Este protocolo describe cultivos organotípicos a largo plazo de la corteza humana adulta combinados con trasplante intracortical ex vivo de progenitores corticales derivados de células madre pluripotentes inducidas, que presentan una metodología novedosa para probar aún más las terapias basadas en células madre para trastornos neurodegenerativos humanos.
Los trastornos neurodegenerativos son comunes y heterogéneos en cuanto a sus síntomas y afectación celular, lo que complica su estudio debido a la falta de modelos animales adecuados que imiten completamente las enfermedades humanas y la escasa disponibilidad de tejido cerebral humano post-mortem. El cultivo de tejido nervioso humano adulto ofrece la posibilidad de estudiar diferentes aspectos de los trastornos neurológicos. Los mecanismos moleculares, celulares y bioquímicos podrían abordarse fácilmente en este sistema, así como probar y validar medicamentos o diferentes tratamientos, como las terapias basadas en células. Este método combina cultivos organotípicos a largo plazo de la corteza humana adulta, obtenidos de pacientes epilépticos sometidos a cirugía resectiva, y trasplante intracortical ex vivo de progenitores corticales derivados de células madre pluripotentes inducidos. Este método permitirá el estudio de la supervivencia celular, la diferenciación neuronal, la formación de entradas y salidas sinápticas y las propiedades electrofisiológicas de las células derivadas del ser humano después del trasplante en tejido cortical humano adulto intacto. Este enfoque es un paso importante previo al desarrollo de una plataforma de modelado de enfermedades humanas en 3D que acercará la investigación básica a la traducción clínica de terapias basadas en células madre para pacientes con diferentes trastornos neurológicos y permitirá el desarrollo de nuevas herramientas para reconstruir circuitos neuronales dañados.
Los trastornos neurodegenerativos, como la enfermedad de Parkinson, la enfermedad de Alzheimer o el accidente cerebrovascular isquémico, son un grupo de enfermedades que comparten la característica común del mal funcionamiento neuronal o la muerte. Son heterogéneos en cuanto al área cerebral y población neuronal afectada. Desafortunadamente, los tratamientos para estas enfermedades son escasos o de eficacia limitada debido a la falta de modelos animales que imiten lo que ocurre en el cerebro humano 1,2. La terapia con células madre es una de las estrategias más prometedoras para la regeneración cerebral3. La generación de progenitores neuronales a partir de células madre de diferentes fuentes se ha desarrollado mucho en los últimos años 4,5. Publicaciones recientes han demostrado que las células madre neuroepiteliales autorenovadoras a largo plazo (lt-NES) derivadas de células madre pluripotentes inducidas por humanos (iPS), siguiendo un protocolo de diferenciación cortical y después del trasplante intracortical en un modelo de rata con accidente cerebrovascular isquémico que afecta a la corteza somatosensorial, generan neuronas corticales maduras. Además, las neuronas derivadas del injerto recibieron conexiones sinápticas aferentes y eferentes de las neuronas huésped, mostrando su integración en la red neuronal de ratas 6,7. Los axones derivados del injerto se mielinizaron y se encontraron en diferentes áreas del cerebro de la rata, incluida el área periinfarto, el cuerpo calloso y la corteza somatosensorial contralateral. Lo más importante es que el trasplante derivado de células iPS revirtió los déficits motores en animales con accidente cerebrovascular7.
Incluso si los modelos animales ayudan a estudiar la supervivencia del trasplante, la integración neuronal y el efecto de las células injertadas sobre las funciones motoras y cognitivas, la información sobre la interacción entre células humanas (injerto-huésped) falta en este sistema 8,9. Por esta razón, aquí se describe un método combinado de cultivo organotípico del cerebro humano a largo plazo con el trasplante ex vivo de progenitores neuronales derivados de células iPS humanas. Los cultivos organotípicos del cerebro humano obtenidos de resecciones neuroquirúrgicas son modelos 3D fisiológicamente relevantes del cerebro que permiten a los investigadores aumentar su comprensión de los circuitos del sistema nervioso central humano y la forma más precisa de probar tratamientos para trastornos cerebrales humanos. Sin embargo, no se ha realizado suficiente investigación en este contexto, y en la mayoría de los casos, se han utilizado cultivos organotípicos del cerebro del hipocampo humano10,11. La corteza cerebral se ve afectada por varios trastornos neurodegenerativos, como el ictus isquémico12 o la enfermedad de Alzheimer13, por lo que es importante contar con un sistema 3D cortical humano que nos permita ampliar nuestros conocimientos y probar y validar diferentes estrategias terapéuticas. Varios estudios realizados en los últimos años han utilizado cultivos de tejido cortical humano adulto (hACtx) para modelar enfermedades cerebrales humanas 14,15,16,17,18,19; sin embargo, hay información limitada disponible en el contexto de la terapia con células madre. Dos estudios ya han demostrado la viabilidad del sistema descrito aquí. En 2018, se demostró que las células madre embrionarias humanas programadas con diferentes factores de transcripción y trasplantadas en tejido hACtx dan lugar a neuronas corticales maduras que podrían integrarse en redes corticales humanas adultas20. En 2020, el trasplante de células lt-NES en el sistema organotípico humano reveló su capacidad para diferenciarse en neuronas corticales maduras y específicas de capa con las propiedades electrofisiológicas de las neuronas funcionales. Las neuronas injertadas establecieron contactos sinápticos aferentes y eferentes con las neuronas corticales humanas en los cortes cerebrales adultos, como lo corroboran el trazado monosináptico retrógrado del virus de la rabia, los registros de pinzas de parche de células enteras y la microscopía inmunoelectrónica21.
La obtención de cortes hACtx de calidad suficiente es el paso más crítico en este protocolo. El tejido cortical se obtiene de pacientes epilépticos sometidos a cirugía resectiva24. La calidad del tejido resecado, así como el tiempo de exposición del tejido entre la resección y el cultivo, es crítica; Cuanto más rápido se transfiera el tejido de la sala de cirugía al laboratorio y se corte, más óptimo será el cultivo organotípico. Idealmente, el tejido debe cortars…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo cuenta con el apoyo de subvenciones del Consejo Sueco de Investigación, la Fundación Sueca del Cerebro, la Fundación Sueca del Accidente Cerebrovascular, la Región de Skåne, la Fundación Thorsten y Elsa Segerfalk y la Iniciativa del Gobierno Sueco para Áreas de Investigación Estratégicas (StemTherapy).
Tissue Cutting and electrophysiology | |||
Adenosine 5'-triphosphate magnesium salt | Sigma | A9187 | |
Bath temperature controller | Luigs & Neumann | TC0511354 | |
Calcium Chloride dihydrate | Merck | 102382 | |
Carbogen gas | Air Liquide | NA | |
Cooler | Julaba FL 300 | 9661012.03 | |
D-(+)Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
Double Patch-Clamp amplifier | HEKA electronic | EPC10 | |
Guanosine 5'-Triphosphate disodium salt | Millipore | 371701 | |
HEPES | AppliChem | A1069 | |
Magnesium Chloride hexahydrate | Sigma-Aldrich | M2670 | |
Magnesium Sulfate heptahydrate | Sigma-Aldrich | 230391 | |
Patchmaster | HEKA electronic | Patchmaster 2×91 | |
Pipette Puller | Sutter | P-2000 | |
Plastic Petri dish | Any suitable | ||
Potassium chloride | Merck | 104936 | |
Potassium D-gluconate | ThermoFisher | B25135 | |
Rubber teat + glass pipette | Any suitable | ||
Sodium Bicarbonate | Sigma-Aldrich | S5761 | |
Sodium Chloride | Sigma-Aldrich | S7653 | |
Sodium dihydrogen phosphate monohydrate | Merck | 106346 | |
Sucrose | Sigma-Aldrich | S7903 | |
Tissue adhesive: Acryl super glue | Loctite | 2062278 | |
Upright microscope | Olympus | BX51WI | |
Vibratome | Leica | VT1200 S | |
RINSING SOLUTION | |||
D-(+)Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
HBSS (without Ca, Mg, or PhenolRed) | ThermoFisher Scientific | 14175095 | |
HEPES | AppliChem | A1069 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | ThermoFisher Scientific | 15-140-122 | |
MANTAINANCE AND CULTURE OF HUMAN NEOCORTICAL TISSUE | |||
6-well plate | ThermoFisher Scientific | 140675 | |
Alvetex scaffold 6 well insert | Reinnervate Ltd | AVP004-96 | |
B27 Supplement (50x) | ThermoFisher Scientific | 17504001 | |
BrainPhys without Phenol Red | StemCell technologies | #05791 | Referenced as neuronal medium in the text |
Filter units 250 mL or 500 mL | Corning Sigma | CLS431096/97 | |
Forceps | Any suitable | ||
Gentamicin (50 mg/mL) | ThermoFisher Scientific | 15750037 | |
Glutamax Supplement (100x) | ThermoFisher Scientific | 35050061 | Referenced as L-glutamine in the text |
Rubber teat + Glass pipette | Any suitable | ||
GENERATION OF lt-NES cells | |||
2-Mercaptoethanol 50 mM | ThermoFisher Scientific | 31350010 | |
Animal Free Recombinant EGF | Peprotech | AF-100-15 | |
B27 Suplemment (50x) | Thermo Fisher Scientific | 17504001 | |
bFGF | Peprotech | AF-100-18B | |
Bovine Albumin Fraction V (7.5% solution) | ThermoFisher Scientific | 15260037 | |
Cyclopamine, V. calcifornicum | Calbiochem | # 239803 | |
D (+) Glucose solution (45%) | Sigma | G8769 | |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma Aldrich | D2438-10mL | |
DMEM/F12 | ThermoFisher Scientific | 11320074 | |
Dulbecco's Phosphate Buffer Saline (DPBS) | Thermo Fisher Scientific | 14190-144 | Without calcium and magnesium |
Laminin Mouse Protein, Natural | Thermo Fisher Scientific | 23017015 | |
MEM Non-essential aminoacids solutions (100x) | ThermoFisher Scientific | 11140050 | |
N-2 Supplement (100 x) | ThermoFisher Scientific | 17502001 | |
Poly-L-Ornithine | Merk | P3655 | |
Recombinant Human BMP-4 Protein | R&D Systems | 314-BP-010 | |
Recombinant Human Wnt-3a Protein | R&D Systems | 5036-WN | |
Sodium Pyruvate (100 mM) | ThermoFisher Scientific | 11360070 | |
Soybean Trypsin Inhibitor, powder | Thermo Fisher Scientific | 17075029 | |
Sterile deionized water | MilliQ | MilliQ filter system | |
Trypsin EDTA (0.25%) | Sigma | T4049-500ML | |
EQUIPMENT FOR CELL CULTURE | |||
Adjustable volume pipettes 10, 100, 200, 1000 µL | Eppendorf | Various | |
Basement membrane matrix ESC-qualified (Matrigel) | Corning | CLS354277-1EA | |
Centrifuge | Hettich Centrifugen | Rotina 420R | 5% CO2, 37 °C |
Incubator | ThermoForma Steri-Cult CO2 | HEPA Class100 | |
Stem cell cutting tool 0.190-0.210 mm | Vitrolife | 14601 | |
Sterile tubes | Sarstedt | Various | |
Sterile Disposable Glass Pasteur Pipettes 150 mm | VWR | 612-1701 | |
Sterile pipette tips 0.1-1000 µL | Biotix VWR | Various | |
Sterile Serological Pipettes 5, 10, 25, 50 mL | Costar | Various | |
T25 flasks Nunc | ThermoFisher Scientific | 156367 | |
IMMUNOHISTOCHEMISTRY | |||
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-mouse IgG | Jackson ImmunoReserach | 715-545-151 | |
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-rabbit IgG | Jackson ImmunoReserach | 711-545-152 | |
488-conjugated AffinityPure Donkey anti-chicken IgG | Jackson ImmunoReserach | 703-545-155 | |
Alexa fluor 647-conjugated Streptavidin | Jackson ImmunoReserach | 016-600-084 | |
Bovine Serum Albumin | Jackson ImmunoReserach | 001-000-162 | |
Chicken anti-GFP | Merk Millipore | AB16901 | |
Chicken anti-MAP2 | Abcam | ab5392 | |
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-chicken IgG | Jackson ImmunoReserach | 703-165-155 | |
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-goat IgG | Jackson ImmunoReserach | 705-165-147 | |
Cy3-conjugated AffinityPure Donkey anti-mouse IgG | Jackson ImmunoReserach | 715-165-151 | |
Diazabicyclooctane (DABCO) | Sigma Aldrich | D27802 | Mounting media |
Goat anti-AIF1 (C-terminal) | Biorad | AHP2024 | |
Hoechst 33342 | Molecular Probes | Nuclear staining | |
Mouse anti-MBP | BioLegend | 808402 | |
Mouse anti-SC123 | Stem Cells Inc | AB-123-U-050 | |
Normal Donkey Serum | Merk Millipore | S30-100 | |
Paint brush | Any suitable | ||
Paraformaldehyde (PFA) | Sigma Aldrich | 150127 | |
Potassium Phospate Buffer Saline, KPBS (1x) | |||
Distilled water | |||
Potassium dihydrogen Phospate (KH2PO4) | Merk Millipore | 104873 | |
Potassium phospate dibasic (K2HPO4) | Sigma Aldrich | P3786 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma Aldrich | S3014 | |
Rabbit anti-NeuN | Abcam | ab104225 | |
Rabbit anti-Olig2 | Abcam | ab109186 | |
Rabbit anti-TMEM119 | Abcam | ab185333 | |
Sodium azide | Sigma Aldrich | S2002-5G | |
Sodium citrate | |||
Distilled water | |||
Tri-Sodium Citrate | Sigma Aldrich | S1804-500G | |
Tween-20 | Sigma Aldrich | P1379 | |
Triton X-100 | ThermoFisher Scientific | 327371000 | |
EQUIPMENT FOR IMMUNOHISTOCHEMISTRY | |||
Confocal microscope | Zeiss | LSM 780 | |
Microscope Slides 76 mm x 26 mm | VWR | 630-1985 | |
Microscope Coverslips 24 mm x 60 mm | Marienfeld | 107242 | |
Microscope Software | Zeiss | ZEN Black edition | |
Rubber teat + Glass pipette | Any suitable |