このプロトコルは、ハイスループットの96ウェルペッグ蓋静的バイオフィルムスクリーニングのための自己組織化ディープウェルPCRプレート装置を使用してバイオフィルム成長およびバイオマス測定を実行する方法論を提示する。
細菌バイオフィルムは、従来の抗菌介入を用いて表面から根絶することは困難である。ハイスループット96ウェルマイクロプレート法は、最小バイオフィルム除菌濃度(MBEC)値を計算するための迅速な抗菌感受性試験のために、細菌バイオフィルムを培養するために頻繁に使用されます。標準的なバイオフィルムデバイスは、96ウェルマイクロプレートに取り付けられたポリスチレンペッグ蓋で構成され、バイオフィルムバイオマスおよびMBEC値の測定に最適ですが、これらのデバイスは、バイオマス蓄積およびコストのために利用可能なペグ表面積によって制限されます。ここでは、自己組織化ポリプロピレン96ウェルディープウェルPCRプレートペッグ蓋装置を使用して 、大腸菌 BW25113および 緑膿菌 PAO1バイオフィルムを増殖させるためのプロトコルを概説する。クリスタルバイオレットバイオマス染色およびMBEC測定アッセイを用いて、各種によって標準および深井戸装置上に形成された24時間バイオフィルムの比較が記載されている。ディープウェルデバイスのより大きな表面積は、両方の種による全体的なバイオフィルム形成を2〜4倍に増加させると予想された。 緑膿菌は、 標準的な装置と比較して、深い井戸ペグ上に有意に大きいバイオマス/ mm2 を形成した。 大腸菌 は、ディープウェル装置と比較して、標準的なポリスチレン装置でより大きなバイオマス/ mm2 を有していた。 次亜塩素酸ナトリウム(漂白剤)または塩化ベンザルコニウム(BZK)などの消毒剤を用いたバイオフィルム根絶アッセイは、両方の化合物が両方のデバイスから 大腸菌 および 緑膿菌 バイオフィルムを排除できるが、MBEC値が異なることを示した。BZKバイオフィルム根絶は、デバイス間で可変 の大腸菌 MBEC値をもたらしたが、漂白剤は種とデバイスの両方で再現可能なMBEC値を示した。この研究は、より多くの量の静的バイオフィルムを必要とする下流の研究のために、ポリプロピレンデバイス上で大量のバイオフィルムを成長させるための高スループットのディープウェル法を提供する。
緑膿菌と大腸菌はグラム陰性プロテオバクテリアで、バイオフィルムとして知られる固着性の表面付着細胞群集を形成する能力について一般的に研究されています1。どちらの種も、バイオフィルムとして増殖すると、主に異なる多糖類およびタンパク質からなる細胞外高分子物質(EPS)のマトリックスを分泌することができ、それはまた、細胞外DNAおよび/または脂質を含むことができ、過酷な栄養制限された環境におけるさらなる細胞保護および増強された生存を提供する2,3。両種によるバイオフィルム生理学および形成は、カナダにおける病院患者の血液、尿路および肺感染症から最も一般的に単離された抗菌薬耐性病原体のトップ5を表すため、臨床的関連性を有する4,5。また、バイオフィルムは、これらの細菌種によって引き起こされるすべての慢性および再発性感染症のほぼ80%を占めると推定されていることに注意することも重要です6。分泌されたEPS物質と代謝活性の低下7,8のために、確立されたバイオフィルムは、移植された医療機器、瘢痕組織、および嚢胞性線維症患者の肺などの表面に形成されると根絶するのがより困難になり9,10、抗菌耐性が増す。
細菌バイオフィルムの反抗的な増殖特性は、しばしば抗菌阻害および/または根絶に対してより耐性を持たせる2,9。したがって、細菌バイオフィルムの抗菌除菌を研究するためのin vitro法を確立することは、感染が医療用プラスチック(例えば、居住用カテーテル)および医療用インプラント上に形成されるときに感染を根絶するのに有効な化合物を選択するために最も重要である。最も迅速なインビトロバイオフィルム抗菌除菌培養法は、バイオフィルム増殖を「連続」培養ではなく「静的」バイオフィルム培養として調べ、静的細菌増殖は、同じ増殖培地中での短い(24〜96時間)時間枠にわたってバイオフィルム形成の初期段階から後期段階で監視される。連続バイオフィルム法は、より少ない反復で成長培地の連続的な流れと交換を可能にするチャンバー内で成長したより長い時間枠にわたって評価されるバイオフィルム成長を必要とするため、迅速な分析には面倒です11。連続バイオフィルムの維持と確立に必要な時間と労力のために、静的in vitroバイオフィルムは、同時に試験された培養数を制限する精巧なフローチャンバーシステムではなく、プラスチック96ウェルマイクロタイタープレートでのハイスループット抗菌感受性試験アッセイに容易に適合するため、最も人気があります12,13.最も単純な静的「インウェル」バイオフィルムマイクロプレートアッセイは、標準的なポリスチレンまたはビニル(300μL容量)マイクロタイタープレートを使用して、各ウェルの側面および底部のバイオフィルム形成を測定し、多くの場合、空気と液体の表面界面のリングとして測定します。細菌のウェル内バイオフィルム形成は、増殖培地液体が除去され、バイオフィルムが洗浄された後、ウェルに付着した堆積バイオマスを染色することによって測定される12,13。これらのアッセイは経済的に人気がありますが、堆積したバイオフィルムは細胞回収およびバイオマス染色手順のためのすすぎ中に損傷または損失を起こしやすいため、その固有の設計のために再現性の問題がしばしばあります11,14。
バイオフィルム損失を低減するために、標準的な市販のバイオフィルムデバイスは、本明細書で「標準バイオフィルムデバイス」と呼ばれる標準96インウェルプレート設計に挿入可能な96ウェルペッグポリスチレン蓋を追加することによって、インウェルバイオフィルムマイクロプレート設計を改善した。ペッグされた蓋の添加は、各マイクロプレートウェルにおいて利用可能な表面積を拡大し、表面接着性の向上およびバイオフィルムバイオマス形成を可能にする15,16。標準的なバイオフィルムペッグ蓋装置は、ペッグされた蓋が薬物または成長条件の課題を含む新しいマイクロタイタープレートに挿入された場合、その後の抗菌バイオフィルム感受性および除菌試験のために、より大きなバイオフィルムの回収、除去、およびすすぎを可能にする。インウェルバイオフィルムマイクロプレート技術と同様に、除去および洗浄されたペッグ付き蓋デバイスから回収された材料は、典型的にはクリスタルバイオレット(CV)色素製剤17、18、19を含む細胞生存試験およびバイオフィルムバイオマス染色を可能にする。標準的なバイオフィルム装置は、バイオフィルム抗菌感受性のスクリーニングにも最適である。これらのアッセイは、2つの方法でバイオフィルム増殖阻害をモニターする:1)増殖開始時に抗菌剤が細胞に添加されると、最小バイオフィルム阻害濃度(MBIC)値を決定することができる。2)確立されたバイオフィルムが24時間後にペグ上に形成され、次いで抗菌剤に曝されると、最小バイオフィルム除菌濃度(MBEC)値17,20を決定することができる。インウェルバイオフィルムマイクロプレートデバイスと同様に、標準的なバイオフィルムデバイスには、デバイスあたりのコストが高いこと、オートクレーブできないこと、使用されるポリスチレンプレート材料のために化学溶媒に対する耐久性が低いことなど、いくつかの注目すべき制限があります。標準的なバイオフィルムデバイスはまた、表面積対ペグ比が低く、各ウェルの最大作業量を200μLに制限しています。これらの要因により、標準的なバイオフィルムデバイスを、ハイスループットフォーマットで大量のバイオフィルムを必要とする研究に使用するのをより困難にする可能性があります。
ここでは、標準プレートよりも深いウェルを有する96ウェルマイクロタイタープレートに取り付けた市販のポリプロピレンセミスカート0.5mL 96ウェルPCRプレートを用いて、当研究室で開発した静的バイオフィルムペッグ蓋96ウェル法について述べる(材料表)。これらの組み立てられた装置は、バイオフィルム(本明細書では「ディープウェルバイオフィルム装置」として知られる)を成長させるために使用される場合、750μLの最大作動量を有する。これらのディープウェルバイオフィルムデバイスを使用する利点は、標準的なバイオフィルムデバイスと比較して低コストであり、オートクレーブによって滅菌することができ、より大きな外部PCRプレート「チューブ/ペグ」上のバイオフィルム形成のための表面積を増加させる。この方法を用いて、我々は 、大腸菌 BW25113および 緑膿 菌PAO1によって形成されたバイオフィルムバイオマスを成長させ、特徴付けるためのこれらの装置の用途を示す。バイオフィルム根絶アッセイを用いてMBEC値を決定する方法は、第四級アンモニウム化合物消毒剤塩化ベンザルコニウム(BZK)および次亜塩素酸ナトリウム(漂白剤)抗菌剤を用いて記載されている。消毒剤BZKは、この化合物が汚染された表面からのバイオフィルムを阻害するために頻繁に使用されるため、選択されたが、十分に確立されたバイオフィルムを根絶するのにはあまり効果的ではないと報告されている21。漂白剤は、確立されたバイオフィルムの根絶に非常に効果的な化学物質であり、化学消毒 22の主力である。両方の消毒剤は、各バイオフィルムデバイス21についてのMBEC値の有用な比較を提供する。MBEC測定のためのCV染色およびバイオフィルム根絶アッセイを用いたこのバイオフィルムデバイス評価のためのプロトコルは、この記事に要約される。これらのメソッドのワークフローの概要を簡略化するためのプロトコル フローチャートが含まれています (図 1)。
この研究は、バイオフィルム形成のためにセミスカートPCRプレート蓋を取り付けたポリプロピレン製ディープウェルマイクロプレート(ディープウェルバイオフィルムデバイス;材料表)。この装置で生成したバイオフィルムを、市販のポリスチレン標準バイオフィルム装置と比較した(材料表)。ディープウェルデバイス法は、標準デバイスと同じ方法論的ステップと溶液を使用し17をディープウェルデバイス用に修正された調整された体積で使用し、このデバイスを大規模なバイオフィルム形成および実験分析に理想的にします。バイオフィルムを形成することが知られている2つのグラム陰性種である大腸菌BW25113および緑膿菌PAO1の増殖を、両方の装置を用いてバイオマス形成および消毒剤(BZK/漂白剤)MBEC値について調べた。各装置からのペグ上に形成されたCV染色バイオマスの比較は、大腸菌および緑膿菌の両方が、標準装置と比較した場合、ディープウェルバイオフィルム装置上により高いバイオマスを有するバイオフィルムを形成することを示した(図3A−B)。バイオフィルムバイオマスの増加は、標準的な装置ペグ表面積と比較した場合、ディープウェルペグのより大きな表面積を反映した。両装置でペグ表面積(mm2)の違いを考慮すると、バイオマス形成の違いが認められ、大腸菌は、ディープウェル装置のPCRチューブペグよりもポリスチレン標準装置ペグ上でmm2当たりのCVバイオマスを有意に多く形成した(表1)。緑膿菌は、標準的な装置と比較して、より大きなCV染色バイオマス/ペグmm2を形成した(表1)。この新知見は、異なるデバイス上のバイオフィルムバイオマス形成における種特異的な違いを浮き彫りにする可能性がある。
ディープウェル装置上の大腸菌および緑膿菌バイオフィルムの漂白剤除菌は、標準装置よりも2〜4倍低い濃度で起こったことに留意されたい(図4A−B、表1)。各デバイスから特定された漂白剤MBEC値の違いは、デバイスのペグ形状の違い(ディープウェルの「ペグ」はテーパチューブで標準ペグは円筒形)、プラスチック組成の違い(ポリプロピレン対ポリスチレン)、および体積の違い(750μL対200μL)によって影響を受ける可能性があります。例えば、緑膿菌は、標準的な装置と比較して、ディープウェル装置ペグ上でCV Mバイオマス/ mm2が大きかったが、大腸菌は深井戸ペグ上でバイオマス少なかった(図3)。これは、バイオフィルム根絶に必要な消毒剤濃度が、各種によって形成されるバイオマスおよび利用可能な表面積によって影響を受ける可能性があることを示唆している。さらに、装置ペグ形状の違いは、特定の種についての様々な成長条件に影響を与え得る。我々の研究では、緑膿菌は、通性嫌気性菌である大腸菌とは対照的に、この種が義務的なエアロベであるため、そのより大きな表面積および曝気のために、深い井戸ペグ上により大きなバイオマスを形成する可能性がある。今日まで、ポリプロピレン27、28、29およびポリスチレン30,31材料の両方について、大腸菌および緑膿菌バイオフィルム形成を直接比較した公表された研究は同定されていない。しかし、堅牢な大腸菌および緑膿菌バイオフィルム形成の報告は、ポリプロピレンまたはポリスチレン材料のいずれかを調べる独立した研究において注目されている。シュードモナスに関しては、多くのシュードモナス属は、ポリプロピレンなどのプラスチックを潜在的な炭素源として使用することができる32。したがって、このポリプロピレン製ディープウェルバイオフィルム装置の入手可能性は、静的バイオフィルム研究において有用な進歩である。ポリプロピレンはポリスチレンよりも化学的に耐久性があり、ヘルニアや骨盤手術のための医療用インプラント、縫合糸、メッシュに頻繁に使用されるため、臨床的に関連する材料です33,34。
バイオフィルムバイオマスは両方の装置によって形成されたが、ディープウェル装置は、漂白剤およびBZKに対するCV染色法およびOD600nmバイオフィルム除菌MBEC値に基づくバイオマスの変動性がわずかに高かった。これは、3つの主な要因によって説明することができます:1)ディープウェルデバイスは、標準デバイスペグと比較して角度が付いた標準デバイスよりもペグ表面積が大きい。2)試験された両方の種は、各装置のポリプロピレンおよびポリスチレン材料に接着する異なる能力を有し得る。3)各装置で使用される増殖培地の量(ウェルの深さ750 μL、標準で200 μL)および挿入されたペグとウェル側壁との間の間隔が異なる。これらの問題は、すべてのバイオフィルム実験に1種類のデバイスしか使用されていない場合は問題ではありませんが、両方のデバイスが選択されている場合は、ここで行った比較を実行して違いを特定する必要があります36,37。各デバイスで使用されるプラスチック材料の違いにより、CV染色されたバイオフィルムバイオマスおよびMBEC値は、異なるデバイス間で直接比較されるべきではない。しかし、方法と実験が同じ装置(ディープウェルまたは標準)で行われた場合、試験された種および抗菌剤について得られた結果は同等である。
このプロトコルは、自己組織化ディープウェルPCRプレート装置が、バイオフィルムの形成および根絶を測定するための大容量バイオフィルム装置であり、費用対効果も高いことを示している。コストの観点から見ると、96個のペッグされた蓋を備えた標準的なバイオフィルムデバイスは、デバイスあたり$ 29-36米ドル(USD)で販売されています(材料表)。ポリスチレン標準バイオフィルムデバイスはオートクレーブ可能ではなく、そのプラスチック化学的特性のために溶媒/酸に対する耐性が低い。本明細書に記載される自己組織化ポリプロピレン製ディープウェルプレートは、別個の半スカート付き96ウェルPCRプレート(材料表)を取り付け、組み立てられたデバイスあたり合計14米ドルの費用がかかり、これは標準的なバイオフィルムデバイスコストの半分である。価格は、地域、ディストリビューター、および可用性、および機関割引が$ 9 USD /ディープウェルデバイスに機能した後のコストによって異なる場合があります。これらの自己組織化ディープウェルポリプロピレンPCRプレートデバイスは、滅菌のためにオートクレーブ可能であるという追加の利点を有し、標準的なデバイスよりも2〜4倍のバイオフィルムバイオマスを提供する。
結論として、このプロトコルと、ディープウェルデバイスと標準的なバイオフィルムデバイスのバイオフィルム増殖比較からの代表的な知見は、両方のデバイスが細菌バイオフィルムを培養することができるが、ディープウェルデバイスは2〜4倍のバイオフィルムを形成することを示している。ディープウェルバイオフィルムデバイスは、薬物感受性スクリーニング研究などの大容量ハイスループットバイオフィルム形成実験のための実行可能で手頃な価格の代替手段を提供します。この技術は、分析のために大量のバイオフィルム材料を必要とする可能性のある下流の「-omics」抽出(プロテオミック、メタボロミック、トランスクリプトミクス)または実験アッセイ(酵素的、蛍光的)に有用なバイオフィルムを生成する可能性がある。ディープウェルバイオフィルムデバイスは、臨床的に関連性のある低コスト、大容量、化学的に耐久性のあるプラスチック材料を使用して、ハイスループット96ウェルアッセイでバイオフィルムを研究したいラボに推奨されます。
The authors have nothing to disclose.
この研究のための資金は、カナダ自然科学工学研究評議会ディスカバリーグラント(RGPIN-2016-05891)からDCBへの運営助成金と、カナダ政府ゲノミクス研究開発イニシアチブグラント(GRDI)プログラム(GRDI7 2254557)からMRMとGRGへの運営助成金によって提供されました。
10 mL serological pipets, individ wrap paper/plastic (200/CS) | Fisher Scientific | 13-678-11F | disposable serological pipettes for aseptic media/ culture transfer |
2 mL serological pipets, individ wrap paper/plastic, 500/CS | Fisher Scientific | 13-678-11C | disposable serological pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Axygen Aerosol Filter Tips, Sterile, 5 racks/ PK, 1000 tips/rack | Fisher Scientific | 14-222-766 | sterile pipettor tips for media aliquoting |
Axygen deep well storage microplates, round wells, 1.1 mL cap, 5/PK, P-DW-11-C | Fisher Scientific | P-DW-11-C | microplate for 96 well deepwell device biofilm cultivation |
Axygen Filter tips, 350 µL tips racked, 96/rack, 10 racks, low retention barrier tips | Fisher Scientific | TF-350-L-R-S | sterile pipettor tips for media aliquoting |
Basin/reservoir natural PS 50 mL, Sterile, 5/bag, 40 bags, CS200 | Avantor/ VWR | 89094-676 | sterile basins/ reservoirs for microplate preparation |
BD Difco Dehydrated Culture Media: Granulated Agar, 500 g | Fisher Scientific | DF0145-17-0 | materials for LB agar preparation |
Biotek Synergy Neo2 multimode plate reader | Biotek | NEO2MB | microplate UV/Vis region plate reader |
Branson M3800 Ultrasonic Bath, 117 V | Avantor/ VWR | CPX-952-316R | sonicating water bath |
crystal violet (CV), ACS grade, 100 g | Fisher Scientific | C581-100 | biofilm biomass stain |
Dimethyl sulfoxide (DMSO), 1 L, ACS grade 99.9%, poly bottle, BDH | Avantor/ VWR | CABDH1115-1LP | media components for cryopreservation |
Easypet 3, pipet controller | Avantor/ VWR | CA11027-980 | serological pipettor for aseptic media/ culture transfer |
Eppendorf Research Plus 8 multi-channel pipettor , 10-100 µL | Avantor/ VWR | CA89125-338 | multichannel pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Eppendorf Research Plus 8 multi-channel pipettor , 30-300 µL | Avantor/ VWR | CA89125-340 | multichannel pipettes for aseptic media/ culture transfer |
Glacial acetic acid, CAS 64-19-7, 2.5L, ACS grade | Fisher Scientific | A38-212 | CV destain |
Glass test tubes, 150 mm x 18 mm, 72/Pack, PYREX | Fisher Scientific | 14957H/ 9820-18 | materials for cell culturing |
Glycerol, 4 L glass bottle ACS | Fisher Scientific | BP229-4 | media components for cryopreservation |
L-Cysteine, 98%, 250 g | Avantor/ VWR | 97061-204 | universal neutralizing solution |
L-glutathione reduced, 98%, 25 g | Fisher Scientific | AAJ6216614 | universal neutralizing solution |
L-Hisitidine, 98%, 100 g | Avantor/ VWR | CA97062-598 | universal neutralizing solution |
MBEC Assay Inoculator with 96 well tray, 100/CS | Innovotech | 19112 | material for 96 well MBEC device biofilm cultivation |
McFarland Standard, 0.5 EA | Fisher Scientific | R20410 | cell culture standardization |
McFarland Standard, 1.0 EA | Fisher Scientific | R20411 | cell culture standardization |
NUNC 96-well microtiter plates, w/lid, 50/CS | Fisher Scientific | 167008 | microplate for 96 well MBEC device biofilm cultivation and OD measurements |
PCR plate, semi-skirted 96 well, fast PCR, polypropylene, 25ea/PK | Sarstedt | 72.1981.202 | pegged lid for 96 well deepwell device biofilm cultivation |
Petri dish, 100 mm x 15 mm, semi-TK CS/500 | Fisher Scientific | FB0875712 | materials for LB agar preparation |
Potassium phosphate dibasic, ACS 500 g | Fisher Scientific | P288-500 | PBS component/ buffer |
Sodium chloride, ACS grade, 3 kg | Fisher Scientific | S2713 | media components for LB broth and PBS |
sodium phosphate monobasic, 1 kg | Fisher Scientific | S369-1 | PBS component/ buffer |
Syringe filters, Sterile, PES 0.45 um, 25 mm, PK50 | Avantor/ VWR | 28145-505 | non-autoclavable solution sterilization |
Tin foil, heavy duty, 50 feet | Grocery store | — | materials for deepwell device sterilization |
Tryptone (peptone from casein), 2.2 kg/EA | Fisher Scientific | B11922 | media components for LB broth |
Tween-20, 100 mL | Fisher Scientific | BP337-100 | recovery media solution |
Ultra-deepwell, 2.5 mL deep well plates (square well), with lid, polypropylene, 10/CS | Avantor/ VWR | 37001-520 | materials for biofilm dilution preparation |
Yeast Extract, Fisher Bioreagents, 500 g | Fisher Scientific | BP1422-500 | media components for LB broth |