이 프로토콜은 고처리량 96웰 고정 뚜껑 정적 생물막 스크리닝을 위해 자체 조립된 딥 웰 PCR 플레이트 장치를 사용하여 생물막 성장 및 바이오매스 측정을 수행하는 방법론을 제시합니다.
박테리아 생물막은 종래의 항균 개입을 사용하여 표면으로부터 박멸하기가 어렵다. 고처리량 96웰 마이크로플레이트 방법은 최소한의 생물막 박멸 농도(MBEC) 값을 계산하기 위해 신속한 항균 감수성 테스트를 위해 박테리아 바이오필름을 배양하는 데 자주 사용됩니다. 표준 바이오필름 장치는 96웰 마이크로플레이트에 장착된 폴리스티렌 고정 뚜껑으로 구성되며 생물막 바이오매스 및 MBEC 값 측정에 이상적이지만 이러한 장치는 바이오매스 축적 및 비용에 사용할 수 있는 페그 표면적에 의해 제한됩니다. 여기에서는 자체 조립 폴리프로필렌 96웰 딥 웰 PCR 플레이트 고정 뚜껑 장치를 사용하여 에스케리치아 콜리 BW25113 및 슈도모나스 aeruginosa PAO1 생물막을 성장시키는 프로토콜을 간략하게 설명합니다. 크리스탈 바이올렛 바이오매스 염색 및 MBEC 결정 검정을 사용하여 각 종별로 표준 및 딥 웰 장치 상에서 형성된 24시간 생물막의 비교가 기재되어 있다. 깊은 우물 장치의 더 큰 표면적은 두 종 모두에 의해 전체 생물막 형성을 2-4 배 증가시킬 것으로 예상되었다. P. aeruginosa는 표준 장치에 비해 깊은 우물 못에서 훨씬 더 큰 바이오 매스 / mm2 를 형성했습니다. 대장균 은 딥 웰 장치에 비해 표준 폴리스티렌 장치에서 더 큰 바이오 매스 / mm2 를 가졌습니다. 차아염소산나트륨(표백제) 또는 염화벤잘코늄(BZK)과 같은 소독제를 사용한 생물막 박멸 분석은 두 화합물 모두 두 장치 모두에서 대장균 과 P. aeruginosa 생물막을 제거할 수 있지만 MBEC 값은 다르다는 것을 보여주었습니다. BZK 생물막 박멸은 장치 간에 가변 대장균 MBEC 값을 초래했지만, 표백제는 종 및 장치 둘 다에 대해 재현 가능한 MBEC 값을 입증하였다. 이 연구는 더 많은 양의 정적 생물막이 필요한 다운스트림 연구를 위해 폴리프로필렌 장치에서 다량의 생물막을 성장시키기 위한 높은 처리량의 깊은 우물 방법을 제공합니다.
슈도모나스 aeruginosa와 Escherichia 콜라이는 그람 음성 프로테오박테리아로, 생물막1로 알려진 세실, 표면 부착 세포 군집을 형성하는 능력에 대해 일반적으로 연구되고 있습니다. 두 종 모두 생물막으로 성장할 때 주로 다른 다당류 및 단백질로 구성된 세포외 고분자 물질 (EPS)의 매트릭스를 분비 할 수 있으며, 이는 세포 외 DNA 및 / 또는 지질을 포함 할 수있어 가혹하고 영양이 제한된 환경에서 추가적인 세포 보호와 향상된 생존을 제공합니다2,3. 두 종에 의한 생물막 생리학 및 형성은 캐나다의 병원 환자 혈액, 요로 및 폐 감염으로부터 가장 일반적으로 격리 된 항균 내성 병원균 상위 5 개를 대표하기 때문에 임상 적 관련성이 있습니다4,5. 생물막은 이러한 박테리아 종에 의해 야기되는 모든 만성 및 재발성 감염의 거의 80%를 구성하는 것으로 추정된다는 점도 유의하는 것이 중요하다6. 분비된 EPS 물질과 느린 대사 활성7,8로 인해, 확립된 생물막은 이식된 의료 기기, 흉터 조직 및 낭포성 섬유증 환자의 폐에서 형성될 때 근절하기가 더욱 어려워지며9,10, 항균 내성이 추가된다.
박테리아 생물막의 반발성 성장 특성은 종종 항균 억제 및/또는 박멸에 더 저항력을 갖게 한다2,9. 따라서, 박테리아 생물막 항균 박멸을 연구하기 위한 시험관내 방법을 확립하는 것은 의료용 플라스틱(예를 들어, 내주 카테터) 및 의료용 임플란트 상에 형성될 때 감염을 근절하기 위한 효과적인 화합물을 선택하는 데 가장 중요하다. 대부분의 신속한 시험관내 생물막 항균 박멸 배양 방법은 생물막 성장을 “연속적인” 배양이 아닌 “정적” 생물막 배양으로 검사하며, 여기서 정적 박테리아 성장은 동일한 성장 배지에서 짧은 (24-96 h) 기간에 걸쳐 생물막 형성의 초기 내지 후기 단계에서 모니터링된다. 연속 생물막 방법은 챔버에서 성장한 더 긴 기간에 걸쳐 생물막 성장을 평가해야 하기 때문에 신속한 분석을 위해 번거로운 방법이며, 이는 더 적은 반복실험으로 성장 배지의 지속적인 흐름 및 교체를 허용한다11. 연속 생물막을 유지하고 확립하는 데 필요한 시간과 노력으로 인해 정적 시험관 내 생물막이 가장 인기가 있는데, 이는 동시에 테스트되는 배양물의 수를 제한하는 정교한 유동 챔버 시스템보다는 플라스틱 96-웰 마이크로타이터 플레이트에서 고처리량 항균 감수성 테스트 분석법에 쉽게 적응하기 때문에 12,13 . 가장 간단한 정적 “인웰” 바이오필름 마이크로플레이트 분석은 표준 폴리스티렌 또는 비닐(300μL 용량) 마이크로타이터 플레이트를 사용하여 각 웰의 측면과 하단에 생물막 형성을 측정하고 종종 공기와 액체 표면 계면에서 고리로 사용됩니다. 박테리아 인-웰 생물막 형성은 성장 배지 액체가 제거되고 생물막이 세척된 후에 웰에 부착된 침착된 바이오매스를 염색함으로써 측정된다12,13. 이러한 분석은 경제적으로 인기가 있지만 침착 된 생물막은 세포 회수 및 바이오 매스 염색 절차11,14를 위해 헹굼하는 동안 손상 또는 손실되기 쉽기 때문에 고유 한 설계로 인해 재현성 문제가 종종 있습니다.
생물막 손실을 감소시키기 위해, 표준 상용 바이오필름 장치는 본원에서 “표준 생물막 장치”로 지칭되는 표준 96 인웰 플레이트 설계에 삽입가능한 96-웰 페깅된 폴리스티렌 뚜껑을 추가함으로써 인웰 바이오필름 마이크로플레이트 설계시 개선되었다. 고정된 뚜껑을 추가하면 각 마이크로플레이트 웰에서 사용 가능한 표면적이 확장되어 표면 부착성 및 생물막 바이오매스 형성이 향상됩니다15,16. 표준 생물막 고정 뚜껑 장치는 고정된 뚜껑이 약물 또는 성장 조건 문제를 포함하는 새로운 마이크로타이터 플레이트에 삽입될 때 후속 항균 생물막 감수성 및 박멸 테스트를 위해 더 큰 생물막 회수, 제거 및 헹굼을 가능하게 합니다. 인웰 생물막 마이크로플레이트 기술과 유사하게, 제거되고 세척된 고정된 뚜껑 장치로부터 회수된 물질은 전형적으로 크리스탈 바이올렛(CV) 염료 제형(17,18,19)을 수반하는 세포 생존 시험 및 생물막 바이오매스 염색을 허용한다. 표준 생물막 장치는 또한 생물막 항균 감수성을 스크리닝하는 데 최적입니다. 이들 분석은 두 가지 방법으로 생물막 성장 억제를 모니터링한다: 1) 성장 초기에 항균제가 세포에 첨가될 때, 최소 생물막 억제 농도(MBIC) 값을 결정할 수 있다. 2) 항균제에 노출시킨 후 24시간 후에 못 위에 생물막이 형성되어 확립되면, 최소 생물막 박멸농도(MBEC) 값 17,20을 결정할 수 있다. 인웰 바이오필름 마이크로플레이트 장치와 유사하게, 표준 생물막 장치는 장치당 높은 비용, 비오토클레이브 가능, 사용된 폴리스티렌 플레이트 재료로 인해 화학 용매에 대한 내구성이 떨어지는 것과 같은 몇 가지 주목할 만한 한계가 있습니다. 표준 생물막 장치는 또한 페그 비율에 대한 표면적이 낮기 때문에 각 웰의 최대 작업 부피를 200μL로 제한합니다. 이러한 요인들은 표준 생물막 장치를 높은 처리량 형식으로 더 많은 양의 생물막을 요구하는 연구에 사용하기가 더 어렵게 만들 수 있습니다.
여기에서, 우리는 표준 플레이트보다 더 깊은 웰을 갖는 96-웰 마이크로타이터 플레이트에 장착된 시판되는 폴리프로필렌 세미스커트된 0.5 mL 96-웰 PCR 플레이트를 사용하여 우리 실험실에서 개발된 정적 생물막 고정-뚜껑 96-웰 방법을 설명한다(Table of Materials). 이들 조립된 장치는 생물막 성장에 사용될 때 750 μL의 최대 작동 부피를 갖는다(본원에서 “딥웰 생물막 장치”로 공지됨). 이러한 딥 웰 바이오필름 장치를 사용할 때의 장점은 표준 생물막 장치와 비교할 때 비용이 저렴하고, 오토클레이빙으로 멸균할 수 있으며, 더 큰 외부 PCR-플레이트 “튜브/페그”에서 생물막 형성을 위한 표면적을 증가시킨다는 것입니다. 이 방법을 통해 우리는 Escherichia coli BW25113 및 P. aeruginosa PAO1에 의해 형성된 생물막 바이오 매스를 성장 및 특성화하기위한 이러한 장치의 응용 프로그램을 보여줍니다. 생물막 박멸 검정을 사용하여 MBEC 값을 결정하는 방법은 사차 암모늄 화합물 소독제 벤즈알코늄 클로라이드(BZK) 및 차아염소산나트륨(표백제) 항균제를 사용하여 기술된다. 소독제 BZK는 이 화합물이 오염된 표면으로부터 생물막을 억제하는 데 자주 사용되기 때문에 선택되었지만, 잘 확립된 생물막을 근절하는 데는 덜 효과적이라고 한다21. 표백제는 확립 된 생물막의 박멸에 매우 효과적인 화학 물질이며 화학 소독 22의 주류입니다. 두 소독제 모두 각 생물막 장치21에 대한 MBEC 값의 유용한 비교를 제공한다. MBEC 결정을 위한 CV 염색 및 생물막 박멸 검정을 이용한 이러한 생물막 장치 평가를 위한 프로토콜이 이 기사에 요약되어 있다. 이러한 메서드에 대한 워크플로를 간략하게 설명하기 위해 프로토콜 순서도가 포함되어 있습니다(그림 1).
본 연구는 생물막 형성을 위한 반스커트된 PCR-플레이트 뚜껑이 장착된 폴리프로필렌 딥 웰 마이크로플레이트를 포함하는 더 큰 부피 96-웰 고처리량 정적 생물막 성장 장치(deep well biofilm device; 자료의 표). 우리는이 장치로 생성 된 바이오 필름을 상업적으로 이용 가능한 폴리스티렌 표준 생물막 장치와 비교했습니다 (표 재료). 딥 웰 장치 방법은 딥 웰 장치를 위해 변형된 조정된 부피에서 표준 장치17과 동일한 방법론적 단계 및 솔루션을 사용하므로 이 장치는 대규모 생물막 형성 및 실험 분석에 이상적입니다. 생물막을 형성하는 것으로 알려진 두 개의 그람 음성 종인 대장균 BW25113과 P. aeruginosa PAO1의 성장은 두 장치 모두에서 바이오매스 형성 및 소독제(BZK/표백제) MBEC 값을 조사하였다. 각 장치로부터의 못 위에 형성된 CV 염색된 바이오매스의 비교는 표준 장치와 비교했을 때 대장균 및 P. aeruginosa 둘 다 깊은 우물 생물막 장치 상에서 더 높은 바이오매스를 갖는 생물막을 형성한다는 것을 보여주었다(도 3A-B). 증가된 생물막 바이오매스는 표준 장치 페그 표면적과 비교했을 때 깊은 우물 못의 더 큰 표면적을 반영하였다. 우리가 두 장치와의 페그 표면적 (mm2)의 차이를 설명 할 때, 바이오 매스 형성의 차이가 주목되었는데, 여기서 대장균은 깊은 우물 장치의 PCR 튜브 페그보다 폴리스티렌 표준 장치 못에서 mm2 당 훨씬 더 큰 CV 바이오 매스를 형성했습니다 (표 1). P. aeruginosa는 표준 장치와 비교하여 더 큰 CV 염색된 바이오매스/페그 mm2를 형성하였다(표 1). 이러한 발견은 상이한 장치에서의 생물막 바이오매스 형성의 종별 차이를 강조할 수 있다.
깊은 우물 장치 상의 대장균 및 P. aeruginosa 생물막의 표백제 박멸은 표준 장치보다 2-4배 낮은 농도에서 발생하였다는 점에 유의해야 한다(도 4A-B, 표 1). 각 장치에서 확인 된 표백제 MBEC 값의 차이는 장치 페그 모양의 차이 (깊은 우물 “못”은 테이퍼 튜브이고 표준 못은 원통형), 플라스틱 조성 차이 (폴리프로필렌 대 폴리스티렌) 및 부피 차이 (750 μL 대 200 μL)의 영향을받을 가능성이 큽니다. 예를 들어, P. aeruginosa는 표준 장치와 비교할 때 딥 웰 장치 페그에서 더 큰 CV M 바이오 매스 / mm2를 가졌지 만 대장균은 깊은 우물 못에서 바이오 매스가 적었습니다 (그림 3). 이는 생물막 박멸에 필요한 소독제 농도가 사용 가능한 표면적뿐만 아니라 각 종에 의해 형성된 바이오매스에 의해 영향을 받을 수 있음을 시사한다. 추가적으로, 장치 못 모양의 차이는 특정 종에 대한 다양한 성장 조건에 영향을 미칠 수 있다. 우리의 연구에서, P. aeruginosa는 더 큰 표면적과 폭기로 인해 깊은 우물 못에 더 큰 바이오 매스를 형성 할 수 있습니다.이 종은 교수진 혐기성 혐기성 인 대장균과는 달리 의무적 인 에어로브이기 때문입니다. 현재까지 우리는 폴리프로필렌27,28,29 및 폴리스티렌 30,31 물질 모두에서 대장균과 P. aeruginosa 생물막 형성을 함께 직접 비교한 발표된 연구를 확인하지 못했습니다. 그러나 견고한 대장균과 P. aeruginosa 생물막 형성에 대한 보고서는 폴리프로필렌 또는 폴리스티렌 물질을 조사하는 독립적 인 연구에서 주목 받았다. 슈도모나드와 관련하여, 많은 슈도모나스 spp.는 폴리프로필렌과 같은 플라스틱을 잠재적인 탄소원으로 사용할 수 있다32. 따라서, 이러한 폴리프로필렌 딥 웰 생물막 장치의 가용성은 정적 생물막 연구에서 유용한 진보이다. 폴리프로필렌은 폴리스티렌보다 화학적으로 내구성이 뛰어나며 탈장 또는 골반 수술을 위한 의료용 임플란트, 봉합사 및 메쉬에 자주 사용되기 때문에 임상적으로 관련된 재료입니다33,34.
바이오필름 바이오매스가 두 장치 모두에 의해 형성되었지만, 딥 웰 디바이스는 표백제 및 BZK에 대한 CV 염색 방법 및 OD600nm 생물막 박멸 MBEC 값에 기초한 바이오매스에서 약간 더 높은 가변성을 가졌다. 이것은 3 가지 주요 요인으로 설명 될 수 있습니다 : 1) 딥 웰 장치는 표준 장치 못에 비해 기울어 진 표준 장치보다 더 큰 페그 표면적을 가지고 있습니다. 2) 테스트 된 두 종 모두 각 장치의 폴리프로필렌 및 폴리스티렌 물질을 부착 할 수있는 능력이 다를 수 있습니다. 3) 각 장치에 사용되는 성장 배지의 부피 (750 μL 깊은 우물, 200 μL 표준)와 웰 측벽에 삽입 된 페그 사이의 간격이 다릅니다. 이러한 문제는 모든 생물막 실험에 한 가지 유형의 장치만 사용된다면 문제가 되지 않지만, 두 장치가 모두 선택되면 차이점을 확인하기 위해 여기에서 수행한 비교를 수행해야 합니다36,37. 각 장치에 사용되는 플라스틱 재료의 차이로 인해 CV 염색 된 생물막 바이오 매스와 MBEC 값을 서로 다른 장치간에 직접 비교해서는 안됩니다. 그러나 방법과 실험이 동일한 장치 (깊은 우물 또는 표준)에서 수행되면 테스트 된 종과 항균제에 대해 얻은 결과는 비교할 수 있습니다.
이 프로토콜은 자체 조립된 깊은 우물 PCR 플레이트 장치가 생물막 형성 및 박멸을 측정하기 위한 더 큰 부피의 바이오필름 장치이며 또한 비용 효율적이라는 것을 보여준다. 비용 관점에서 볼 때, 96 잘 고정 된 뚜껑이있는 표준 바이오 필름 장치는 장치 당 $ 29-36 US USD (USD)로 소매 범위입니다 (재료 표). 폴리스티렌 표준 생물막 장치는 오토클레이브가 불가능하며 플라스틱 화학적 특성으로 인해 용제/산에 대한 내성이 떨어집니다. 본원에 기술된 자체 조립된 폴리프로필렌 딥 웰 플레이트는, 별도의 세미 스커트된 96 웰 PCR 플레이트(Table of Materials)를 장착하여 조립된 장치당 총 $14 USD의 비용이 들며, 이는 표준 생물막 장치 비용의 절반이다. 가격은 지역, 유통 업체 및 가용성에 따라 다를 수 있으며 기관 할인 후 비용은 $ 9 USD / 딥 웰 장치로 해결되었습니다. 이 자체 조립 된 깊은 우물 폴리프로필렌 PCR 플레이트 장치는 살균을 위해 오토클레이빙이 가능하다는 추가 장점이 있으며 표준 장치보다 2-4 배 더 많은 바이오 필름 바이오 매스를 제공합니다.
결론적으로, 이 프로토콜과 딥 웰 및 표준 바이오필름 디바이스의 생물막 성장 비교로부터의 대표적인 발견은 두 장치 모두 박테리아 생물막을 배양할 수 있지만, 깊은 웰 디바이스는 2-4배 더 많은 바이오필름을 형성한다는 것을 보여준다. 딥 웰 바이오필름 장치는 약물 감수성 스크리닝 연구와 같은 더 큰 부피의 고처리량 생물막 형성 실험을 위한 실행 가능하고 저렴한 대안을 제공합니다. 이 기술은 분석을 위해 다량의 생물막 물질을 필요로 할 수 있는 하류 ‘-omics’ 추출(프로테오믹스, 대사체학, 전사체) 또는 실험적 분석(효소적, 형광성)에 유용한 생물막을 생성할 수 있다. 딥 웰 바이오필름 장치는 임상적으로 관련된 저비용, 더 큰 부피, 화학적으로 내구성이 강한 플라스틱 재료를 사용하여 고처리량 96웰 분석법에서 바이오필름을 연구하고자 하는 실험실에 권장됩니다.
The authors have nothing to disclose.
이 작업에 대한 기금은 캐나다 디스커버리 그랜트 (RGPIN- 2016-05891)의 자연 과학 및 공학 연구위원회 (Natural Science and Engineering Research Council of Canada Discovery Grant)의 DCB와 캐나다 유전체학 연구 개발 이니셔티브 그랜트 (GRDI) 프로그램 (GRDI7 2254557)의 MRM 및 GRG에 대한 운영 보조금으로 제공되었습니다.
10 mL serological pipets, individ wrap paper/plastic (200/CS) | Fisher Scientific | 13-678-11F | disposable serological pipettes for aseptic media/ culture transfer |
2 mL serological pipets, individ wrap paper/plastic, 500/CS | Fisher Scientific | 13-678-11C | disposable serological pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Axygen Aerosol Filter Tips, Sterile, 5 racks/ PK, 1000 tips/rack | Fisher Scientific | 14-222-766 | sterile pipettor tips for media aliquoting |
Axygen deep well storage microplates, round wells, 1.1 mL cap, 5/PK, P-DW-11-C | Fisher Scientific | P-DW-11-C | microplate for 96 well deepwell device biofilm cultivation |
Axygen Filter tips, 350 µL tips racked, 96/rack, 10 racks, low retention barrier tips | Fisher Scientific | TF-350-L-R-S | sterile pipettor tips for media aliquoting |
Basin/reservoir natural PS 50 mL, Sterile, 5/bag, 40 bags, CS200 | Avantor/ VWR | 89094-676 | sterile basins/ reservoirs for microplate preparation |
BD Difco Dehydrated Culture Media: Granulated Agar, 500 g | Fisher Scientific | DF0145-17-0 | materials for LB agar preparation |
Biotek Synergy Neo2 multimode plate reader | Biotek | NEO2MB | microplate UV/Vis region plate reader |
Branson M3800 Ultrasonic Bath, 117 V | Avantor/ VWR | CPX-952-316R | sonicating water bath |
crystal violet (CV), ACS grade, 100 g | Fisher Scientific | C581-100 | biofilm biomass stain |
Dimethyl sulfoxide (DMSO), 1 L, ACS grade 99.9%, poly bottle, BDH | Avantor/ VWR | CABDH1115-1LP | media components for cryopreservation |
Easypet 3, pipet controller | Avantor/ VWR | CA11027-980 | serological pipettor for aseptic media/ culture transfer |
Eppendorf Research Plus 8 multi-channel pipettor , 10-100 µL | Avantor/ VWR | CA89125-338 | multichannel pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Eppendorf Research Plus 8 multi-channel pipettor , 30-300 µL | Avantor/ VWR | CA89125-340 | multichannel pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Glacial acetic acid, CAS 64-19-7, 2.5L, ACS grade | Fisher Scientific | A38-212 | CV destain |
Glass test tubes, 150 mm x 18 mm, 72/Pack, PYREX | Fisher Scientific | 14957H/ 9820-18 | materials for cell culturing |
Glycerol, 4 L glass bottle ACS | Fisher Scientific | BP229-4 | media components for cryopreservation |
L-Cysteine, 98%, 250 g | Avantor/ VWR | 97061-204 | universal neutralizing solution |
L-glutathione reduced, 98%, 25 g | Fisher Scientific | AAJ6216614 | universal neutralizing solution |
L-Hisitidine, 98%, 100 g | Avantor/ VWR | CA97062-598 | universal neutralizing solution |
MBEC Assay Inoculator with 96 well tray, 100/CS | Innovotech | 19112 | material for 96 well MBEC device biofilm cultivation |
McFarland Standard, 0.5 EA | Fisher Scientific | R20410 | cell culture standardization |
McFarland Standard, 1.0 EA | Fisher Scientific | R20411 | cell culture standardization |
NUNC 96-well microtiter plates, w/lid, 50/CS | Fisher Scientific | 167008 | microplate for 96 well MBEC device biofilm cultivation and OD measurements |
PCR plate, semi-skirted 96 well, fast PCR, polypropylene, 25ea/PK | Sarstedt | 72.1981.202 | pegged lid for 96 well deepwell device biofilm cultivation |
Petri dish, 100 mm x 15 mm, semi-TK CS/500 | Fisher Scientific | FB0875712 | materials for LB agar preparation |
Potassium phosphate dibasic, ACS 500 g | Fisher Scientific | P288-500 | PBS component/ buffer |
Sodium chloride, ACS grade, 3 kg | Fisher Scientific | S2713 | media components for LB broth and PBS |
sodium phosphate monobasic, 1 kg | Fisher Scientific | S369-1 | PBS component/ buffer |
Syringe filters, Sterile, PES 0.45 um, 25 mm, PK50 | Avantor/ VWR | 28145-505 | non-autoclavable solution sterilization |
Tin foil, heavy duty, 50 feet | Grocery store | — | materials for deepwell device sterilization |
Tryptone (peptone from casein), 2.2 kg/EA | Fisher Scientific | B11922 | media components for LB broth |
Tween-20, 100 mL | Fisher Scientific | BP337-100 | recovery media solution |
Ultra-deepwell, 2.5 mL deep well plates (square well), with lid, polypropylene, 10/CS | Avantor/ VWR | 37001-520 | materials for biofilm dilution preparation |
Yeast Extract, Fisher Bioreagents, 500 g | Fisher Scientific | BP1422-500 | media components for LB broth |