Summary

経口摂食とマイクロインジェクションによる成体蚊の実験的ウイルス感染

Published: July 28, 2022
doi:

Summary

経口栄養と胸腔内注射感染を含むこの方法論は、アルボウイルス感染に対する中腸および/または唾液腺バリアの影響を効果的に評価することができました。

Abstract

脊椎動物の感染性病原体である蚊媒介性ウイルス(MBV)は、多くの蚊種によって広がり、公衆衛生に深刻な脅威をもたらしています。一度摂取されると、ウイルスは蚊の中腸関門を乗り越えて血リンパに到達しなければならず、そこから唾液腺に広がる可能性があります。蚊が刺されると、これらのウイルスは新しい脊椎動物の宿主に広がります。同様に、蚊は異なるウイルスを拾うかもしれません。一般に、腸 を介して 唾液腺に侵入する可能性のあるウイルスはごくわずかです。腺へのこれらのウイルスの伝達効率は、異なる蚊種に見られる2つの物理的障壁、すなわち中腸障壁および唾液腺障壁によって影響を受ける。このプロトコルは、経口栄養および胸腔内注射感染後の ネッタイシマカの唾液腺におけるウイルス検出の方法を提示します。さらに、腸および/または唾液腺がウイルスの拡散を妨げるかどうかを判断することは、 ネッタイシマカによって伝染するMBVのリスク評価に役立ちます。

Introduction

RNAウイルスの不均一なグループである蚊媒介性ウイルス(MBV)は、蚊媒介動物に存続し、その後脊椎動物の宿主に広がる可能性があります1。臨床的に重要なMBVは、主にフラビウイルス科、トガウイルス科、レオウイルス科、ペリブニャビダ科の4つのウイルスファミリーに分布しています2,3。ここ数十年で、これらのウイルスは世界中で報告されており、公衆衛生上の問題を引き起こしています。最もよく知られているMBVの1つとして、デング熱ウイルス(DENV)は、過去20年間で100か国以上で最も一般的な新興または再出現のアルボウイルスになりました4。内陸でのジカウイルス(ZIKV)の発見以来、大陸のほぼすべての熱帯および亜熱帯の国と地域がヒトZIKV感染を報告しています5。ウイルス感染のリスクを評価するために、近年の多くの研究は、これらのウイルスに対する蚊媒介物の能力に焦点を合わせている6,7。その結果、ベクター媒介性疾患を効果的に予防および制御することが重要です。

実験室で最も飼育しやすい蚊の1つであるネッタイシマカ(Ae. aegypti)は、DENV、ZIKV、チクングニアウイルス(CHIKV)、および黄熱病ウイルス(YFV)の重要なベクターです8。長い間、Ae. aegyptiはアフリカ大陸と東南アジアでのみ発見されていましたが、近年はほぼすべての大陸に定着しています9。さらに、エジプトの世界的な存在量は継続的に増加しており、世紀末までに推定20%増加しています10。中国では2004年から2009年にかけて、日々の気温の上昇により、DENVに対するAe.エジプトベクター能力が明らかに増加しました11。病原性ベクターとしてのAe. aegyptiの地位は、中国で著しく上昇している。したがって、これらの課題に対処するには、Ae. aegyptiのウイルスを感染させるベクター能力を調査する必要があります。

血食性節足動物として、雌の蚊は脊椎動物の宿主の皮膚を突き刺し、血液を食べます。蚊は、ウイルスに感染した宿主からウイルスを取得し、そのウイルスを新しい宿主に感染させることがあります。そのように、ベクター能力を決定するために、蚊は実験室設定12の給餌システムを通してアルボウイルスを含む人工血粉を給餌される。個々の蚊は、感染後数日で頭、体、唾液分泌物に分離されます。ウイルスの感染、播種、および感染率を測定するために、定量的逆転写PCR(qRT-PCR)またはプラークアッセイによってウイルス力価が検出されています。しかし、すべての蚊が中腸感染症を発症し、血液供給後に次の宿主にウイルスを感染させる能力を発症するわけではありません。それは、病原体が体内に侵入するのを防ぎ、自然免疫において重要な役割を果たす蚊の生理学的障壁と関連しています13。中腸バリア、特に中腸感染バリア(MIB)と中腸エスケープバリア(MEB)は、ウイルスがベクターに全身的に感染できるかどうか、およびベクターが広がる効率に影響を与えます。それは、唾液腺感染および脱出障壁を示す唾液腺などの他の組織の感染の分析を妨害する13,14。ベクターにおける中腸および唾液腺の感染をよりよく特徴付けるために、Ae. aegyptiにおけるアルボウイルスの経口摂食および胸腔内接種のための詳細なプロトコルを本明細書に提示する。このプロトコルは、ネッタイシマカ属のDENVおよびZIKV感染など、さまざまな蚊媒介動物における追加のアルボウイルス感染に適用される可能性があり、実行可能な手順であることが判明する可能性があります。

Protocol

1.ウイルスと蚊の準備 ウイルスの準備注:すべてのプロセスは、バイオセーフティレベル2(BSL-2)の実験室で実施されました。使用されるバイオセーフティーコンタメントのレベルは、病原体のリスク評価と国や地域に固有の規制によって決定されるべきです。このプロセスは、バイオセーフティキャビネットで実行する必要があります。1 x 106 C6/36細胞をT75?…

Representative Results

人工血液栄養(ウイルスの最終力価は6.4 x 106 PFU/mL)および胸腔内注射(ウイルス量は340 PFU)による感染蚊のEBIV分布を調べるために、感染後10日(dpi)の蚊の唾液、頭部、腸中のウイルスRNAを測定しました。 Ae. aegyptiの場合、胸腔内接種された雌蚊の腸、頭部、唾液中のEBIVのウイルス力価は、口腔に感染した雌蚊よりもはるかに高かった(図2A-…

Discussion

この方法の目的は、経口栄養と胸腔内接種によるベクター能力を評価することにより、1つの蚊媒介性ウイルスの包括的なリスク評価を提供することでした。

経口摂食実験では、充血した蚊を摘み取って新しい容器に移す必要があり、オペレーターに深刻なリスクをもたらします。この理由は、感染していない蚊を含むすべての蚊が感染源である可能性があるためです<sup…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作業は、武漢科学技術計画プロジェクト(2018201261638501)によってサポートされました。

Materials

Aedes aegypti  Rockefeller strain
Automated nucleic acid extraction system  NanoMagBio S-48
BHK-21 cells National Virus Resource Center, Wuhan Institute of Virology
Buckets
C6/36 cells  National Virus Resource Center, Wuhan Institute of Virology
Carbon dioxide spray gun  wuhan Yihong YHDFPCO2
Centrifugal machine Himac  CF16RN
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System  Bio-Rad CFX96 Touch
Ebinur Lake virus Cu20-XJ isolation
Formaldehyde  Wuhan Baiqiandu B0003
Glove box 
Glucose Hushi 10010518
Immersion oil  Cargille 16908-1
Insect incubator Memmert HPP750T7
Low Temperature Tissue Homogenizer Grinding Machine  Servicebio KZ-III-F
Magnetic Virus Genome Extraction Kit NanoMagBio NMG0966-16
mesh cages (30 x 30 x 30 cm) Huayu HY-35
methylcellulose Calbiochem 17851
mice feedstuff powder  BESSN BS018
Microelectrode Puller WPI PUL-1000 PUL-1000 is a microprocessor controlled horizontal puller for making glass micropipettes or microelectrodes used in intracellular recording, patch clamp studies, microperfusion or microinjection.
Mosquito net meshes 
Nanoject III Programmable Nanoliter Injector Drummond 3-000-207
One Step TB Green PrimeScript PLUS RT-PCR Kit  Takara RR096A
PBS, pH 7.4 Gibco C10010500BT
Penicillin/streptomycin Gibco 151140-122
Petri dishes 
Plastic cupes (7 oz)  Hubei Duoanduo
Plastic cups (24 oz)  Anhui shangji PET32-Tub-1
Plastic disposable droppers Biosharp BS-XG-O3L-NS
Refrigerator (-80 °C) sanyo MDF-U54V
Replacement Glass Capillaries Drummond 3-000-203-G/X
RPMI medium 1640  Gibco C11875500BT
Screw cap storage tubes (2 mL ) biofil  FCT010005
Shallow dishes 
Sponge
Sterile defibrillated horse blood Wuhan Purity Biotechnology CDHXB413
T75 culture flask Corning 430829
The artificial mosquito feeding system  Hemotek Hemotek PS6
The dissecting microscope  ZEISS  stemi508
The ice plates
The mosquito absorbing machine  Ningbo Bangning
The pipette tips  Axygen TF
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25200056
Tweezers Dumont 0203-5-PO

References

  1. Yu, X., Zhu, Y., Xiao, X., Wang, P., Cheng, G. Progress towards Understanding the Mosquito-Borne Virus Life Cycle. Trends in Parasitology. 35 (12), 1009-1017 (2019).
  2. Sukhralia, S., et al. From dengue to Zika: the wide spread of mosquito-borne arboviruses. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 38 (1), 3-14 (2019).
  3. Kuhn, J. H., et al. Taxonomic update of phylum Negarnaviricota (Riboviria: Orthornavirae), including the large orders Bunyavirales and Mononegavirales. Archives of Virology. 166 (12), 3513-3566 (2021).
  4. Bhatt, S., et al. The global distribution and burden of dengue. Nature. 496 (7446), 504-507 (2013).
  5. Kindhauser, M. K., Allen, T., Frank, V., Santhana, R. S., Dye, C. Zika: the origin and spread of a mosquito-borne virus. Bull World Health Organ. 94 (9), 675-686 (2016).
  6. Wei, Y., et al. Vector Competence for DENV-2 Among Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) Populations in China. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 11, (2021).
  7. Morales-Vargas, R. E., Misse, D., Chavez, I. F., Kittayapong, P. Vector Competence for Dengue-2 Viruses Isolated from Patients with Different Disease Severity. Pathogens. 9 (10), (2020).
  8. Naslund, J., et al. Emerging Mosquito-Borne Viruses Linked to Aedes aegypti and Aedes albopictus: Global Status and Preventive Strategies. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 21 (10), 731-746 (2021).
  9. Lwande, O. W., et al. Globe-Trotting Aedes aegypti and Aedes albopictus: Risk Factors for Arbovirus Pandemics. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 20 (2), 71-81 (2020).
  10. Liu-Helmersson, J., Brannstrom, A., Sewe, M. O., Semenza, J. C., Rocklov, J. Estimating Past, Present, and Future Trends in the Global Distribution and Abundance of the Arbovirus Vector Aedes aegypti Under Climate Change Scenarios. Fronters in Public Health. 7, 148 (2019).
  11. Cai, W., et al. The 2021 China report of the Lancet Countdown on health and climate change: seizing the window of opportunity. Lancet Public Health. 6 (12), 932-947 (2021).
  12. Chan, K. K., Auguste, A. J., Brewster, C. C., Paulson, S. L. Vector competence of Virginia mosquitoes for Zika and Cache Valley viruses. Parasites & Vectors. 13 (1), 188 (2020).
  13. Kumar, A., et al. Mosquito Innate Immunity. Insects. 9 (3), (2018).
  14. Franz, A. W., Kantor, A. M., Passarelli, A. L., Clem, R. J. Tissue Barriers to Arbovirus Infection in Mosquitoes. Viruses. 7 (7), 3741-3767 (2015).
  15. Xia, H., et al. Characterization of Ebinur Lake Virus and Its Human Seroprevalence at the China-Kazakhstan Border. Frontiers in Microbiology. 10, (2020).
  16. Baer, A., Kehn-Hall, K. Viral Concentration Determination Through Plaque Assays: Using Traditional and Novel Overlay Systems. Jove-Journal of Visualized Experiments. (93), e52065 (2014).
  17. Xu, M. Y., Liu, S. Q., Deng, C. L., Zhang, Q. Y., Zhang, B. Detection of Zika virus by SYBR green one-step real-time RT-PCR. Journal of Virological Methods. 236, 93-97 (2016).
  18. Yang, C., et al. Vector competence and transcriptional response of Aedes aegypti for Ebinur Lake virus, a newly mosquito-borne orthobunyavirus. bioRxiv. , (2022).
  19. Britton, S., et al. Laboratory-acquired dengue virus infection–a case report. PLOS Neglected Tropical Diseases. 5 (11), 1324 (2011).
  20. Weger-Lucarelli, J., et al. Vector Competence of American Mosquitoes for Three Strains of Zika Virus. PLOS Neglected Tropical Diseases. 10 (10), 0005101 (2016).
  21. Elizondo-Quiroga, D., et al. Vector competence of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus from the metropolitan area of Guadalajara, Jalisco, Mexico for Zika virus. Scientific reports. 9 (1), 16955 (2019).

Play Video

Citer Cet Article
Wang, F., Yang, C., Wang, S., Wu, Q., Ochieng, C., Yuan, Z., Xia, H. Experimental Viral Infection in Adult Mosquitoes by Oral Feeding and Microinjection. J. Vis. Exp. (185), e63830, doi:10.3791/63830 (2022).

View Video