Представлен протокол получения химических изображений с помощью широкополосной стимулированной рамановской рассеяния (SRS) микроскопии. Основанный на микроскопе SRS, который работает с дифференциальным многоканальным обнаружением блокировки, протокол описывает подготовку образцов, настройку аппарата SRS и хемометрию для распутывания различных компонентов химически гетерогенных образцов.
Микроскопия стимулированного рамановского рассеяния (SRS) является нелинейным оптическим методом для химической визуализации без маркировки. Этот аналитический инструмент предоставляет химические карты с высокой скоростью и высоким пространственным разрешением тонких образцов путем непосредственного опроса их молекулярных колебаний. В своей стандартной реализации микроскопия SRS является узкополосной и формирует изображения только с одной вибрационной частотой одновременно. Однако такой подход не только препятствует химической специфичности SRS, но и пренебрегает богатством информации, закодированной в вибрационных спектрах.
Эти ограничения могут быть преодолены широкополосной SRS, реализацией, способной извлекать вибрационный спектр на пиксель изображения параллельно. Это обеспечивает гиперспектральные данные, которые в сочетании с хемометрическим анализом максимизируют объем информации, полученной из образца. Таким образом, широкополосные СГД улучшают химическую специфичность системы, позволяя количественно определять концентрацию различных составляющих образца. Здесь мы сообщаем о протоколе химической визуализации с широкополосной микроскопией SRS, основанном на домашнем микроскопе SRS, работающем с пользовательским дифференциальным многоканальным усилителем с блокировкой. В нем обсуждается пробоподготовка, выравнивание аппарата SRS и хемометрический анализ. Приобретая вибрационные рамановские спектры, протокол иллюстрирует, как идентифицировать различные химические виды в смеси, определяя их относительные концентрации.
Рамановская микроскопия является мощным методом визуализации, который предоставляет богатые химические карты путем измерения рамановского рассеяния1, неупругого радиационного процесса, который происходит от молекул, вибрирующих в ответ нападающий свет 2,3. Каждый пиксель рамановской карты содержит спектр, который несет прямую информацию о химическом составе и структуре образца, что приводит к изображениям с присущим ему вибрационным контрастом. На сегодняшний день рамановская микроскопия является эталонной точкой зрения для микроспектроскопических исследований молекулярных колебаний, поскольку ни один другой метод визуализации не может производить изображения как с высокой химической специфичностью, так и с высоким пространственным разрешением4. Несмотря на выдающуюся химическую специфичность, эффективность генерации комбинационного рассеяния низкая, что требует либо увеличенного времени выдержки пикселей, либо мощного возбуждения, что приводит, соответственно, к низкой скорости сбора и несовместимости с чувствительными образцами.
Этот единственный недостаток рамановской микроскопии заставил исследователей применить когерентное рамановское рассеяние 5,6,7,8,9 в качестве источника контраста для микроскопии. Это нелинейный оптический процесс, который усиливает вибрационный отклик на несколько (до семи) порядков величины, что позволяет высокоскоростную химическую визуализацию 10,11,12,13. В частности, двумя наиболее используемыми когерентными методами комбинационного рассеяния являются когерентное рамановское рассеяние против Стокса (CARS)14 и стимулированное комбинационное рассеяние (SRS)15. В отличие от CARS, SRS показывает линейную зависимость от концентрации резонансных молекул. Он невосприимчив к нерезонансному фону, нелинейному эффекту, не связанному с каким-либо вибрационным переходом, но искажающему лоренцевы формы, характерные для рамановских спектров молекулярныхколебаний 16,17. Таким образом, микроскопия SRS дает достоверную рамановскую информацию, которая позволяет проводить прямой количественный анализ изображений.
SRS – это нелинейный оптический процесс третьего порядка, который предоставляет прямую информацию о химических связях образца. Он происходит от пространственно-временной суперпозиции двух оптических полей, как правило, в ближней инфракрасной области спектра, а именно насоса и Стокса на частоте ωpu и ωS соответственно 10,11,18. Эта суперпозиция порождает биение при расстройке частоты насоса-Стокса Ω = ωpu-ω S. Когда Ω соответствует молекулярной вибрации ΩR, молекула резонирует, вызывая когерентный перенос энергии между световыми полями и молекулой. В результате молекула достигает вибрационно возбужденного состояния. Этот процесс можно контролировать путем измерения либо аннигиляции фотонов насоса (сигнал, известный как стимулированные рамановские потери [SRL]), либо сопутствующего усиления фотонов Стокса (процесс, известный как стимулированный комбинационный коэффициент усиления [SRG]). SRG и SRL представляют собой небольшие сигналы (ΔI), которые находятся поверх интенсивного и колеблющегося фона (I). Поскольку типичные значения сигнала SRS (ΔI/I) находятся в диапазоне 10-6-10-4, лазерный шум может легко скрыть его. Чтобы смягчить пагубное влияние лазерного шума на отношение сигнал/шум (SNR) и, следовательно, на скорость изображения, обнаружение SRS опирается на методы передачи модуляции (например, блокирующие усилители, резонансные схемы или усреднения коробчатых вагонов) на высоких частотах модуляции (>1 МГц), где лазерный шум достигает своих минимальных значений 15,19,20.
Обычная микроскопия SRS использует узкополосный (≈10 см−1) насос и импульсы Стокса для получения химических изображений на одной вибрационной частоте, что позволяет получать видеоскорректную визуализацию со временем выдержки пикселей всего ≈100 нс 21,22. Однако, поскольку узкополосная микроскопия SRS формирует химические карты путем последовательного сканирования образца только на нескольких вибрационных частотах, его информация ограничена23. Изображений SRS с одним или двумя вибрационными контрастами может быть недостаточно для дифференциации химических веществ с перекрывающимися рамановскими полосами, особенно в гетерогенных системах. Поэтому парадигматический узкополосный микроскоп SRS не использует весь потенциал SRS, потому что исследование нескольких вибрационных частот препятствует его химической специфичности и пренебрегает богатством информации, закодированной в вибрационных спектрах. Кроме того, последовательное сканирование образца на разных частотах приводит к увеличению времени ожидания пикселей, что может вызвать фотоповреждение и предотвратить строгую пространственную сигастрацию между последовательными изображениями, что приводит к артефактам движения.
В отличие от своего узкополосного аналога, широкополосная микроскопия SRS извлекает вибрационный спектр на пиксель при каждом сканировании образца 10,12,24. Таким образом, широкополосная SRS обеспечивает гиперспектральную визуализацию со строгой пространственной соотнесением различных вибрационных контрастов, что позволяет проводить тщательный анализ данных. Это не только выявляет химические составляющие образца через рамановские спектры, но и помогает определить их относительные концентрации. В зависимости от того, как получены спектры, широкополосная микроскопия SRS классифицируется либо как гиперспектральная SRS, либо как мультиплексная SRS. В гиперспектральной SRS спектр SRS на сканируемую точку образца приобретается последовательно (т. е. он извлекается путем развертки Ω развертки частоты), создавая спектр SRS путем объединения сигналов SRS при последовательных рамановских сдвигах. Рамановский спектр измеряется одновременно в нескольких колебательных режимах в мультиплексных SRS. Таким образом, мультиплексный подход SRS сочетает в себе модулированный узкополосный импульс с широкополосным импульсом для управления сигналом SRS на разных частотах и использует многоканальный детектор с чувствительностью, сопоставимой с чувствительностью узкополосной SRS для обнаружения спектров SRS.
В данной работе представлен протокол для получения химических карт гетерогенных образцов с использованием мультиплексной SRS-микроскопии. Схема микроскопа SRS, используемого в этом протоколе, изображена на рисунке 1 и подробно описана в другом месте 25,26,27. Короче говоря, коммерческий волоконный лазер Yb с блокировкой в режиме, производящий импульсы 140 fs, центрированные на 1040 нм, со средней мощностью 10 Вт и частотой повторения 80 МГц, управляет широкополосным микроскопом SRS. Поляризационный делитель пучка (PBS) разделяет фундаментальный луч на две ветви. Для получения узкополосных импульсов Стокса одна ветвь с 4 Вт основного пучка посылается на эталон, который генерирует узкополосный (≈15 см-1) луч, который затем модулируется на частоте 1,6 МГц с помощью акустического оптического модулятора (AOM). Оставшаяся фракция с 6 Вт основного пучка удваивается по частоте кристаллом трибората лития (LBO) толщиной 2,8 мм, вырезанным для согласования фаз типа I (θ = 90°, φ = 13,8°). Полученная вторая генерация гармоник при 520 нм перемещается в X-сложенную полость для накачки оптического параметрического генератора (OPO), устройства, которое использует кристалл LBO толщиной 3,0 мм (фазовое соответствие типа I, θ = 90°, φ = 9,8°) в качестве активной среды для доставки широкополосного оптического излучения, перестраиваемого в спектральной области 680-910 нм (рисунок 2). Эти широкополосные импульсы служат насосом в экспериментах SRS и распространяются на призматический компрессор для предварительной компенсации дисперсионных эффектов, индуцированных объективом микроскопа.
После стадии сжатия волновая пластина λ/2 в сочетании с двулучепреломляющей пластиной YVO4 производит две ортогонально поляризованные реплики, электронное вычитание которых на плоскости обнаружения компенсирует шум широкополосного насоса. Дихроичное зеркало объединяет лучи насоса и Стокса и отправляет их в вертикальный микроскоп. Объектив погружения в воду с числовой диафрагмой (NA) 1,27 фокусирует свет на образце, в то время как масляный объектив с NA 1,4 собирает его. Перед этапом обнаружения фильтр коротких частот (SPF) удаляет модулированный Стокс, в то время как дифракционная решетка, работающая в конфигурации Littrow, рассеивает передаваемый широкополосный насос. Второй PBS2 разделяет реплики насоса, а объектив фокусирует их на двух массивах фотодиодов. Сигналы от этих фотодиодных массивов вычитаются электронным способом и отправляются на домашний многоканальный усилитель с блокировкой (M-LIA). Демодулированный сигнал затем нормализуется показаниями постоянного тока (DC) одного из фотодиодных массивов, создавая таким образом спектр SRL.
В качестве образцового эксперимента мы изображаем смеси нескольких известных рамановских рассеивателей, каждый из которых имеет уникальный рамановский спектр. Таким образом, протокол начинается с описания того, как подготовить эталонные образцы. По мере обнаружения SRL мы продолжаем объяснять, как получить узкополосные импульсы Стокса и настроить оптический источник, который подает импульсы широкополосного насоса (≈250 см-1), а именно самодельный OPO. Протокол показывает выравнивание и оптимизацию оптических лучей, описывая критические параметры, такие как мощность и спектры узкополосного Стокса и широкополосного насоса. Протокол подробно описывает оптический тракт широкополосного насоса, поскольку для этого требуются специальные оптические элементы. Он также объясняет, как найти пространственно-временное перекрытие между импульсами насоса-Стокса и показывает практический способ определения шума относительной интенсивности (RIN), что, в свою очередь, помогает определить лучшую частоту модуляции для экспериментов SRS. Затем мы объясняем принцип работы и калибровку цепи обнаружения. Наконец, протокол показывает процесс сбора данных, хемометрику и конвейер обработки изображений.
Широкополосная микроскопия SRS является мощным методом визуализации, который предлагает подлинный химический контраст для идентификации и распутывания химических компонентов гетерогенного образца. Потенциал этого аналитического инструмента может быть полезен для нескольких областей исследований, начиная от материаловедения до гистопатологии. Недостатком широкополосной микроскопии SRS является тот факт, что она технически требовательна; экспериментатору не только требуется ноу-хау на широкополосных лазерных источниках, но и необходимо манипулировать лазерными импульсами для эффективной генерации SRS, сигнала, который, в свою очередь, должен быть измерен с помощью сложных схем обнаружения. В этой статье представлен протокол, описывающий рабочий процесс для получения химических карт смешанных химических соединений с использованием мультиплексного широкополосного SRS-микроскопа. Хотя описанная работа может быть тривиальной для некоторых лазерных физиков и нелинейных микроскопистов, это может быть не так для читателей, заинтересованных в преимуществах широкополосной микроскопии SRS, чьи научные знания находятся за пределами этих областей. Поэтому мы стремились детализировать каждый шаг, чтобы направлять широкую аудиторию, заинтересованную в широкополосной микроскопии SRS.
Протокол начался с того, что показал, как подготовить простой, но спектроскопически богатый образец, состоящий из нескольких сильных и известных рамановских рассеивателей. Мы обсудили, как получить широкополосный насос и узкополосные пучки Стокса, необходимые для установки микроскопа SRS. На рисунке 5С показана схема установок SHG и OPO. Обратите внимание, что объектив f1 фокусирует фундаментальный луч на LBO1 для генерации SHG, в то время как дихроичное зеркало отражает излучение SHG и передает остаточный фундаментальный луч. Второй объектив f2 коллимирует луч SHG. При f2 > f1 луч SHG расширяется в разы, равный f2/f1. Третья линза f3 фокусирует расширенный луч SHG на втором кристалле LBO типа I (LBO2), разрезанном при θ = 90° и φ = 29,0°. При накачке LBO2 с вышеупомянутым SGH (520 нм) излучение в диапазоне 680-910 нм будет выходить из LBO2 через разночастотную генерацию (DFG), производя два луча: сигнал и направляющее колесо27 (рисунок 5D, E). Последний отбрасывается, в то время как первый усиливается в полости OPO для доставки импульсов насоса, используемых в экспериментах SRS. Насос OPO при 520 нм, а именно пучок SHG, не следует путать с насосом экспериментов SRS (т.е. сигнальным пучком OPO).
Контраст в микроскопии SRS возникает из-за нелинейного сигнала, генерируемого в фокальном месте микроскопа, сигнала, который требует ограничения большого количества фотонов в плоскости образца в данный момент времени. Это удержание фотонов достигается с помощью объектива микроскопа с высокой числовой апертурой (NA), массива линз, который также устанавливает пространственное разрешение системы: чем выше NA, тем выше пространственное разрешение. Тем не менее, цели с высоким NA плотно упакованы стеклом, которое вводит положительный GDD в импульсное излучение, частотное щебетание, которое в конечном итоге расширяет временной профиль импульсов39. Таким образом, GDD, введенный объективом микроскопа, может увеличить продолжительность импульсов широкополосного насоса, сделав его даже длиннее, чем временная оболочка Стокса, и уменьшив эффективную, доступную полосу рамановского сигнала. Кроме того, это расширение может также привести к искажению спектрального профиля измеряемого спектра SRS.
В CARS спектроскопически релевантный сигнал возникает на длинах волн, которые отличаются от длин полей возбуждения. Простая фотоумножительная трубка или камера с зарядовой связью (ПЗС) может использоваться для своевременной интеграции сигнала CARS, суммируя тысячи импульсов для усреднения лазерного шума. Вместо этого сигнал SRS выглядит как слабая передача модуляции, встроенная в сильный и колеблющийся лазерный фон. Поскольку эта модуляция слабая, лазерный шум может легко подавить ее, снижая как скорость изображения, так и чувствительность микроскопа SRS. Поэтому перед визуализацией необходимо измерить относительную интенсивность шума (RIN), чтобы определить, подходит ли лазер для высокоскоростной визуализации SRS и выбрать частоту модуляции с наименьшим шумом. RIN определяется как спектральная плотность мощности шума [δP(f), с Вт2/Гц единицами] лазера, нормализованная средней оптической мощностью ()40,41. Другими словами, RIN описывает нормализованные лазерные флуктуации на разных частотах (Eq [4]).
(4)
Таким образом, RIN является параметром системы SRS, определяющим идеальный диапазон частот модуляции для экспериментов. Например, оливковый стержень на рисунке 8 показывает идеальный диапазон частот модуляции для визуализации SRS. В случае узкополосной SRS пользователь должен измерить RIN как насоса, так и Stokes, чтобы выбрать, какой луч должен быть модулирован для достижения оптимальной производительности. Обратите внимание на рисунок 8, например, что балка Стокса имеет немного более высокий RIN, чем насос, подразумевая, что измерения SRG будут более шумными, чем их аналоги SRL. В случае широкополосного SRS луч, который должен быть модулирован, является узкополосным лучом.
Угловая дисперсия D решетки выражает угол дифракции как функцию длины волны и определяется как производная уравнения решетки. Для конфигурации Littrow угловая дисперсия задается Eq (5).
(5)
Чтобы получить Eq (5), мы предположили , α = β, решили Eq (2) для m/d и вставили результат в dβ/ dλ. Обратите внимание, что в конфигурации Littrow β = sin-1(mλ/2d). В рамках малоуглового приближения изменение положения вдоль спектра составляет fdβ ≈ dl (рисунок 10). Таким образом, вставив dβ в Eq (5), мы можем вычислить линейную дисперсию, величину с единицами нм мм-1 с помощью Eq (6):
(6)
Для дифракционной решетки, работающей в конфигурации Littrow с 1 851,85 канавками/мм, d = 540 нм. Если мы используем дифракцию света первого порядка при ~789 нм, D = 0,0027 рад нм-1. С объективом f = 750 мм мы получаем линейную дисперсию ≈ 0,5 нм мм-1, переводя в ≈ 7,8 см-1 мм-1. Таким образом, фокусное расстояние объектива определяет «плотность» нм на мм в плоскости детектора: чем больше фокусное расстояние, тем меньше нм на мм получено, увеличивая пространство между спектральными линиями широкополосного насоса. И наоборот, с более короткими фокусными расстояниями в плоскости детектора будет больше нм на мм, уменьшая пространство, занимаемое дисперсным насосом.
Сбалансированное обнаружение улучшает качество изображения и чувствительность шумных настроек. Например, согласно спектрам RIN, показанным на рисунке 8 , и учитывая типичные SRS с амплитудой 1 x 10-5, несбалансированное отношение сигнал/шум (SNR) составляет ≈60. Используя сбалансированное обнаружение (т.е. близкое к шуму выстрела), можно достичь SNR ≈145. На рисунке 11 показаны спектры и составные изображения в сбалансированных и несбалансированных условиях. Естественно, эффекты сбалансированного обнаружения влияют на конечные результаты экспериментов, а именно на химические карты. Опираясь на эти результаты, мы подчеркиваем, что сбалансированное обнаружение является мощным методом противодействия пагубному влиянию лазерных флуктуаций на качество изображения. Стоит отметить, что сбалансированное обнаружение лучше всего подходит для шумных лазеров, таких как волоконные генераторы. Микроскопы SRS, работающие с бесшумными оптическими источниками света (например, твердотельными лазерами), могут не требовать сбалансированного обнаружения.
Протокол также объясняет подход, основанный на нелинейной оптике, чтобы найти пространственно-временное перекрытие между импульсами этих лучей. Мы описали преимущества использования1-го вместо0-го дифракционного порядка AOM в качестве модулированного пучка Стокса. Кроме того, были описаны пагубные последствия дисперсии на эффективность генерации СГД с предложениями о способах их смягчения с помощью призматического компрессора. Кроме того, протокол объясняет, как выровнять призмы и выделяет три критических аспекта, которые следует учитывать для оптимальной производительности. Мы не только обсуждаем актуальность RIN для микроскопии SRS, но и показываем, как измерить ее с помощью запирающего усилителя и, с помощью спектра RIN, определить лучшую частоту модуляции. На конкретном примере в этой статье объясняется, как уравнение решетки помогает в проектировании цепи обнаружения. Наконец, протокол иллюстрирует с реальными данными SRS структуру гиперкуба SRS и то, как его анализировать с помощью традиционно используемого научного языка программирования.
Этот протокол имеет три незначительных ограничения. Во-первых, схема обнаружения, используемая в этом вкладе, состоит из нетрадиционного многоканального детектора блокировки, разработанного и встроенного в компанию Sciortino et al.26 Как было показано ранее25, этот детектор может быть заменен готовым сбалансированным фотодиодом. Хотя эта модификация касается только детектора и оставляет протокол практически неизменным, с одним фотодиодом нужно сканировать каждый спектральный компонент на детекторе, а не измерять их все сразу. Во-вторых, этот протокол использует встроенное сбалансированное обнаружение, которое требует вставки нескольких оптических элементов в траекторию луча. Эти оптические элементы увеличивают сложность системы и приводят к потерям оптической мощности и расширению импульсов.
Встроенное сбалансированное обнаружение также требует, чтобы две реплики насоса проходили через образец, ситуация, которая может быть не идеальной для светочувствительных образцов, таких как живые клетки, или для сильно двулучепреломляющих, в которых две реплики насоса могут испытывать различные оптические свойства, тем самым отменяя сбалансированное обнаружение. В-третьих, протокол опирается на самодельное OPO, устройство, которое может быть недоступно. Однако альтернативами широкополосным спектрам, предоставляемым OPO, являются суперконтинуа из нелинейных оптических волокон или объемных кристаллов. Последние могли быть использованы только с лазерами с низкой частотой повторения (до 5 МГц). Таким образом, как и в случае с любым экспериментальным дизайном, рассматриваемый протокол имеет некоторые ограничения. Однако они минимальны и не ставят под угрозу успех такого подхода.
Хотя здесь описан эталонный образец, этот протокол может успешно распутать химические виды в клетках и тканях животных и растений, таких как целлюлоза, липидные виды или белки, находя практическое применение в различных биохимических поисках или в качестве диагностического инструмента в гистопатологии. Точно так же этот протокол может быть ценным инструментом в материаловедении. Например, следуя этому протоколу, можно исследовать молекулярный состав и концентрацию полимерных видов42. Кроме того, эта методология совместима с другими методами нелинейной микроскопии, такими как широкополосная микроскопия на основе насоса-зонда43 и гетеродина CARS44, четырехволновые процессы смешивания, которые, как и в случае с SRS, также требуют двух световых лучей возбуждения и измерений модуляции-передачи. Наконец, некоторая информация, содержащаяся в этой статье, может быть применена к нелинейным методам визуализации, которые не полагаются на методы передачи модуляции, но требуют выравнивания двух или более импульсных лазерных лучей, таких как обычные микроскопии CARS45 и SFG46.
Таким образом, этот протокол описывает мощную методологию, основанную на широкополосной микроскопии SRS, для извлечения химических карт и их характерных спектров SRS из химически гетерогенных смесей, предоставляя наборы данных, которые позволяют проводить простой количественный анализ данных. Универсальность и простота метода также дают заинтересованному читателю возможность адаптировать его к различным нелинейным методикам.
The authors have nothing to disclose.
D.P. признает финансирование со стороны проекта Европейского Союза CRIMSON в рамках Грантового соглашения No 101016923 и проекта Regione Lombardia NEWMED в рамках Грантового соглашения No. ПОР ФЕСР 2014-2020. G.C. признает финансирование из проекта Европейского Союза GRAPHENE Core3 в рамках грантового соглашения No 881603. G.C. также признает финансирование от Университета науки и технологии имени короля Абдаллы, номер гранта: OSR-2016-CRG5-3017-01.
Collection objective | Nikon | CFI Apo Lambda S 60x Oil, NA=1.4, Nikon | Oil immersion objective |
Coverslips | Thermo Fisher | 043211-KJ | Quartz, cover slip for microscope slide, 25.4 x 25.4 x 0.15 mm |
Delay line | Physik Instrumente (PI) | M-406.6PD | Precision microtranslation stage, 150 mm travel range |
DMSO | Merck | D8418-500ML | Methylsulfinylmethane, Molecular Biology Grade DMSO, DMSO, Methyl Sulfoxide |
Etalon | SLS Optics Ltd | Custom made | Anti reflective coating at 1,040 nm, Mounted in a 38 mm diameter x 35.5 mm long stainless steel cell with protective dust caps, and a 50 mm diameter ‘pinch-clamp’ mounting ring |
Excitation objective | Nikon | CFI Plan Apo IR 60XC WI, NA=1.27, Nikon | Water immersion objective |
Grating | LightSmyth | T-1850-800s Series | High Efficiency Transmission Grating T-1850-800s Series |
Laser | Coherent | Custom made | Fidelity, HP |
λ/2 | Thorlabs | SAHWP05M-1700 | Mounted superachromatic half-wave plate |
PBS | Thorlabs | CM5-PBS203/M | 16 mm Cage-Cube-Mounted Polarizing Beamsplitter Cube, |
PMMA beads | Merck | MFCD00198073 | Micro particles based on polymethacrylate |
Prisms | Crisel | 320-8218 | LASER DISPERSING PRISMS in SF11 |
PS beads | Merck | 72986-10ML-F | Micro particles based on polystyrene |
YVO4 crystal | Dr. Sztatecsny GmbH | Custom made | thickness 8 mm, dia 1.00 cm, 1 689,00 689,00 suitable for 1" mount, coated for 850 – 1,100 nm |