Summary

Dannelse af mikro- og nanoplast fra landbrugsplastfilm til beskæftigelse i grundlæggende forskningsundersøgelser

Published: July 27, 2022
doi:

Summary

Vi viser dannelsen og dimensionel karakterisering af mikro- og nanoplastik (henholdsvis parlamentsmedlemmer og NP’er) ved hjælp af en trinvis proces med mekanisk fræsning, slibning og billedanalyse.

Abstract

Mikroplast (parlamentsmedlemmer) og nanoplast (NP’er) spredt i landbrugsøkosystemer kan udgøre en alvorlig trussel mod biota i jord og nærliggende vandveje. Derudover kan kemikalier som pesticider adsorberet af NP’er skade jordorganismer og potentielt komme ind i fødekæden. I denne sammenhæng bidrager landbrugsudnyttede plastmaterialer såsom plastmuldfilm væsentligt til plastforurening i landbrugets økosystemer. Imidlertid anvender de fleste grundlæggende undersøgelser af skæbne og økotoksicitet idealiserede og dårligt repræsentative MP-materialer, såsom polystyrenmikrosfærer.

Derfor, som beskrevet heri, udviklede vi en flertrinsprocedure i laboratorieskala til mekanisk at danne repræsentative parlamentsmedlemmer og NP’er til sådanne undersøgelser. Plastmaterialet blev fremstillet af kommercielt tilgængelige plastmuldfilm af polybutyratadipat-co-terephthalat (PBAT), der blev broderet gennem enten kryogen behandling (CRYO) eller miljøforvitring (W) og fra ubehandlede PBAT-pellets. Plastmaterialerne blev derefter behandlet ved mekanisk fræsning til dannelse af parlamentsmedlemmer med en størrelse på 46-840 μm, hvilket efterlignede slid af plastfragmenter ved vind og mekaniske maskiner. Parlamentsmedlemmerne blev derefter sigtet i flere størrelsesfraktioner for at muliggøre yderligere analyse. Endelig blev sigtefraktionen på 106 μm udsat for vådslibning for at generere NP’er på 20-900 nm, en proces, der efterligner den langsomme størrelsesreduktionsproces for jordbaserede parlamentsmedlemmer. Dimensionerne og formen for parlamentsmedlemmer blev bestemt gennem billedanalyse af stereomikrografer, og dynamisk lysspredning (DLS) blev anvendt til at vurdere partikelstørrelse for NP’er. Samlet set viste denne størrelsesreduktionsmetode sig effektiv til dannelse af parlamentsmedlemmer og NP’er sammensat af bionedbrydelig plast såsom polybutylenadipat-co-terephthalat (PBAT), der repræsenterer mulchmaterialer, der anvendes til produktion af landbrugsspecialafgrøder.

Introduction

I de seneste årtier har den hurtigt stigende globale produktion af plast og forkert bortskaffelse og manglende genanvendelse af plastaffald ført til miljøforurening, der har påvirket marine og terrestriske økosystemer 1,2,3. Plastmaterialer er afgørende for moderne landbrug, især for at dyrke grøntsager, små frugter og andre specialafgrøder. Deres anvendelse som mulchfilm, høje og lave tunnelbelægninger, dryptape og andre applikationer sigter mod at forbedre afgrødeudbyttet og kvaliteten, sænke produktionsomkostningerne og fremme bæredygtige landbrugsmetoder 4,5. Den voksende anvendelse af “plasticulture” har imidlertid rejst bekymringer om dannelse, distribution og opbevaring af plaststykker i landbrugsmiljøer. Efter en kontinuerlig fragmenteringsproces forårsaget af brude gennem miljøforringelse i løbet af levetiden danner større plastfragmenter mikro- og nanoplastik (MNP’er), som fortsætter i jorden eller migrerer til tilstødende vandveje via vandafstrømning og vind 6,7,8. Miljøfaktorer såsom ultraviolet (UV) stråling gennem sollys, mekaniske kræfter af vand og biologiske faktorer udløser plastisk nedbrydning af miljømæssigt spredt plast, hvilket resulterer i nedbrydning af større plastfragmenter i makro- eller mesoplastpartikler 9,10. Yderligere defragmentering danner mikroplast (PARLAMENTSMEDLEMMER) og nanoplastik (NP’er), der afspejler partikler af gennemsnitlig størrelse (nominel diameter; dp) på henholdsvis 1-5000 μm og 1-1000 nm11. Den øvre dp-grænse for NP’er (dvs. en nedre grænse for parlamentsmedlemmer) er imidlertid ikke universelt aftalt, og i flere papirer er dette angivet som 100 nm12.

MNP’er fra plastaffald udgør en ny global trussel mod jordens sundhed og økosystemtjenester. Adsorption af tungmetaller fra ferskvand af parlamentsmedlemmer førte til en 800 gange højere koncentration af tungmetaller sammenlignet med det omgivende miljø13. Desuden udgør parlamentsmedlemmer i akvatiske økosystemer flere stressfaktorer og forurenende stoffer ved at ændre lysindtrængning, forårsage iltsvind og forårsage vedhæftning til forskellige biota, herunder penetration og ophobning i vandorganismer14.

Nylige undersøgelser tyder på, at MNP’er kan påvirke jordgeokemi og biota, herunder mikrobielle samfund og planter 15,16,17. Desuden truer NP’er fødenettet 17,18,19,20. Da MNP’er let gennemgår vertikal og vandret transport i jord, kan de transportere absorberede forurenende stoffer såsom pesticider, blødgørere og mikroorganismer gennem jorden til grundvand eller akvatiske økosystemer såsom floder og vandløb 21,22,23,24. Konventionel landbrugsplast såsom mulchfilm er lavet af polyethylen, som skal fjernes fra marken efter brug og bortskaffes på lossepladser. Ufuldstændig fjernelse fører imidlertid til betydelig ophobning af plastaffald i jord 9,25,26. Alternativt er jordbionedbrydelige plastmuld (BDM’er) designet til at blive dyrket i jorden efter brug, hvor de vil nedbrydes over tid. BDM’er forbliver dog midlertidigt i jorden og nedbrydes gradvist og fragmenteres til parlamentsmedlemmer og NP’er 9,27.

Mange nuværende miljøøkotoksikologiske og skæbneundersøgelser anvender idealiserede og ikke-repræsentative parlamentsmedlemmer og NP’er modelmaterialer. De mest almindeligt anvendte surrogat-MNP’er er monodisperse polystyrenmikro- eller nanosfærer, som ikke afspejler de faktiske MNP’er, der bor i miljøet12,28. Derfor kan udvælgelsen af ikke-repræsentative parlamentsmedlemmer og NP’er resultere i unøjagtige målinger og resultater. Baseret på manglen på passende model-ΜNP’er til terrestriske miljøundersøgelser var forfatterne motiverede til at forberede sådanne modeller fra landbrugsplast. Vi har tidligere rapporteret om dannelsen af MNP’er fra BBM’er og polyethylenpellets gennem mekanisk fræsning og slibning af plastpellets og filmmaterialer og MNP’ernes dimensionelle og molekylære egenskaber29. Det nuværende papir giver en mere detaljeret protokol til forberedelse af MNP’er, der kan anvendes mere bredt på al landbrugsplast, såsom mulchfilm eller deres pelleterede råmaterialer (figur 1). Her, for at tjene som et eksempel, valgte vi en mulchfilm og sfæriske pellets af den bionedbrydelige polymer polybutylenadipatterephthalat (PBAT) til at repræsentere landbrugsplast.

Protocol

1. Forarbejdning af parlamentsmedlemmer fra plastpellets gennem kryogen forbehandling og fræsning BEMÆRK: Denne metode er baseret på en procedure, der er beskrevet andetsteds, idet der anvendes en PBAT-film sammensat af det samme materiale, der blev brugt til denne præsenterede undersøgelse29. Afvej polymerpelletprøver på ~ 1 g og overfør til en 50 ml glasbeholder. Placer det “rektangulære leveringsrør” med en 20 mesh (840 …

Representative Results

For at validere den eksperimentelle proceduremetode og analyse blev parlamentsmedlemmer og NP’er dannet af pellets og filmmaterialer og sammenlignet efter størrelse og form ved hjælp af mikroskopiske billeder. Metoden beskrevet i figur 1 dannede effektivt parlamentsmedlemmer og NP’er fra bionedbrydelige plastpellets og film; dette blev opnået gennem kryogen køling, fræsning og vådslibning og karakterisering. Det førstnævnte trin var unødvendigt for miljømæssigt forvitrede film, fo…

Discussion

Denne metode beskriver en effektiv proces, der oprindeligt blev beskrevet i en tidligere publikation29, til at forberede MNP’er hentet fra pellets og mulchfilm til miljøundersøgelser. Størrelsesreduktionsprocessen involverede kryogen køling (kun til film), tørfræsning og vådslibningstrin til fremstilling af model-MNP’er. Vi har anvendt denne metode til at fremstille MNP’er fra en bred vifte af polymere råmaterialer, herunder polyethylen med lav densitet (LDPE), polybutyratadipat-co-terepht…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev finansieret af Herbert College of Agriculture, Biosystems Engineering and Soil Department og Science Alliance ved University of Tennessee, Knoxville. Desuden anerkender forfatterne taknemmeligt den økonomiske støtte, der ydes gennem USDA Grant 2020-67019-31167 til denne forskning. De første råmaterialer til fremstilling af MNP’er af PBAT-baseret bionedbrydelig mulchfilm blev venligt leveret af BioBag Americas, Inc. (Dunevin, FL, USA) og PBAT-pellets af Mobius, LLC (Lenoir City, TN).

Materials

Aluminum dish, 150 mL  Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 08-732-103 Drying of collected NPs
Aluminum dish, 500 mL VWR International, Radnor, PA, USA 25433-018 Collecting NPs after wet-grinding
Centrifuge Fisher Scientific, Waltham, MA, USA Centrific 228 Container for centrifugation
Delivery tube, #20, 840 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M30 Sieving of the first fraction during milling
Delivery tube, #60, 250 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M45 Sieving of the second fraction (3x)  during milling
Thermomixer,  5350 Mixer Eppendorf North America, Enfield, CT, USA 05-400-200 Analysis of sieving experiments
FT-IR Spectrum Two, spectrometer with attenuated total reflectance (ATR) Perkin Elmer, Waltham, MA, USA L1050228  Measuring FTIR spectra
Glass beaker, 1000 mL DWK Life Sciences, Milville, NJ, USA 02-555-113 Stirring of MPs-water slurry before grinding
Glass front plate Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383N55  Front cover plaste for Wiley Mini Mill
Glass jar, 50 mL Uline, Pleasant Prairie, WI, USA S-15846P Collective MPs after milling
Glove Box, neoprene Bel-Art-SP Scienceware, Wayne, NJ, USA BEL-H500290000 22-Inch, Size 10
Zetasizer Nano ZS 90 size analyzer Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  Zetasizer Nano ZS Measuring nanoplastics dispersed in DI-water
Microscope camera Nikon, Tokyo, 108-6290, Japan Nikon Digital Sight 10 Combined with Olympus microscope to receive digital images
Microscope Olympus, Shinjuku, Tokyo, Japan Model SZ 61 Imaging of MPs
Nitrogen jar, low form dewar flasks Cole-Palmer, Vernon Hills, IL, USA UX-03771-23 Storage of liquid nitrogen during cryogenic cooling
Accurate Blend 200, 12-speed blender Oster, Boca Raton, FL, USA 6684 Initiating the size reduction of cryogenically treated plastic film
PBAT film, – BioAgri™ (Mater-Bi®) BioBag Americas, Inc, Dunedin, FL, USA 0.7 mm thick Feedstock to form MPs and NPs, agricultural mulch film
PBAT pellets Mobius, LLC, Lenoir City, TN, USA Diameter 3 mm Feedstock to form microplastics (MPs) and nanoplastics (NPs) trough milling and grinding
Plastic centrifuge tubes, 50 mL Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 06-443-18 Centrifugation of slurry after wet-grinding
Plastic jar, 1000 mL, pre-cleaned, straight sided Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 05-719-733 Collection of NPs during and after wet grinding
Polygon stir bars, diameterø=8 mm, length=50.8 mm   Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 14-512-127 Stirring of MPs slurry prior to wet-grinding
Scissors, titanium bonded Westcott, Shelton, CT, USA 13901 Cutting of initial PBAT film feedstocks
Square glass cell with square aperture and cap, 12 mm O.D. Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  PCS1115 Measuring of NPs particle size
Stainless steel bottom, 3 inch, pan Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8401 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 140 (106 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1308 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 20 (850 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1296 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 325 (45 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1313 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 60 (250 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1303 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel top cover, 3 inch Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8406 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel tweezers Global Industrial, Port Washington, NY, USA T9FB2264892 Transferring of  frozen film particles from jar into blender
Vacuum oven, model 281A Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 13-262-50 Vacuum oven to dry NPs after wet-grinding
Friction grinding machine, Supermass Colloider Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKCA6-2J Grinding machine to form NPs from MPs
Wet-grinding stone, grit size: 297 μm -420 μm Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKE6-46DD Grinding stone to form NPs from MPs
Wiley Mini Mill, rotary cutting mill Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA NC1346618 Size reduction of pellets and film into MPs and NPs
Software
FTIR-Spectroscopy software Perkin Elmer, Waltham, MA, USA Spectrum 10  Collection of spectra from the initial plastic, MPs and NPs
Image J, image processing program National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA Version 1.53n Analysis of digital images received from microscopy 
Microscope software, ds-fi1 software Malvern Panalytical , Malvern, UK Firmware DS-U1 Ver3.10 Recording of digital images
Microsoft, Windows,  Excel 365, spreadsheet software Microsoft, Redmond, WA, USA Office 365 Calculating the average particle size and creating FTIR spectra images
JMP software, statistical software SAS Institute Inc., Cary, NC, 1989-2021 Version 15 Statistical analysis of particle size and perform best fit of data set
Unscrambler software Camo Analytics, Oslo, Norway Version 9.2 Normalizing and converting FTIR spectra into .csv fromat

References

  1. Jin, Z., Dan, L. Review on the occurrence, analysis methods, toxicity and health effects of micro-and nano-plastics in the environment. Environmental Chemistry. (1), 28-40 (2021).
  2. Kumar, M., et al. Current research trends on micro-and nano-plastics as an emerging threat to global environment: a review. Journal of Hazardous Materials. 409, 124967 (2021).
  3. Alimba, C. G., Faggio, C., Sivanesan, S., Ogunkanmi, A. L., Krishnamurthi, K. Micro (nano)-plastics in the environment and risk of carcinogenesis: Insight into possible mechanisms. Journal of Hazardous Materials. 416, 126143 (2021).
  4. Serrano-Ruiz, H., Martin-Closas, L., Pelacho, A. M. Biodegradable plastic mulches: Impact on the agricultural biotic environment. Science of The Total Environment. 750, 141228 (2021).
  5. Hayes, D. G., et al. Biodegradable plastic mulch films for sustainable specialty crop production. Polymers for Agri-Food Applications. , 183-213 (2019).
  6. Viaroli, S., Lancia, M., Re, V. Microplastics contamination of groundwater: Current evidence and future perspectives. A review. Science of The Total Environment. , 153851 (2022).
  7. Rillig, M. C., Lehmann, A. Microplastic in terrestrial ecosystems. Science. 368 (6498), 1430-1431 (2020).
  8. Anunciado, M. B., et al. Effect of environmental weathering on biodegradation of biodegradable plastic mulch films under ambient soil and composting conditions. Journal of Polymers and the Environment. 29 (9), 2916-2931 (2021).
  9. Yang, Y., et al. Kinetics of microplastic generation from different types of mulch films in agricultural soil. Science of The Total Environment. 814, 152572 (2022).
  10. Hayes, D. G., et al. Effect of diverse weathering conditions on the physicochemical properties of biodegradable plastic mulches. Polymer Testing. 62, 454-467 (2017).
  11. Schwaferts, C., Niessner, R., Elsner, M., Ivleva, N. P. Methods for the analysis of submicrometer-and nanoplastic particles in the environment. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 112, 52-65 (2019).
  12. Gigault, J., et al. Current opinion: what is a nanoplastic. Environmental Pollution. 235, 1030-1034 (2018).
  13. Naqash, N., Prakash, S., Kapoor, D., Singh, R. Interaction of freshwater microplastics with biota and heavy metals: a review. Environmental Chemistry Letters. 18 (6), 1813-1824 (2020).
  14. Manzoor, S., Naqash, N., Rashid, G., Singh, R. Plastic material degradation and formation of microplastic in the environment: A review. Materials Today: Proceedings. , 3254-3260 (2022).
  15. de Souza Machado, A. A., et al. Impacts of microplastics on the soil biophysical environment. Environmental Science & Technology. 52 (17), 9656-9665 (2018).
  16. Jacques, O., Prosser, R. A probabilistic risk assessment of microplastics in soil ecosystems. Science of The Total Environment. 757, 143987 (2021).
  17. Kwak, J. I., An, Y. -. J. Microplastic digestion generates fragmented nanoplastics in soils and damages earthworm spermatogenesis and coelomocyte viability. Journal of Hazardous Materials. 402, 124034 (2021).
  18. Wahl, A., et al. Nanoplastic occurrence in a soil amended with plastic debris. Chemosphere. 262, 127784 (2021).
  19. Vighi, M., et al. Micro and nano-plastics in the environment: research priorities for the near future. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology Volume 257. , 163-218 (2021).
  20. Pironti, C., et al. Microplastics in the environment: intake through the food web, human exposure and toxicological effects. Toxics. 9 (9), 224 (2021).
  21. Zurier, H. S., Goddard, J. M. Biodegradation of microplastics in food and agriculture. Current Opinion in Food Science. 37, 37-44 (2021).
  22. Horton, A. A., Dixon, S. J. Microplastics: An introduction to environmental transport processes. Wiley Interdisciplinary Reviews: Water. 5 (2), 1268 (2018).
  23. Panno, S. V., et al. Microplastic contamination in karst groundwater systems. Groundwater. 57 (2), 189-196 (2019).
  24. Su, Y., et al. Delivery, uptake, fate, an transport of engineered nanoparticles in plants: a critical review and data analysis. Environmental Science: Nano. 6 (8), 2311-2331 (2019).
  25. Yu, Y., Griffin-LaHue, D. E., Miles, C. A., Hayes, D. G., Flury, M. Are micro-and nanoplastics from soil-biodegradable plastic mulches an environmental concern. Journal of Hazardous Materials Advances. 4, 100024 (2021).
  26. Hayes, D. G. Enhanced end-of-life performance for biodegradable plastic mulch films through improving standards and addressing research gaps. Current Opinion in Chemical Engineering. 33, 100695 (2021).
  27. Qin, M., et al. A review of biodegradable plastics to biodegradable microplastics: Another ecological threat to soil environments. Journal of Cleaner Production. 312, 127816 (2021).
  28. Phuong, N. N., et al. Is there any consistency between the microplastics found in the field and those used in laboratory experiments. Environmental Pollution. 211, 111-123 (2016).
  29. Astner, A., et al. Mechanical formation of micro-and nano-plastic materials for environmental studies in agricultural ecosystems. Science of The Total Environment. 685, 1097-1106 (2019).
  30. Rist, S., Hartmann, N. B. Aquatic ecotoxicity of microplastics and nanoplastics: lessons learned from engineered nanomaterials. Freshwater Microplastics. , 25-49 (2018).
  31. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  32. Raju, S., et al. Improved methodology to determine the fate and transport of microplastics in a secondary wastewater treatment plant. Water Research. 173, 115549 (2020).
  33. Caputo, F., et al. Measuring particle size distribution and mass concentration of nanoplastics and microplastics: addressing some analytical challenges in the sub-micron size range. Journal of Colloid and Interface Science. 588, 401-417 (2021).
  34. Xu, M., et al. Polystyrene microplastics alleviate the effects of sulfamethazine on soil microbial communities at different CO2 concentrations. Journal of Hazardous Materials. 413, 125286 (2021).
  35. Ding, L., et al. Insight into interactions of polystyrene microplastics with different types and compositions of dissolved organic matter. Science of The Total Environment. 824, 153883 (2022).
  36. Abbasimaedeh, P., Ghanbari, A., O’Kelly, B. C., Tavanafar, M., Irdmoosa, K. G. Geomechanical behaviour of uncemented expanded polystyrene (EPS) beads-clayey soil mixtures as lightweight fill. Geotechnics. 1 (1), 38-58 (2021).
  37. Li, Z., Li, Q., Li, R., Zhou, J., Wang, G. The distribution and impact of polystyrene nanoplastics on cucumber plants. Environmental Science and Pollution Research. 28 (13), 16042-16053 (2021).
  38. Sobhani, Z., Panneerselvan, L., Fang, C., Naidu, R., Megharaj, M. Chronic and transgenerational effects of polystyrene microplastics at environmentally relevant concentrations in earthworms (Eisenia fetida). Environmental Toxicology and Chemistry. 40 (8), 2240-2246 (2021).
  39. Lionetto, F., Esposito Corcione, C., Rizzo, A., Maffezzoli, A. Production and characterization of polyethylene terephthalate nanoparticles. Polymers. 13 (21), 3745 (2021).
  40. Dümichen, E., et al. Analysis of polyethylene microplastics in environmental samples, using a thermal decomposition method. Water Research. 85, 451-457 (2015).
  41. Robotti, M., et al. Attrition and cryogenic milling production for low pressure cold gas spray and composite coatings characterization. Advanced Powder Technology. 27 (4), 1257-1264 (2016).
  42. Ducoli, S., et al. A different protein corona cloaks "true-to-life" nanoplastics with respect to synthetic polystyrene nanobeads. Environmental Science: Nano. 9 (4), 1414-1426 (2022).
  43. El Hadri, H., Gigault, J., Maxit, B., Grassl, B., Reynaud, S. Nanoplastic from mechanically degraded primary and secondary microplastics for environmental assessments. NanoImpact. 17, 100206 (2020).
  44. Eitzen, L., et al. The challenge in preparing particle suspensions for aquatic microplastic research. Environmental research. 168, 490-495 (2019).
  45. Ekvall, M. T., et al. Nanoplastics formed during the mechanical breakdown of daily-use polystyrene products. Nanoscale advances. 1 (3), 1055-1061 (2019).
  46. Caldwell, J., et al. Fluorescent plastic nanoparticles to track their interaction and fate in physiological environments. Environmental Science: Nano. 8 (2), 502-513 (2021).
  47. Zeb, A., et al. Evaluating the knowledge structure of micro-and nanoplastics in terrestrial environment through scientometric assessment. Applied Soil Ecology. 177, 104507 (2022).
  48. Ji, Z., et al. Effects of pristine microplastics and nanoplastics on soil invertebrates: A systematic review and meta-analysis of available data. Science of The Total Environment. 788, 147784 (2021).
  49. de Alkimin, G. D., Gonçalves, J. M., Nathan, J., Bebianno, M. J. Impact of micro and nanoplastics in the marine environment. Assessing the Effects of Emerging Plastics on the Environment and Public Health. , 172-225 (2022).
  50. Pires, A., Cuccaro, A., Sole, M., Freitas, R. Micro (nano) plastics and plastic additives effects in marine annelids: A literature review. Environmental Research. , 113642 (2022).
  51. Hurley, R. R., Nizzetto, L. Fate and occurrence of micro (nano) plastics in soils: Knowledge gaps and possible risks. Current Opinion in Environmental Science & Health. 1, 6-11 (2018).
check_url/fr/64112?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Astner, A. F., Hayes, D. G., O’Neill, H. M., Evans, B. R., Pingali, S. V., Urban, V. S., Young, T. M. Forming Micro-and Nano-Plastics from Agricultural Plastic Films for Employment in Fundamental Research Studies. J. Vis. Exp. (185), e64112, doi:10.3791/64112 (2022).

View Video