Ce protocole décrit une analyse de journaliste pour étudier le règlement de la traduction d’ADN messagère dans les ovocytes simples pendant la maturation in vitro.
Des événements liés à la maturation nucléaire d’oocyte ont été bien décrits. Cependant, on en sait beaucoup moins sur les voies moléculaires et les processus qui ont lieu dans le cytoplasme en préparation de la fécondation et de l’acquisition de la totipotence. Au cours de la maturation des ovocytes, les changements dans l’expression des gènes dépendent exclusivement de la traduction et de la dégradation des ARN messagers maternels (ARNm) plutôt que de la transcription. L’exécution du programme translationnel joue donc un rôle clé dans l’établissement de la compétence développementale des ovocytes pour soutenir le développement de l’embryon. Cet article fait partie d’un accent sur la définition du programme de traduction maternelle de l’ARNm qui a lieu pendant la maturation méiotique et à la transition ovocyte-zygote. Dans cet article de méthode, une stratégie est présentée pour étudier la régulation de la traduction des ARNm cibles au cours de la maturation in vitro des ovocytes. Ici, un rapporteur Ypet est fusionné à la région non traduite 3′ (UTR) du gène d’intérêt, puis micro-injecté dans les ovocytes avec l’ARNm polyadénylé codant pour mCherry pour contrôler le volume injecté. En utilisant la microscopie time-lapse pour mesurer l’accumulation de rapporteur, les taux de traduction sont calculés à différentes transitions au cours de la maturation méiotique des ovocytes. Ici, les protocoles pour l’isolement et l’injection d’ovocyte, l’enregistrement de time-lapse, et l’analyse de données ont été décrits, utilisant le Ypet/interleukin-7 (IL-7)-3′ UTR reporter comme exemple.
Un ovocyte de mammifère adulte subit des changements rapides dans la préparation à la fécondation et à l’acquisition de la totipotence. Ces changements sont essentiels pour soutenir le développement embryonnaire après la fécondation. Bien que les événements associés à la maturation nucléaire soient relativement bien décrits, on en sait beaucoup moins sur les processus moléculaires et les voies dans le cytoplasme des ovocytes. Au cours des dernières étapes de la maturation des ovocytes, les ovocytes sont transcriptionnellement silencieux, et l’expression des gènes dépend entièrement de la traduction et de la dégradation de l’ARNm1,2. La synthèse des protéines critiques pour la compétence développementale s’appuie donc sur un programme de traduction chronométré d’ARNm à longue durée de vie qui ont été synthétisés plus tôt au cours de la croissancedes ovocytes 1,3. Dans le cadre d’un accent sur la définition de ce programme de traduction maternelle de l’ARNm exécuté pendant la maturation méiotique et à la transition ovocyte-zygote, cet article présente une stratégie pour étudier l’activation et la répression de la traduction des ARNm maternels cibles dans des ovocytes simples au cours de la maturation méiotique in vitro.
Dans cette méthode, le cadre de lecture ouvert YPet est cloné en amont de l’UTR 3′ de la transcription d’intérêt. Ensuite, les ARNm codant pour ce rapporteur sont micro-injectés dans les ovocytes avec des ARNm polyadenylé codant pour contrôler le volume injecté. L’accumulation de reporter est mesurée pendant la maturation méiotique in vitro d’ovocyte utilisant la microscopie de time-lapse. L’accumulation de protéines fluorescentes jaunes (YFP) et de mCherry est enregistrée dans les ovocytes individuels, et les signaux YFP sont corrigés par le niveau stabilisé du mCherry co-injecté. Après l’acquisition des données, les taux de translation sont calculés pour différents intervalles de temps au cours de la maturation méiotique ovocytaire in vitro en calculant la pente de la courbe obtenue par ajustement de courbe.
Cette approche fournit un outil pour confirmer expérimentalement les changements dans la traduction des ARNm endogènes sélectionnés. De plus, cette méthode facilite la caractérisation des éléments régulateurs qui contrôlent la traduction lors de la maturation méiotique des ovocytes en manipulant les éléments cis-régulateurs du 3′ UTR des ARNm cibles4,5,6. La manipulation de la longueur de la queue poly(A) permet également de mieux comprendre l’activité de l’adénylase/deadenylase dans les ovocytes5. La mutagenèse d’éléments cis-agissants ou d’immunoprécipitation de l’ARN peut être utilisée pour étudier les interactions avec les protéines de liaison à l’ARN apparenté6,7. De plus, cette méthode peut être utilisée pour identifier les composants essentiels du programme de traduction qui sont essentiels pour la compétence développementale des ovocytes en mesurant la traduction de l’UTR cible 3′ dans des modèles associés à une diminution de la qualité des ovocytes 8,9,10. Ce document de méthode présente une expérience représentative où des ovocytes dénudés de souris C57/BL6 âgées de 21 jours ont été micro-injectés avec un journaliste de Ypet fusionné au 3′ UTR d’IL-7. L’installation et le protocole pour l’injection d’ovocyte, l’enregistrement de time-lapse, et l’analyse de données ont été décrits.
La méthode présentée décrit une stratégie pour étudier l’activation et la répression de la traduction de l’ARNm cible à différentes transitions au cours de la maturation méiotique ovocytaire in vitro. IL-7, une cytokine libérée par l’ovocyte qui peut être impliquée dans la communication cellulaire ovocyte-cumulus 8,13, a été choisie dans le but de décrire ce procédé. IL-7 est connu pour être de plus en plus traduit pendant la ma…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par NIH R01 GM097165, GM116926 et Eunice Kennedy Shriver NICHD National Centers for Translational Research in Reproduction and Infertility P50 HD055764 à Marco Conti. Enrico M. Daldello a été soutenu par une bourse de la Fondation Lalor et Natasja G. J. Costermans a été soutenu par une bourse Rubicon de l’Organisation néerlandaise pour la recherche scientifique (NWO).
Preparation of media | |||
Bovine Serum Albumin Powder Bioxtra | Sigma-Aldrich | SIAL-A3311 | |
Cilostamide | EMD Millipore | 231085 | |
MEM alpha | Gibco | 12561-056 | |
Minimum Essential Medium Eagle | Sigma-Aldrich | M2645 | |
Penicillin-Streptomycin 100x Solution, Sterile Filtered | Genesee Scientific Corporation (GenClone) | 25-512 | |
Sodium Bicarbonate | JT-Baker | 3506-1 | |
Sodium Pyruvate | Gibco | 11360-070 | |
Ultrapure distilled water | Invitrogen | 10977-015 | |
Preparation of mRNA encoding YFP/3' UTR and mCherry | |||
Agarose | Apex Biomedical | 20-102QD | |
Carbenicillin disodium salt | Sigma-Aldrich | C1389-1G | |
Choo-Choo Cloning Kit | McLab | CCK-20 | |
CutSmart Buffer (10x) | New England Biolabs | B7204 | |
DNA loading dye (6x) | Thermo Scientific | R0611 | |
dNTP Solution | New England Biolabs | N0447S | |
DpnI | New England Biolabs | R0176 | |
GeneRuler 1 kb DNA ladder | Thermo Fisher | SM1333 | |
LB Agar Plates with 100 µg/mL Carbenicillin, Teknova | Teknova | L1010 | |
LB Medium (Capsules) | MP Biomedicals | 3002-021 | |
MEGAclear Transcription Clean-Up Kit | Life Technologies | AM1908 | |
MfeI-HF restriction enzyme | New England Biolabs | R3589 | |
mMESSAGE mMACHINE T7 Transcription Kit | Invitrogen | AM1344 | |
Phusion High Fidelity DNA polymerase | New England Biolabs | M0530 | |
Poly(A) Tailing kit | Invitrogen | AM1350 | |
QIAprep Spin Miniprep Kit | Qiagen | 27106 | |
QIAquick Gel Extraction Kit | Qiagen | 28704 | |
S.O.C. medium | Thermo Fisher | 15544034 | |
TAE buffer | Apex Biomedical | 20-193 | |
Ultrapure Ethidium Bromide Solution | Life Technologies | 15585011 | |
Oocyte collection | |||
Aspirator tube assembly for calibrated micro-pipettes | Sigma-Aldrich | A5177-5EA | |
Calibrated micro-pipettes | Drummond Scientific Company | 2-000-025 | |
PMSG- 5000 | Mybiosource | MBS142665 | |
PrecisionGlide Needle 26 G x 1/2 | BD | 305111 | |
Syringe 1 ml | BD | 309659 | |
Oocyte micro-injection | |||
35 mm Dish | No. 0 Coverslip | 20 mm Glass Diameter | Uncoated | MatTek | P35G-0-20-C | For time-lapse microscopy |
Borosilicate glass with filament | Sutter Instrument | BF100-78-10 | |
Oil for Embryo Culture | Irvine Scientific | 9305 | |
Petri Dish | Falcon | 351006 | For micro-injection |
Tissue Culture Dish | Falcon | 353001 | For oocyte incubation |
VacuTip Holding Capillary | Eppendorf | 5195000036 | |
Software | |||
Biorender | BioRender | Preparation of Figure 1S | |
MetaMorph, version 7.8.13.0 | Molecular Devices | For time-lapse microscopy, analysis of 3' UTR translation |