Этот протокол описывает хронический метод имплантации окна черепа, которые могут быть использованы для продольной визуализации нейроглио-сосудистых структур, взаимодействий и функции как в здоровых, так и в больных условиях. Он служит дополнительной альтернативой транскраниальному подходу к визуализации, который, хотя и часто предпочтительнее, обладает некоторыми критическими ограничениями.
Центральная нервная система (ЦНС) регулируется сложным взаимодействием нейронных, глиальных, стромальных и сосудистых клеток, которые облегчают его надлежащую функцию. Хотя изучение этих клеток в изоляции in vitro или вместе ex vivo предоставляет полезную физиологическую информацию; в таких контекстах будут упущены основные особенности физиологии нервных клеток. Поэтому необходимо изучать нервные клетки в их родной среде in vivo. Протокол подробно здесь описывает повторяющиеся vivo двух-фотон изображения нервных клеток в коре грызунов в качестве инструмента для визуализации и изучения конкретных клеток в течение длительных периодов времени от часов до нескольких месяцев. Мы подробно описываем использование чрезвычайно стабильного сосуда мозга как грубой карты или флуоресцентно помеченных дендритов как тонкая карта избранных областей мозга, представляющих интерес. Используя эти карты в качестве визуального ключа, мы показываем, как нервные клетки могут быть точно перемещены для последующего повторяющихся изображений in vivo. Используя примеры in vivo изображений флуоресцентно-маркированных микроглии, нейронов и NG2– клеток, этот протокол демонстрирует способность этой техники, чтобы повторяющиеся визуализации клеточной динамики в том же месте мозга в течение длительных периодов времени, что может еще больше помочь в понимании структурных и функциональных реакций этих клеток в нормальной физиологии или после патологических оскорблений. При необходимости такой подход может быть связан с функциональной визуализацией нервных клеток, например, с визуализацией кальция. Этот подход является особенно мощным методом визуализации физического взаимодействия между различными типами клеток ЦНС in vivo, когда генетические модели мыши или конкретные красители с различными флуоресцентными тегами для обозначения клеток, представляющих интерес, доступны.
Центральная нервная система (ЦНС) регулируется сложным взаимодействием взаимодействий между различными типами клеток-резидентов, включая нейроны, глию и клетки, связанные с сосудами. Традиционно, нервные клетки были изучены в изолированных, совместно культивируется1,2,3,4,,5 (in vitro) или вырезанной ткани мозга (ex vivo)6,7,8,9,10 контекстов.4 Тем не менее, необходимо дальнейшее понимание поведения нейронных клеток и взаимодействий в родной среде нетронутыми мозга in vivo. В этом протоколе мы описываем метод картирования регионов, представляющих интерес in vivo, и точно переохотвердем эти регионы в будущих сеансах визуализации для отслеживания сложных взаимодействий между различными типами клеток ЦНС в течение длительных периодов времени.
Развитие подходов к визуализации in vivo дало значительные выгоды для правильного понимания нервной функции11,,12,,13,,14,,15. В частности, эти подходы дают ряд преимуществ по сравнению с традиционными подходами in vitro и ex vivo. Во-первых, в vivo системы визуализации имеют физиологически соответствующие компоненты клеток и тканей, такие как сосуды с полным репертуаром клеточных взаимодействий, чтобы обеспечить полное понимание физиологии нейронной сети. Во-вторых, последние результаты показывают, что при удалении из их родной среды, некоторые нервные клетки (например, микроглии) теряют важные особенности их идентичности и, таким образом, физиологии16,17, которые могут быть сохранены в in vivo настройки. В-третьих, in vivo системы визуализации предоставляют возможность для стабильных продольных исследований от нескольких недель до нескольких месяцев для изучения ЦНС клеточного взаимодействия. Наконец, учитывая растущие данные о вкладах от периферической иммунной системы18,19 и микробиома20,21 в физиологии ЦНС, in vivo системы обеспечивают платформу для допроса таких вкладов и воздействия на клетки ЦНС. Таким образом, подходы, которые используют продольные in vivo изображения для изучения нейро-иммунной физиологии и взаимодействия в здоровых, раненых и больных состояний являются большим дополнением к традиционным подходам.
В этом протоколе мы описываем надежный подход к изображению различных типов клеток в головном мозге, включая микроглии, нейроны и клетки NG2в качестве примеров. Разработаны два подхода к визуализации нервных клеток in vivo: истонченный подход черепа и открытый череп с подходом к черепному окну. Хотя разбавленный череп подходы используются и предпочтительнее, потому что они преодолевают некоторые из недостатков открытого подхода черепа, таких как активация глиальных клеток, выше, чем физиологическая динамика позвоночника и использование противовоспалительных агентов22,23,24,,25, разбавленный череп подходы также показывают несколько критических недостатков. Во-первых, процедура истончения является очень деликатной процедурой, которую многие исследователи трудно усовершенствовать, особенно когда необходимо повторное утончение. Это так, потому что часто трудно для экспериментаторов, чтобы убедиться, что они истончили череп до глубины 20 мкм. Во-вторых, для адекватных сравнений между мышами, истончение должно быть идентичным и различные истончение успеха между изображений сессий или мышей может осложнить визуализацию нервных структур. В-третьих, при использовании для продольной визуализации, животные с истонченными черепами могут быть использованы только для ограниченного числа сеансов при повторном разжижении черепа. В-четвертых, так как некоторые из костной ткани все еще остается, ясность в глубине изображения может быть скомпрометирована от истонченного подхода черепа позволяет большой визуализации более поверхностным, но не так много с более глубокими регионами. В свете этого, более глубокие структуры мозга, такие как гиппокамп, не могут быть успешно изображены с истонченным подходом черепа. Эти соображения высовы воспитывают необходимость в альтернативных и взаимодополняющих подходах, которые могли бы преодолеть эти озабоченности.
Альтернатива истонченным подходом черепа, открытый подход к имплантации окна черепа использует процедуру, в которой череп заменяется оптически ясным стеклом. Это позволяет почти неограниченное количество сеансов визуализации. Кроме того, при замене черепа на стекло крышки, этот метод позволяет четкое окно просмотра флуоресцентно помечены клетки мозга в течение длительных периодов от нескольких часов до месяцев и, следовательно, могут быть использованы для изучения активности клеток и взаимодействий, которые имеют отношение к физиологии, старения и патологии.
В целом, мы подробно шаги, которые могут следовать, чтобы сделать имплантат хронических черепных окон через стереотаксисную краниотомию, что позволяет in vivo изображения областей мозга, представляющих интерес. Мы также описываем, как чрезвычайно стабильная сосуды мозга или флуоресцентно помеченные дендриты могут быть использованы для создания грубой или тонкой карты, соответственно, областей мозга, представляющих интерес. Этот подход может быть использован для повторного изображения в течение нескольких сессий. Важность этого метода, таким образом, заключается в его способности образ долгосрочных изменений или застой в элементах мозга, включая расположение, морфология, и взаимодействия различных клеточных типов.
Появление in vivo двух-фотон изображений открыл возможности для изучения множества клеточных взаимодействий и динамики, которые происходят в здоровом мозге. Первоначальные исследования сосредоточены на использовании открытого черепа краниотомии подход к изображению нейрональных денд…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим сотрудников лаборатории Eyo за обсуждение идей, представленных в этой рукописи. Мы благодарим д-ра Джастина Rustenhoven из лаборатории Кипнис в Университете Вирджинии за подарок NG2DsRed мышей33. Эта работа поддерживается за счет финансирования из Национального института неврологических расстройств и инсульта Национального института здравоохранения в U.B.E (K22 NS104392).
Coverglass (3mm) | Warner Instruments | 64-0726 | |
Cyanoacrylate glue (Krazy Glue) | Amazon | https://www.amazon.com/Krazy-Glue-Original-Purpose-Instant/dp/B07GSF31WZ/ref=sr_1_2?keywords=krazy+glue&qid=1583856837&s=pet-supplies&sr=8-2 | |
Demi Ultra LED Curing Light System | Dental Health Products, Inc | 910860-1 | |
Dental Drill | Osada: www.osadausa.edu | EXL-M40 | |
Drill Bit | Fine Science Tools | #19008-07 | |
Eye Ointment | Henry Schien | 1338333 | |
iBond Total Etch (Primer glue) | Chase Dental Supply (Heraeus Kulzer) | 66040094 | |
Rhodamine B | Millipore Sigma | 81-88-9 (R6626) | |
Tetris Evoflow glue (Final glue) | Top Dent (Ivoclar Vivadent) | #595956 | |
Wahl Brav Mini+ | Amazon | https://www.amazon.com/Wahl-Professional-Animal-BravMini-41590-0438/dp/B00IN24ILE/ref=asc_df_B00IN24ILE/?tag=hyprod-20&linkCode=df0&hvadid=167141013968&hvpos=&hvnetw=g&hvrand=12368793083893626704&hvpone=&hvptwo=&hvqmt=&hvdev=c&hvdvcmdl=&hvlocint=&hvlocphy=9008337&hvtargid=pla-332197544154&psc=1 |