPMENT FOR IMMUNOHISTOCHEMISTRY
Confocal microscope Zeiss LSM 780
Microscope Slides 76 mm x 26 mm VWR 630-1985
Microscope Coverslips 24 mm x 60 mm Marienfeld 107242
Microscope Software Zeiss ZEN Black edition
Rubber teat + Glass pipette Any suitable

References

  1. Kuriakose, D., Xiao, Z. Pathophysiology and treatment of stroke: Present status and future perspectives. International Journal of Molecular Sciences. 21 (20), 7609 (2020).
  2. Armstrong, M. J., Okun, M. S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease: A review. The Journal of the American Medical Association. 323 (6), 548-560 (2020).
  3. Lindvall, O., Kokaia, Z., Martinez-Derrano, A. Stem cell therapy for human neurodegenerative disorders-How to make it work. Nature Medicine. 10, 42-50 (2004).
  4. Reubinoff, B. E., et al. Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 19 (12), 1134-1140 (2001).
  5. Chandrasekaran, A., et al. Comparison of 2D and 3D neural induction methods for the generation of neural progenitor cells from human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Research. 25, 139-151 (2017).
  6. Tornero, D., et al. Synaptic inputs from stroke-injured brain to grafted human stem cell-derived neurons activated by sensory stimuli. Brain. 140 (3), 692-706 (2017).
  7. Palma-Tortosa, S., et al. Activity in grafted human iPS cell-derived cortical neurons integrated in stroke-injured rat brain regulates motor behavior. Proceedings of the National Academy of Sciencesof the United States of America. 117 (16), 9094-9100 (2020).
  8. Robinson, N. B., et al. The current state of animal models in research: A review. International Journal of Surgery. 72, 9-13 (2019).
  9. Akhtar, A. The flaws and human harms of animal experimentation. Cambridge Quarterly Healthcare Ethics. 24 (4), 407-419 (2015).
  10. Gonzalez-Ramos, A., et al. Human stem cell-derived GABAergic neurons functionally integrate into human neuronal networks. Scientific Reports. 11, 22050 (2021).
  11. Noraberg, J., et al. Organotypic hippocampal slice cultures for studies of brain damage, neuroprotection and neurorepair. Current Drug Targets. CNS & Neurological Disorders. 4 (4), 435-452 (2005).
  12. Delavaran, H., et al. Proximity of brain infarcts to regions of endogenous neurogenesis and involvement of striatum in ischaemic stroke. European Journal of Neurology. 20 (3), 473-479 (2013).
  13. Sabuncu, M. R., et al. The dynamics of cortical and hippocampal atrophy in Alzheimer disease. Archives of Neurology. 68 (8), 1040-1048 (2011).
  14. Eugene, E., et al. An organotypic brain slice preparation from adult patients with temporal lobe epilepsy. The Journal of Neuroscience Methods. 235, 234-244 (2014).
  15. Mendes, N. D., et al. Free-floating adult human brain-derived slice cultures as a model to study the neuronal impact of Alzheimer’s disease-associated Aβ oligomers. The Journal of Neuroscience Methods. 307, 203-209 (2018).
  16. Kalmbach, B. E., et al. Signature morpho-electric, transcriptomic, and dendritic properties of human layer 5 neocortical pyramidal neurons. Neuron. 109 (18), 2914-2927 (2021).
  17. Barth, M., et al. Microglial inclusions and neurofilament light chain release follow neuronal alpha-synuclein lesions in long-term brain slice cultures. Molecular Neurodegeneration. 16 (1), 54 (2021).
  18. Almeida, G. M., et al. Neural infection by oropouche virus in adult human brain slices induces an inflammatory and toxic response. Frontiers in Neuroscience. 15, 674576 (2021).
  19. Schwarz, N., et al. Human cerebrospinal fluid promotes long-term neuronal viability and network function in human neocortical organotypic brain slice cultures. Scientific Reports. 7, 12249 (2017).
  20. Miskinyte, G., et al. Direct conversion of human fibroblasts to functional excitatory cortical neurons integrating into human neural networks. Stem Cell Research & Therapy. 8 (1), 207 (2017).
  21. Gronning Hansen, M., et al. Grafted human pluripotent stem cell-derived cortical neurons integrate into adult human cortical neural circuitry. Stem Cells Translational Medicine. 9 (11), 1365-1377 (2020).
  22. Falk, A., et al. Capture of neuroepithelial-like stem cells from pluripotent stem cells provides a versatile system for in vitro production of human neurons. PLoS One. 7 (1), 29597 (2012).
  23. Avaliani, N., et al. Optogenetics reveal delayed afferent synaptogenesis on grafted human-induced pluripotent stem cell-derived neural progenitors. Stem Cells. 32 (12), 3088-3098 (2014).
  24. Engel, J., et al. Practice parameter: temporal lobe and localized neocortical resections for epilepsy. Epilepsia. 44 (6), 741-751 (2003).
  25. Qi, X. R., et al. Human brain slice culture: A useful tool to study brain disorders and potential therapeutic compounds. Neuroscience Bulletin. 35 (2), 244-252 (2019).
  26. Verwer, R. W., et al. Injury response of resected human brain tissue in vitro. Brain Pathology. 25 (4), 454-468 (2015).
  27. Verwer, R. W., et al. Altered loyalties of neuronal markers in cultured slices of resected human brain tissue. Brain Pathology. 26 (4), 523-532 (2016).
  28. Xu, L., Wang, J., Ding, Y., Wang, L., Zhu, Y. J. Current knowledge of microglia in traumatic spinal cord injury. Frontiers in Neurology. 12, 796704 (2021).
  29. Jones, R. S., da Silva, A. B., Whittaker, R. G., Woodhall, G. L., Cunningham, M. O. Human brain slices for epilepsy research: Pitfalls, solutions and future challenges. Journal of Neuroscience Methods. 260, 221-232 (2016).
  30. Schwarz, N., et al. Long-term adult human brain slice cultures as a model system to study human CNS circuitry and disease. Elife. 8, 48417 (2019).
  31. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: Modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 1247125 (2014).
  32. Wang, Z., et al. Organoid technology for brain and therapeutics research. CNS Neuroscience & Therapeutics. 23 (10), 771-778 (2017).
  33. Wang, H. Modeling neurological diseases with human brain organoids. Frontiers in Synaptic Neuroscience. 10, 15 (2018).
  34. Palma-Tortosa, S., Coll-San Martin, B., Kokaia, Z., Tornero, D. Neuronal replacement in stem cell therapy for stroke: Filling the gap. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 662636 (2021).

Play Video

Citer Cet Article
Palma-Tortosa, S., Martínez-Curiel, R., Aretio-Medina, C., Avaliani, N., Kokaia, Z. Organotypic Cultures of Adult Human Cortex as an Ex vivo Model for Human Stem Cell Transplantation and Validation. J. Vis. Exp. (190), e64234, doi:10.3791/64234 (2022).

View Video