Summary

Danner mikro- og nanoplast fra landbruksplastfilmer for sysselsetting i grunnleggende forskningsstudier

Published: July 27, 2022
doi:

Summary

Vi viser dannelsen og dimensjonskarakteriseringen av mikro- og nanoplast (henholdsvis MPS og NP) ved hjelp av en trinnvis prosess med mekanisk fresing, sliping og bildeanalyse.

Abstract

Mikroplast (MP) og nanoplast (NP) spredt i landbruksøkosystemer kan utgjøre en alvorlig trussel mot biota i jord og nærliggende vannveier. I tillegg kan kjemikalier som plantevernmidler adsorbert av NP skade jordorganismer og potensielt komme inn i næringskjeden. I denne sammenheng bidrar landbruksutnyttet plast som plast mulchfilmer betydelig til plastforurensning i landbruksøkosystemer. Imidlertid bruker de fleste grunnleggende studier av skjebne og økotoksisitet idealiserte og dårlig representative MP-materialer, for eksempel polystyrenmikrosfærer.

Derfor, som beskrevet her, utviklet vi en lab-skala flertrinnsprosedyre for å mekanisk danne representative parlamentsmedlemmer og NP-er for slike studier. Plastmaterialet ble fremstilt fra kommersielt tilgjengelige plastmulchfilmer av polybutyratadipat-co-tereftalat (PBAT) som ble utarmet gjennom enten kryogenisk behandling (CRYO) eller miljøforvitring (W), og fra ubehandlede PBAT-pellets. Plastmaterialene ble deretter behandlet ved mekanisk fresing for å danne parlamentsmedlemmer med en størrelse på 46-840 μm, som etterlignet slitasje av plastfragmenter av vind og mekanisk maskineri. Parlamentsmedlemmene ble deretter siktet inn i flere størrelsesfraksjoner for å muliggjøre videre analyse. Til slutt ble 106 μm silfraksjonen utsatt for våtsliping for å generere NP på 20-900 nm, en prosess som etterligner den langsomme reduksjonsprosessen for jordbaserte parlamentsmedlemmer. Dimensjonene og formen for parlamentsmedlemmer ble bestemt gjennom bildeanalyse av stereomikrografer, og dynamisk lysspredning (DLS) ble ansatt for å vurdere partikkelstørrelse for NP. Parlamentsmedlemmer og NP dannet gjennom denne prosessen hadde uregelmessige former, som er i tråd med de geometriske egenskapene til parlamentsmedlemmer gjenvunnet fra landbruksfelt. Samlet sett viste denne størrelsesreduksjonsmetoden seg effektiv for å danne parlamentsmedlemmer og NP sammensatt av biologisk nedbrytbar plast som polybutylenadipat-co-tereftalat (PBAT), som representerer mulchmaterialer som brukes til landbruksspesialitetsproduksjon.

Introduction

De siste tiårene har den raskt økende globale produksjonen av plast og feil avhending og mangel på resirkulering av plastavfall ført til miljøforurensning som har påvirket marine og terrestriske økosystemer 1,2,3. Plastmaterialer er avgjørende for moderne landbruk, spesielt for å dyrke grønnsaker, liten frukt og andre spesialavlinger. Deres bruk som mulchfilmer, høye og lave tunnelbelegg, dryppbånd og andre applikasjoner tar sikte på å forbedre avlingene og kvaliteten, redusere produksjonskostnadene og fremme bærekraftige oppdrettsmetoder 4,5. Imidlertid har den voksende bruken av “plasticulture” reist bekymringer om dannelse, distribusjon og oppbevaring av plastbiter i landbruksmiljøer. Etter en kontinuerlig fragmenteringsprosess forårsaket av sprøhet gjennom miljøforringelse i løpet av levetiden, danner større plastfragmenter mikro- og nanoplast (MNPs), som vedvarer i jord eller migrerer til tilstøtende vannveier via vannavrenning og vind 6,7,8. Miljøfaktorer som ultrafiolett (UV) stråling gjennom sollys, mekaniske vannkrefter og biologiske faktorer utløser plastisk sprøhet av miljødispergert plast, noe som resulterer i nedbrytning av større plastfragmenter i makro- eller mesoplastpartikler 9,10. Videre defragmentering danner mikroplast (MPs) og nanoplast (NP), som reflekterer partikler av gjennomsnittlig størrelse (nominell diameter; dp) på henholdsvis 1-5000 μm og 1-1000 nm,11. Imidlertid er den øvre dp-grensen for NP (dvs. en nedre grense for parlamentsmedlemmer) ikke universelt avtalt, og i flere papirer er dette oppført som 100 nm12.

MNPs fra plastavfall utgjør en fremvoksende global trussel mot jordhelse og økosystemtjenester. Adsorpsjon av tungmetaller fra ferskvann av parlamentsmedlemmer førte til en 800 ganger høyere konsentrasjon av tungmetaller sammenlignet med omgivelsene13. Videre utgjør parlamentsmedlemmer i akvatiske økosystemer flere stressorer og forurensninger ved å endre lyspenetrasjon, forårsake oksygenutarming og forårsake vedheft til forskjellige biota, inkludert penetrasjon og akkumulering i vannlevende organismer14.

Nylige studier tyder på at MNPs kan påvirke jordgeokjemi og biota, inkludert mikrobielle samfunn og planter15,16,17. Videre truer NP-er matnettet17,18,19,20. Siden MNPs lett gjennomgår vertikal og horisontal transport i jord, kan de bære absorberte forurensninger som plantevernmidler, myknere og mikroorganismer gjennom jorda til grunnvann eller akvatiske økosystemer som elver og bekker21,22,23,24. Konvensjonell landbruksplast som mulchfilmer er laget av polyetylen, som må fjernes fra feltet etter bruk og kastes i deponier. Ufullstendig fjerning fører imidlertid til betydelig opphopning av plastavfall i jord 9,25,26. Alternativt er jordbiologisk nedbrytbare plast mulches (BDM) designet for å bli dyrket inn i jorden etter bruk, hvor de vil nedbrytes over tid. BDM-er vedvarer imidlertid midlertidig i jord og nedbrytes og fragmenteres gradvis til parlamentsmedlemmer og NP-er 9,27.

Mange nåværende miljøøkotoksikologiske og skjebnestudier benytter idealiserte og ikke-representative parlamentsmedlemmer og NP-modeller. De mest brukte surrogat-MNP-ene er monodisperse polystyrenmikro- eller nanosfærer, som ikke gjenspeiler de faktiske MNP-ene som bor i miljøet 12,28. Følgelig kan valg av ikke-representative parlamentsmedlemmer og NP-er føre til unøyaktige målinger og resultater. Basert på mangelen på passende modell ΜNPs for terrestriske miljøstudier, var forfatterne motivert til å forberede slike modeller fra landbruksplast. Vi har tidligere rapportert om dannelsen av MNPs fra BDM og polyetylenpellets gjennom mekanisk fresing og sliping av plastpellets og filmmaterialer og dimensjonale og molekylære egenskaper til MNPs29. Det nåværende papiret gir en mer detaljert protokoll for fremstilling av MNPs som kan brukes bredere på all landbruksplast, for eksempel mulchfilmer eller deres pelletiserte råstoffer (figur 1). Her, for å tjene som et eksempel, valgte vi en mulchfilm og sfæriske pellets av den biologisk nedbrytbare polymeren polybutyladipattereftalat (PBAT) for å representere landbruksplast.

Protocol

1. Behandling av parlamentsmedlemmer fra plastpellets gjennom kryogen forbehandling og fresing MERK: Denne metodikken er basert på en prosedyre beskrevet andre steder, ved bruk av en PBAT-film sammensatt av det samme materialet som ble brukt til denne presenterte studien29. Vei polymerpelletsprøver på ~1 g og overfør til en 50 ml glassburk. Plasser det rektangulære leveringsrøret med en 20 mesh (840 μm) sil i sporet foran den …

Representative Results

For å validere den eksperimentelle prosedyremetoden og analysen ble parlamentsmedlemmer og NP dannet av pellets og filmmaterialer og sammenlignet etter størrelse og form ved hjelp av mikroskopiske bilder. Metoden beskrevet i figur 1 dannet effektivt parlamentsmedlemmer og NP-er fra biologisk nedbrytbare plastpellets og filmer; Dette ble oppnådd gjennom kryogen kjøling, fresing og våtsliping og karakterisering. Det tidligere trinnet var unødvendig for miljøforvitrede filmer fordi forvi…

Discussion

Denne metoden beskriver en effektiv prosess som opprinnelig ble beskrevet i en tidligere publikasjon29, for å forberede MNPs hentet fra pellets og mulchfilmer for miljøstudier. Størrelsesreduksjonsprosessen involverte kryogen kjøling (kun for film), tørrfresing og våtslipingstrinn, for å produsere modell-MNP-er. Vi har brukt denne metoden til å fremstille MNP fra et bredt spekter av polymere råstoffer, inkludert lavdensitetspolyetylen (LDPE), polybutyratadipat-co-tereftalat (PBAT) og poly…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble finansiert av Herbert College of Agriculture, Biosystems Engineering and Soil Department, og Science Alliance ved University of Tennessee, Knoxville. Videre anerkjenner forfatterne takknemlig den økonomiske støtten som tilbys gjennom USDA Grant 2020-67019-31167 for denne forskningen. De opprinnelige råstoffene for tilberedning av MNP-er av PBAT-basert biologisk nedbrytbar mulchfilm ble levert av BioBag Americas, Inc. (Dunevin, FL, USA) og PBAT-pellets av Mobius, LLC (Lenoir City, TN).

Materials

Aluminum dish, 150 mL  Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 08-732-103 Drying of collected NPs
Aluminum dish, 500 mL VWR International, Radnor, PA, USA 25433-018 Collecting NPs after wet-grinding
Centrifuge Fisher Scientific, Waltham, MA, USA Centrific 228 Container for centrifugation
Delivery tube, #20, 840 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M30 Sieving of the first fraction during milling
Delivery tube, #60, 250 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M45 Sieving of the second fraction (3x)  during milling
Thermomixer,  5350 Mixer Eppendorf North America, Enfield, CT, USA 05-400-200 Analysis of sieving experiments
FT-IR Spectrum Two, spectrometer with attenuated total reflectance (ATR) Perkin Elmer, Waltham, MA, USA L1050228  Measuring FTIR spectra
Glass beaker, 1000 mL DWK Life Sciences, Milville, NJ, USA 02-555-113 Stirring of MPs-water slurry before grinding
Glass front plate Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383N55  Front cover plaste for Wiley Mini Mill
Glass jar, 50 mL Uline, Pleasant Prairie, WI, USA S-15846P Collective MPs after milling
Glove Box, neoprene Bel-Art-SP Scienceware, Wayne, NJ, USA BEL-H500290000 22-Inch, Size 10
Zetasizer Nano ZS 90 size analyzer Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  Zetasizer Nano ZS Measuring nanoplastics dispersed in DI-water
Microscope camera Nikon, Tokyo, 108-6290, Japan Nikon Digital Sight 10 Combined with Olympus microscope to receive digital images
Microscope Olympus, Shinjuku, Tokyo, Japan Model SZ 61 Imaging of MPs
Nitrogen jar, low form dewar flasks Cole-Palmer, Vernon Hills, IL, USA UX-03771-23 Storage of liquid nitrogen during cryogenic cooling
Accurate Blend 200, 12-speed blender Oster, Boca Raton, FL, USA 6684 Initiating the size reduction of cryogenically treated plastic film
PBAT film, – BioAgri™ (Mater-Bi®) BioBag Americas, Inc, Dunedin, FL, USA 0.7 mm thick Feedstock to form MPs and NPs, agricultural mulch film
PBAT pellets Mobius, LLC, Lenoir City, TN, USA Diameter 3 mm Feedstock to form microplastics (MPs) and nanoplastics (NPs) trough milling and grinding
Plastic centrifuge tubes, 50 mL Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 06-443-18 Centrifugation of slurry after wet-grinding
Plastic jar, 1000 mL, pre-cleaned, straight sided Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 05-719-733 Collection of NPs during and after wet grinding
Polygon stir bars, diameterø=8 mm, length=50.8 mm   Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 14-512-127 Stirring of MPs slurry prior to wet-grinding
Scissors, titanium bonded Westcott, Shelton, CT, USA 13901 Cutting of initial PBAT film feedstocks
Square glass cell with square aperture and cap, 12 mm O.D. Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  PCS1115 Measuring of NPs particle size
Stainless steel bottom, 3 inch, pan Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8401 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 140 (106 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1308 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 20 (850 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1296 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 325 (45 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1313 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 60 (250 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1303 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel top cover, 3 inch Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8406 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel tweezers Global Industrial, Port Washington, NY, USA T9FB2264892 Transferring of  frozen film particles from jar into blender
Vacuum oven, model 281A Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 13-262-50 Vacuum oven to dry NPs after wet-grinding
Friction grinding machine, Supermass Colloider Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKCA6-2J Grinding machine to form NPs from MPs
Wet-grinding stone, grit size: 297 μm -420 μm Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKE6-46DD Grinding stone to form NPs from MPs
Wiley Mini Mill, rotary cutting mill Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA NC1346618 Size reduction of pellets and film into MPs and NPs
Software
FTIR-Spectroscopy software Perkin Elmer, Waltham, MA, USA Spectrum 10  Collection of spectra from the initial plastic, MPs and NPs
Image J, image processing program National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA Version 1.53n Analysis of digital images received from microscopy 
Microscope software, ds-fi1 software Malvern Panalytical , Malvern, UK Firmware DS-U1 Ver3.10 Recording of digital images
Microsoft, Windows,  Excel 365, spreadsheet software Microsoft, Redmond, WA, USA Office 365 Calculating the average particle size and creating FTIR spectra images
JMP software, statistical software SAS Institute Inc., Cary, NC, 1989-2021 Version 15 Statistical analysis of particle size and perform best fit of data set
Unscrambler software Camo Analytics, Oslo, Norway Version 9.2 Normalizing and converting FTIR spectra into .csv fromat

References

  1. Jin, Z., Dan, L. Review on the occurrence, analysis methods, toxicity and health effects of micro-and nano-plastics in the environment. Environmental Chemistry. (1), 28-40 (2021).
  2. Kumar, M., et al. Current research trends on micro-and nano-plastics as an emerging threat to global environment: a review. Journal of Hazardous Materials. 409, 124967 (2021).
  3. Alimba, C. G., Faggio, C., Sivanesan, S., Ogunkanmi, A. L., Krishnamurthi, K. Micro (nano)-plastics in the environment and risk of carcinogenesis: Insight into possible mechanisms. Journal of Hazardous Materials. 416, 126143 (2021).
  4. Serrano-Ruiz, H., Martin-Closas, L., Pelacho, A. M. Biodegradable plastic mulches: Impact on the agricultural biotic environment. Science of The Total Environment. 750, 141228 (2021).
  5. Hayes, D. G., et al. Biodegradable plastic mulch films for sustainable specialty crop production. Polymers for Agri-Food Applications. , 183-213 (2019).
  6. Viaroli, S., Lancia, M., Re, V. Microplastics contamination of groundwater: Current evidence and future perspectives. A review. Science of The Total Environment. , 153851 (2022).
  7. Rillig, M. C., Lehmann, A. Microplastic in terrestrial ecosystems. Science. 368 (6498), 1430-1431 (2020).
  8. Anunciado, M. B., et al. Effect of environmental weathering on biodegradation of biodegradable plastic mulch films under ambient soil and composting conditions. Journal of Polymers and the Environment. 29 (9), 2916-2931 (2021).
  9. Yang, Y., et al. Kinetics of microplastic generation from different types of mulch films in agricultural soil. Science of The Total Environment. 814, 152572 (2022).
  10. Hayes, D. G., et al. Effect of diverse weathering conditions on the physicochemical properties of biodegradable plastic mulches. Polymer Testing. 62, 454-467 (2017).
  11. Schwaferts, C., Niessner, R., Elsner, M., Ivleva, N. P. Methods for the analysis of submicrometer-and nanoplastic particles in the environment. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 112, 52-65 (2019).
  12. Gigault, J., et al. Current opinion: what is a nanoplastic. Environmental Pollution. 235, 1030-1034 (2018).
  13. Naqash, N., Prakash, S., Kapoor, D., Singh, R. Interaction of freshwater microplastics with biota and heavy metals: a review. Environmental Chemistry Letters. 18 (6), 1813-1824 (2020).
  14. Manzoor, S., Naqash, N., Rashid, G., Singh, R. Plastic material degradation and formation of microplastic in the environment: A review. Materials Today: Proceedings. , 3254-3260 (2022).
  15. de Souza Machado, A. A., et al. Impacts of microplastics on the soil biophysical environment. Environmental Science & Technology. 52 (17), 9656-9665 (2018).
  16. Jacques, O., Prosser, R. A probabilistic risk assessment of microplastics in soil ecosystems. Science of The Total Environment. 757, 143987 (2021).
  17. Kwak, J. I., An, Y. -. J. Microplastic digestion generates fragmented nanoplastics in soils and damages earthworm spermatogenesis and coelomocyte viability. Journal of Hazardous Materials. 402, 124034 (2021).
  18. Wahl, A., et al. Nanoplastic occurrence in a soil amended with plastic debris. Chemosphere. 262, 127784 (2021).
  19. Vighi, M., et al. Micro and nano-plastics in the environment: research priorities for the near future. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology Volume 257. , 163-218 (2021).
  20. Pironti, C., et al. Microplastics in the environment: intake through the food web, human exposure and toxicological effects. Toxics. 9 (9), 224 (2021).
  21. Zurier, H. S., Goddard, J. M. Biodegradation of microplastics in food and agriculture. Current Opinion in Food Science. 37, 37-44 (2021).
  22. Horton, A. A., Dixon, S. J. Microplastics: An introduction to environmental transport processes. Wiley Interdisciplinary Reviews: Water. 5 (2), 1268 (2018).
  23. Panno, S. V., et al. Microplastic contamination in karst groundwater systems. Groundwater. 57 (2), 189-196 (2019).
  24. Su, Y., et al. Delivery, uptake, fate, an transport of engineered nanoparticles in plants: a critical review and data analysis. Environmental Science: Nano. 6 (8), 2311-2331 (2019).
  25. Yu, Y., Griffin-LaHue, D. E., Miles, C. A., Hayes, D. G., Flury, M. Are micro-and nanoplastics from soil-biodegradable plastic mulches an environmental concern. Journal of Hazardous Materials Advances. 4, 100024 (2021).
  26. Hayes, D. G. Enhanced end-of-life performance for biodegradable plastic mulch films through improving standards and addressing research gaps. Current Opinion in Chemical Engineering. 33, 100695 (2021).
  27. Qin, M., et al. A review of biodegradable plastics to biodegradable microplastics: Another ecological threat to soil environments. Journal of Cleaner Production. 312, 127816 (2021).
  28. Phuong, N. N., et al. Is there any consistency between the microplastics found in the field and those used in laboratory experiments. Environmental Pollution. 211, 111-123 (2016).
  29. Astner, A., et al. Mechanical formation of micro-and nano-plastic materials for environmental studies in agricultural ecosystems. Science of The Total Environment. 685, 1097-1106 (2019).
  30. Rist, S., Hartmann, N. B. Aquatic ecotoxicity of microplastics and nanoplastics: lessons learned from engineered nanomaterials. Freshwater Microplastics. , 25-49 (2018).
  31. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  32. Raju, S., et al. Improved methodology to determine the fate and transport of microplastics in a secondary wastewater treatment plant. Water Research. 173, 115549 (2020).
  33. Caputo, F., et al. Measuring particle size distribution and mass concentration of nanoplastics and microplastics: addressing some analytical challenges in the sub-micron size range. Journal of Colloid and Interface Science. 588, 401-417 (2021).
  34. Xu, M., et al. Polystyrene microplastics alleviate the effects of sulfamethazine on soil microbial communities at different CO2 concentrations. Journal of Hazardous Materials. 413, 125286 (2021).
  35. Ding, L., et al. Insight into interactions of polystyrene microplastics with different types and compositions of dissolved organic matter. Science of The Total Environment. 824, 153883 (2022).
  36. Abbasimaedeh, P., Ghanbari, A., O’Kelly, B. C., Tavanafar, M., Irdmoosa, K. G. Geomechanical behaviour of uncemented expanded polystyrene (EPS) beads-clayey soil mixtures as lightweight fill. Geotechnics. 1 (1), 38-58 (2021).
  37. Li, Z., Li, Q., Li, R., Zhou, J., Wang, G. The distribution and impact of polystyrene nanoplastics on cucumber plants. Environmental Science and Pollution Research. 28 (13), 16042-16053 (2021).
  38. Sobhani, Z., Panneerselvan, L., Fang, C., Naidu, R., Megharaj, M. Chronic and transgenerational effects of polystyrene microplastics at environmentally relevant concentrations in earthworms (Eisenia fetida). Environmental Toxicology and Chemistry. 40 (8), 2240-2246 (2021).
  39. Lionetto, F., Esposito Corcione, C., Rizzo, A., Maffezzoli, A. Production and characterization of polyethylene terephthalate nanoparticles. Polymers. 13 (21), 3745 (2021).
  40. Dümichen, E., et al. Analysis of polyethylene microplastics in environmental samples, using a thermal decomposition method. Water Research. 85, 451-457 (2015).
  41. Robotti, M., et al. Attrition and cryogenic milling production for low pressure cold gas spray and composite coatings characterization. Advanced Powder Technology. 27 (4), 1257-1264 (2016).
  42. Ducoli, S., et al. A different protein corona cloaks "true-to-life" nanoplastics with respect to synthetic polystyrene nanobeads. Environmental Science: Nano. 9 (4), 1414-1426 (2022).
  43. El Hadri, H., Gigault, J., Maxit, B., Grassl, B., Reynaud, S. Nanoplastic from mechanically degraded primary and secondary microplastics for environmental assessments. NanoImpact. 17, 100206 (2020).
  44. Eitzen, L., et al. The challenge in preparing particle suspensions for aquatic microplastic research. Environmental research. 168, 490-495 (2019).
  45. Ekvall, M. T., et al. Nanoplastics formed during the mechanical breakdown of daily-use polystyrene products. Nanoscale advances. 1 (3), 1055-1061 (2019).
  46. Caldwell, J., et al. Fluorescent plastic nanoparticles to track their interaction and fate in physiological environments. Environmental Science: Nano. 8 (2), 502-513 (2021).
  47. Zeb, A., et al. Evaluating the knowledge structure of micro-and nanoplastics in terrestrial environment through scientometric assessment. Applied Soil Ecology. 177, 104507 (2022).
  48. Ji, Z., et al. Effects of pristine microplastics and nanoplastics on soil invertebrates: A systematic review and meta-analysis of available data. Science of The Total Environment. 788, 147784 (2021).
  49. de Alkimin, G. D., Gonçalves, J. M., Nathan, J., Bebianno, M. J. Impact of micro and nanoplastics in the marine environment. Assessing the Effects of Emerging Plastics on the Environment and Public Health. , 172-225 (2022).
  50. Pires, A., Cuccaro, A., Sole, M., Freitas, R. Micro (nano) plastics and plastic additives effects in marine annelids: A literature review. Environmental Research. , 113642 (2022).
  51. Hurley, R. R., Nizzetto, L. Fate and occurrence of micro (nano) plastics in soils: Knowledge gaps and possible risks. Current Opinion in Environmental Science & Health. 1, 6-11 (2018).
check_url/fr/64112?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Astner, A. F., Hayes, D. G., O’Neill, H. M., Evans, B. R., Pingali, S. V., Urban, V. S., Young, T. M. Forming Micro-and Nano-Plastics from Agricultural Plastic Films for Employment in Fundamental Research Studies. J. Vis. Exp. (185), e64112, doi:10.3791/64112 (2022).

View Video