يتم قياس تكامل المدخلات المتشابكة المتنوعة إلى الخلايا العصبية على أفضل نحو في إعداد يحافظ على جميع النوى قبل متشابك التوقيت الطبيعي ولدونة الدائرة، ولكن شرائح الدماغ عادة قطع العديد من الاتصالات. قمنا بتطوير شريحة الدماغ المعدلة لمحاكاة في نشاط الدائرة الجسمية مع الحفاظ على القدرة على التجريب في المختبر.
في في المختبر شريحة تقنيات الفيزيولوجيا الكهربائية قياس نشاط خلية واحدة مع دقة دقيقة الكهربائية والزمانية. يجب أن تكون شرائح الدماغ رقيقة نسبيًا لتصور الخلايا العصبية والوصول إليها بشكل صحيح لقط اللصق أو التصوير ، ويقتصر الفحص المختبري للدوائر الدماغية على ما هو موجود فعليًا في الشريحة الحادة فقط. للحفاظ على فوائد التجريب شريحة في المختبر مع الحفاظ على جزء أكبر من النوى presynaptic، وضعنا إعداد شريحة جديدة. تم تصميم هذه “شريحة إسفين” لتسجيلات الفيزيولوجيا الكهربائية المشبك لتميز المدخلات المتنوعة التي تعتمد على الصوت إلى الخلايا العصبية أحادية الأمعاء (MOC) في جذع الدماغ. هذه الخلايا العصبية تلقي المدخلات الأولية afferent استثارة ومثبطة من الخلايا العصبية تنشيطها من قبل المحفزات في الأذن contralateralral ونواة القوقعة المقابلة (CN). تم تصميم شريحة الدماغ غير المتماثلة التي هي الأكثر سمكا في المجال الدوكوال روسترو على الحافة الجانبيه لنصف الكرة واحد ثم رقيقة نحو الحافة الجانبيه من نصف الكرة الأرضية المقابل. هذه الشريحة تحتوي, على الجانب السميك, جذر العصب السمعي نقل المعلومات حول المحفزات السمعية إلى الدماغ, الدوائر CN الجوهرية, وعلى حد سواء مثير disynaptic وtrisynaptic مسارات المثبطة التي تتلاقى على الخلايا العصبية موك contralateral. يتم إجراء التسجيل من الخلايا العصبية MOC على الجانب رقيقة من شريحة, حيث يتم تصورها باستخدام البصريات DIC للتجارب التصحيح المشبك نموذجي. يتم تنفيذ التحفيز المباشر للأعصاب السمعية عند دخولها إلى جذع الدماغ السمعي ، مما يسمح لنشاط الدائرة CN الجوهرية واللدونية متشابك أن يحدث في نقاط الاشتباك العصبي من الخلايا العصبية MOC. مع هذه التقنية، يمكن للمرء أن يحاكي في تنشيط الدائرة الكهربائية في الجسم الحي بأكبر قدر ممكن من القرب داخل شريحة. هذا إعداد شريحة إسفين ينطبق على دوائر الدماغ الأخرى حيث تحاليل الدوائر سوف تستفيد من الحفاظ على الاتصال المنبع والمدخلات طويلة المدى، في تركيبة مع المزايا التقنية من فيزيولوجيا شريحة في المختبر.
يتم تنفيذ مراقبة نشاط الدوائر العصبية بشكل مثالي مع المدخلات الحسية الأصلية والتغذية المرتدة ، والاتصال السليم بين مناطق الدماغ ، في الجسم الحي. ومع ذلك ، فإن إجراء التجارب التي تعطي دقة الخلية الواحدة لوظيفة الدائرة العصبية لا يزال محدودًا بسبب التحديات التقنية في الدماغ السليم. بينما في الجسم الحي خارج الخلية electrophysiology أو طرق التصوير متعددة الصور يمكن استخدامها للتحقيق في النشاط في النظم العصبية سليمة، وتفسير كيفية دمج المدخلات المختلفة أو قياس المدخلات subthreshold متشابك يبقى من الصعب. في تسجيلات الخلية الكاملة في الجسم الحي تتغلب على هذه القيود ولكن تشكل تحديا لأداء، حتى في مناطق الدماغ التي يتم الوصول إليها بسهولة. تتضخم التحديات التقنية لتجارب دقة الخلايا المفردة في بعض مجموعات الخلايا العصبية التي تقع في عمق الدماغ، أو في مجموعات سكانية منتشرة مكانياً تتطلب إما أدوات جينية لتحديد مكان الخلايا في الجسم الحي (على سبيل المثال، التعبير الجيني للقناه البروتوpsين المقترن بتسجيل optrode) أو تحديد الهوية الهستوكيميائية بعد تسجيل العلامات (على سبيل المثال مع علامات خاصة بـ neurotransmission). يجري تقع على نحو منتشر بالقرب من السطح البطني للأدمغة, الخلايا العصبية olivocochlear الوسيط (MOC) تعاني من القيود المذكورة أعلاه1,مما يجعلها من الصعب للغاية للوصول لفي التجارب الحية.
شرائح الدماغ (~ 100-500 μm سمك) منذ فترة طويلة تستخدم لدراسة دوائر الدماغ، بما في ذلك الدوائر الدماغ السمعية، وذلك بسبب الفصل المادي للخلايا العصبية المتصلة التي ترد داخل نفس شريحة2،3،4،5،6،7،8،9. وقد استخدمت التجارب باستخدام شرائح أكثر سمكا بكثير (> 1 ملم) في مختبرات أخرى لفهم كيفية دمج المدخلات الثنائية في مناطق مجمع أوليفاري متفوقة (SOC) بما في ذلك الزيتون متفوقة الوسيط10،11. تم إعداد هذه الشرائح بحيث أن محاور عصبية من العصب السمعي (AN) ظلت سليمة داخل شريحة وحفزت كهربائيا لبدء إطلاق الناقل العصبي متشابك في CN, محاكاة نشاط الخلايا العصبية السمعية من الدرجة الأولى لأنها سوف تستجيب للصوت. عيب رئيسي واحد من هذه الشرائح سميكة هو رؤية الخلايا العصبية للتسجيلات الكهربائية التضيق المشبك (“الترقيع”). يصبح التصحيح صعبة بشكل متزايد كما تصبح محاور عصبية عديدة في هذا المجال النخاعي مع سن12,13,14,15, مما يجعل الأنسجة الخلايا العصبية الكثيفة بصريا وحجب حتى في نموذجي, شريحة الدماغ رقيقة. هدفنا هو خلق في تجهيزات في المختبر التي تشبه بشكل أوثق اتصال الدائرة في تسجيلات الجسم الحي، ولكن مع قدرات عالية الإنتاجية وتسجيل عالية الدقة من البصرية توجيه التصحيح المشبك الكهربائية الفيزيولوجيا في شرائح الدماغ.
مختبرنا يحقق في فسيولوجيا الخلايا العصبية في النظام السمعي الـإفرازي، بما في ذلك الخلايا العصبية MOC. هذه الخلايا العصبية الكولينية تقديم ردود الفعل efferent إلى قوقعة الأذن عن طريق تحوير نشاط خلايا الشعر الخارجي (OHCs)16,17,18,19,20. وقد أظهرت الدراسات السابقة أن هذا التشكيل يلعب دوراً في السيطرة على القوقعة21،22،23،24،25،26 والحماية من الصدمة الصوتية27،28،29،30،31،32،33. في الفئران، تقع الخلايا العصبية MOC منتشر في النواة البطنية من الجسم شبه المنحرف (VNTB) في الدماغ السمعي1. وقد استخدمت مجموعتنا خط الماوس ChAT-IRES-Cre عبر مع خط الماوس مراسل tdTomato لاستهداف الخلايا العصبية MOC في شرائح جذع الدماغ تحت الإضاءة الظهارة. أظهرنا أن الخلايا العصبية MOC تلقي مدخلات مثبطة afferent من نواة الوسيطة ipsilateral من الجسم شبه المنحرف (MNTB)، وهو متحمس، بدوره، من قبل محاور عصبية من الخلايا شجيرة كروية (GBC) في نواة القوقعة contralateral (CN)34،35،36،38. بالإضافة إلى ذلك, الخلايا العصبية MOC من المرجح تلقي مدخلاتها استثارة من الخلايا التي تى-ممتاز في الـ CN contralateralral39,40,41. معا، وتظهر هذه الدراسات الخلايا العصبية MOC تلقي كل من المدخلات الإثارة والمثبطة المستمدة من نفس الأذن (contralateralral). ومع ذلك، فإن الخلايا العصبية presynaptic، ومحور عصبيتها تتلاقى على الخلايا العصبية MOC، ليست قريبة جدا بما فيه الكفاية لبعضها البعض لتكون سليمة تماما في إعداد شريحة الإكلالية نموذجية. للتحقيق في كيفية دمج المدخلات متشابك لالخلايا العصبية MOC يؤثر على أنماط إطلاق النار المحتملة عملهم، مع التركيز على تثبيط وصفها حديثا، وضعنا إعداد التي يمكن أن تحفز afferents متنوعة إلى الخلايا العصبية MOC من أذن واحدة في الطريقة الأكثر واقعية من الناحية الفسيولوجية ممكن، ولكن مع الفوائد التقنية لتجارب شريحة الدماغ في المختبر.
شريحة إسفين هو إعداد شريحة سميكة معدلة مصممة للتحقيق في التكامل الدائرة في الخلايا العصبية MOC (المخطط في الشكل 1A). على الجانب السميك من الشريحة، يحتوي الإسفين على المحاور الحادة للأعصاب السمعية (التي يطلق عليها “جذر العصب السمعي” فيما بعد) عند دخولها جذع الدماغ من المحيط والمشابك في النفثالين. يمكن تحفيز جذر العصب السمعي كهربائيا لاستحضار الافراج عن الناقل العصبي وتفعيل متشابك من الخلايا من CN سليمة تماما42،43،44،45،46. هذا الشكل التحفيز له العديد من الفوائد لتحليل الدائرة. أولا، بدلا من تحفيز مباشرة من المحاور T-ممتاز و GBC التي توفر مدخلات من الداخل إلى الخلايا العصبية MOC، ونحن نحفز AN للسماح لتنشيط الدوائر الجوهرية وفيرة في CN. هذه الدوائر تعدل انتاج الخلايا العصبية CN لأهدافها في جميع أنحاء الدماغ، بما في ذلك الخلايا العصبية MOC46،47،48،49،50،51. ثانيا، التنشيط polysynaptic من الدوائر afferent من AN من خلال المنبع CN من الخلايا العصبية MOC يسمح لتوقيت التنشيط أكثر طبيعية ولدونة أن يحدث في هذه نقاط الاشتباك العصبي كما يفعلون في الجسم الحي خلال التحفيز السمعي. ثالثاً، يمكننا أن نختلف أنماط التحفيز لدينا لمحاكاة نشاط AN. وأخيرا، كل من الإسقاطات الإثارة والمثبطة إلى الخلايا العصبية MOC سليمة في شريحة إسفين، ويمكن قياس تكاملها في الخلايا العصبية MOC مع دقة الفيزيولوجيا الكهربائية التصحيح المشبك. ككل، يوفر هذا المخطط التنشيط دائرة أكثر سلامة إلى الخلايا العصبية MOC مقارنة بإعداد شريحة الدماغ نموذجية. ويمكن أيضا أن تستخدم هذه الشريحة إسفين جذع الدماغ للتحقيق في المناطق السمعية الأخرى التي تتلقى مدخلات المثبطة من IPSilateral MNTB بما في ذلك الزيتون الجانبي متفوقة، نواة أوليفاري متفوقة والزيتون متفوقة وسيطة10،11،52،53،54،55،56. أبعد من إعدادنا محددة، يمكن استخدام هذه الطريقة تشريح أو تعديل لتقييم أنظمة أخرى مع فوائد الحفاظ على الاتصال من المدخلات طويلة المدى وتحسين التصور من الخلايا العصبية لمجموعة متنوعة من الخلايا وحيدة الدقة الكهربائية أو تقنيات التصوير.
يتطلب هذا البروتوكول استخدام مرحلة هزاز أو منصة يمكن إمالة حوالي 15 درجة. هنا نستخدم مرحلة مغناطيسية متاحة تجاريا 2 قطعة حيث “المرحلة” هو قرص معدني مع أسفل منحني وضعت في “قاعدة مرحلة المرحلة” مقعرة المغناطيسي. يمكن بعد ذلك أن يتم نقل المرحلة لضبط زاوية الشريحة. وتستخدم الدوائر متحدة المركز على قاعدة المرحلة لتقدير زاوية reproducibly. يتم وضع مرحلة وقاعدة المرحلة في غرفة تشريح، حيث يمكن أيضا قاعدة المرحلة المغناطيسية يمكن أن تكون استدارة.
الإجراء تشريح وصفها هنا يطلق شريحة إسفين قوية للحفاظ على الدوائر العصبية presynaptic سليمة، ولكن مع إمكانية الوصول إلى تجربة شريحة الدماغ لتحليل وظيفة الخلايا العصبية. يجب توخي الحذر الشديد في عدة خطوات أولية من أجل تعظيم فائدة التحضير لتحليل الدوائر. يجب تأكيد أبعاد الإسفين باستخدام الفحص ال…
The authors have nothing to disclose.
وقد دعم هذا البحث من قبل برنامج البحوث داخل الثقافات من المعاهد القومية للصحة، NIDCD، Z01 DC000091 (CJCW).
Experimental Preparations | |||
Agar, powder | Fisher Scientific | BP1423500 | 4% agar block used to stabilize brain tissue during vibratome sectioning |
AlexaFluor Hydrazide 488 | Invitrogen | A10436 | Fluorophore used in internal solution to confirm successful MOC neuron patch |
Analytical Balance | Geneses Scientific (Intramalls) | AV114 | Weighing chemicals |
Double edged razor blade | Ted Pella | 121-6 | Vibratome cutting blade |
Kynurenic acid (5g) | Sigma Aldrich | K3375-5G | Slicing ACSF additive used to reduce neuron activity during dissection and slicing in order to improve tissue health for patch clamping |
pH Meter | Fisher Scientific (Intramalls) | 13-620-451 | Solution pH tester |
Plastic petri dishes 100mm dia X 20mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556-002 | 4% Agar Prep |
Stirring Hotplate | Fisher Scientific (Intramalls) | 11-500-150 | Heating for 4% Agar preparation |
Dissection and Slicing | |||
Biocytin | Sigma Aldrich | B4261-250MG | Chemical used for axonal tracing (conjugated to Streptavidin 488) |
Dissecting Microscope | Amscope | SM-1BN | For precision dissection during brain removal |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | Fine forceps dissection tool |
Economy tweezers #3 | WPI | 501976 | Forceps dissection tool |
Glass Petri Dish 150mm dia x 15mm H | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-747E | Dissection dish |
Interface paper (203 X 254mm PCTE Membrane 10um) | Thomas Scientific | 1220823 | Slice incubation/biocytin application |
Leica VT1200S Vibratome | Leica | 1491200S001 | Vibratome for wedge slice sectioning |
Mayo scissors | Roboz | RS-6872 | Dissection tool |
Single-edged carbon steel blades | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-640 | Razor blade for dissection |
Specimen disc, orienting | Leica | 14048142068 | Specialized vibratome stage for reproducible tilting |
Spoonula | FisherSci | 14-375-10 | Dissection tool |
Super Glue | Newegg | 15187 | Used for glueing tissue to vibratome stage |
Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 91500-09 | Dissection tool |
Electrophysiology | |||
A1R Upright Confocal Microscope | Nikon Instruments | Electrophysiology and imaging microscope, can be any microscope compatible with electrophysiology | |
Electrode Borosilicate glass w/ Filament OD 1.5mm, ID 1.1mm, 10 cm long | Sutter Instrument | BF150-110-10 | Patch clamping pipette glass |
Electrode Filler MicroFil | WPI | CMF20G | Patch electrode pipette filler |
In-line solution heater | Warner Instruments (GSAdvantage) | SH-27B | Slice perfusion system heater |
Multi-Micromanipulator Systems | Sutter Intruments | MPC-200 with MP285 | Micromanipulators for patch clamp and stimulation electrode placement |
P-1000 horizontal pipette puller for glass micropipettes | Sutter instruments | FG-P1000 | Patch clamp pipetter puller |
Patch-clamp amplifier and Software | HEKA | EPC-10 / Patchmaster Next | Can be any amplifier/software |
Recording Chamber | Warner Instruments | RC26G | Slice "bath" during recording |
Recording Chamber Harp | Warner Instruments | 640253 | Stablizes slice during electrophysiology recording |
Slice Incubation Chamber | Custom Build | Heated, oxygenated holding chamber for slices during recovery after slicing | |
Stimulus isolation unit | A.M.P.I. | Iso-Flex | Stimulus isolation unit for electrophysiology |
Syringe 60CC | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-820-11 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Temperature controller | Warner Instruments (GSAdvantage) | TC-324C | Slice perfusion system temperature controller |
Tubing 1/8 OD 1/16 ID | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-171-129 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Tugsten concentric bipolar microelectrode | WPI | TM33CCINS | Stimulating electrode for electrophysiology |
Histology | |||
24 well Plate | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556006 | Histology slice collection and immunostaining |
Alexa Fluor 488 Streptavidin | Jackson Immuno labs | 016-540-084 | Secondary antibody for biocytin visualization |
Corning Orbital Shaker | Sigma | CLS6780FP | Shaker for immunohistochemistry agitation |
Cresyl Violet Acetate | Sigma Aldrich (Intramalls) | C5042-10G | Cellular stain for histology |
Disposable Microtome Blades | Fisher Scientific | 22-210-052 | Sliding microtome blade |
Filter-syringe Nalgene 4mm Cellulose Acetate 0.2um | Fisher Scientific (Intramalls) | 09-740-34A | Syringe filter for filling recording pipettes with internal solution |
Fluoromount-G Slide Mounting Medium | Fisher Scientific | OB100-01 | Immunohistochemistry fluorescence mounting medium |
glass slide staining dish with rack | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-812 | Cresyl Violet staining chamber |
Microm HM450 Sliding Microtome | ThermoFisher | 910020 | Freezing microtome for histology |
Microscope Cover Glasses: Rectangles 50mm X 24mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-543D | Histochemistry slide cover glass |
Permount mounting medium | Fisher Scientific | SP15-100 | Cresyl violet section mounting medium |
Superfrost Slides | Fisher Scientific | 22-034980 | Histology slides |