Summary

Ativação optogenética de caminhos diferentes em fatias cerebrais e modulação de respostas por anestésicos voláteis

Published: July 23, 2020
doi:

Summary

As fatias cerebrais ex vivo podem ser usadas para estudar os efeitos de anestésicos voláteis em respostas evocadas a diferentes entradas. A optogenética é empregada para ativar independentemente os afferents thalamocortical e corticocortical ao neocórtex não primário, e as respostas sinápticas e de rede são moduladas com isoflurano.

Abstract

Anestésicos influenciam a consciência em parte através de suas ações em circuitos thalamocortical. No entanto, ainda não está claro até que ponto os anestésicos voláteis afetam componentes celulares e de rede distintos desses circuitos. As fatias cerebrais ex vivo fornecem um meio pelo qual os pesquisadores podem sondar componentes discretos de redes complexas e desembaraçar mecanismos potenciais subjacentes aos efeitos de anestésicos voláteis em respostas evocadas. Para isolar potenciais efeitos de células e efeitos de drogas específicas em fatias cerebrais, os pesquisadores devem ser capazes de ativar independentemente vias de fibras diferentes, identificar populações não sobrepostas de células e aplicar anestésicos voláteis ao tecido em solução aquosa. Neste protocolo, são descritos métodos para medir respostas optogeneticamente evocadas a dois caminhos independentes a diferentes para o neocórtex em fatias cerebrais ex vivo. Respostas extracelulares são registradas para avaliar a atividade da rede e gravações de grampos de remendo de células inteiras direcionadas são realizadas em interneurônios somatostatina e parvalbumin-positivos. Descreve-se a entrega de concentrações fisiologicamente relevantes de isoflurane através de fluido espinhal cerebral artificial para modular as respostas celulares e de rede.

Introduction

Anestésicos voláteis têm sido usados onipresentemente em uma variedade de ambientes clínicos e acadêmicos por mais de um século. Classes distintas de anestésicos têm alvos moleculares únicos, muitas vezes não sobrepostos 1,2,3, mas quase todos eles produzem inconsciência. Embora seus efeitos comportamentais sejam bastante previsíveis, os mecanismos pelos quais os anestésicos induzem a perda de consciência são amplamente desconhecidos. Os anestésicos podem, em última análise, influenciar tanto o nível quanto o conteúdo da consciência através de ações em circuitos corticotalâmicos, interrompendo a integração da informação em toda a hierarquia cortical 4,5,6,7,8,9. De forma mais ampla, a modulação de circuitos corticotalâmicos pode desempenhar um papel experimentalmente10 ou farmacologicamente11 estados alterados de consciência, e também pode ser implicada no sono12 e em distúrbios fisiodósiológicos da consciência13,14.

A esquiva dos mecanismos subjacentes à perda e ao retorno da consciência durante a anestesia pode ser atribuída parcialmente a ações não lineares e sinérgicas de anestésicos nos níveis celular, de rede e sistemas15. Isoflurane, por exemplo, suprime a atividade dentro das regiões cerebrais selecionadas 16,17,18, prejudica a conectividade entre regiões cerebrais distantes 19,20,21,22,23, e diminui as respostas sinápticas de forma específica da via24,25 . Quais efeitos dos anestésicos, do nível molecular ao dos sistemas, são necessários ou suficientes para efetuar a perda de consciência permanece incerto. Além das investigações clínicas substantivas da consciência utilizando técnicas não invasivas 19,20,26, é importante que os experimentalistas busquem desembaraçar as distintas interações celulares e de rede que subservem a experiência consciente.

Simplificando as interações complexas encontradas no cérebro intacto, as fatias cerebrais ex vivo permitem o estudo de componentes isolados dos sistemas dinâmicos do cérebro9. Uma preparação reduzida de fatias combina os benefícios de estruturas anatômicas relativamente intactas de circuitos neurais locais com a versatilidade de manipulações in vitro. No entanto, até recentemente, as restrições metodológicas têm impedido o estudo das propriedades sinápticas e de circuito de insumos de longo alcance em fatias cerebrais27,28; o caminho tortuoso dos tratos de fibra corticotalâmica tornou a ativação de vias independentes, mas impossíveis por estimulação elétrica.

Investigar os efeitos dos agentes anestésicos nas preparações de fatias cerebrais apresenta desafios adicionais. Sem um sistema respiratório e circulatório intacto, os agentes anestésicos devem ser aplicados no banho, e concentrações cuidadosamente combinadas com concentrações estimadas do local de efeito. Para muitos agentes anestésicos intravenosos, a lenta taxa de equilíbrio no tecido torna as investigações farmacológicas tradicionais laboriosas29,30. Investigar os efeitos de anestésicos voláteis de gás nas preparações ex vivo é mais tratável, mas também apresenta desafios. Estes incluem a conversão de doses de pressão parcial inaladas em concentrações aquosas, e a necessidade de um sistema de entrega modificado da droga para o tecido através de fluido espinhal cerebral artificial31.

Aqui, os métodos são descritos pelos quais os investigadores podem capitalizar as propriedades físico-químicas bem documentadas do anestésico volátil para entrega de drogas para fatias cerebrais ex vivo, ativar entradas específicas de caminhos e camadas para uma área cortical de interesse com alta resolução espacial, e realizar gravações simultâneas de laminar e registros de grampos direcionados de populações selecionadas de neurônios. Combinados, esses procedimentos permitem aos pesquisadores medir alterações induzidas por anestésicos voláteis em várias propriedades de resposta eletrofisiológica observável, do nível sináptico ao nível da rede local.

Protocol

Todos os procedimentos envolvendo animais descritos neste protocolo foram aprovados pela University of Wisconsin-Madison School of Medicine e public health animal care and Use Committee. 1. Reprodução de camundongos para expressar proteína fluorescente repórter em subpopulações de interneurônios Par homozyogous, cre-dependent tdTomato rato macho com ou homozygous SOM-Cre fêmea ou homozigos pv-cre rato fêmea.NOTA: Outras populações neuronais específicas podem ser alvo …

Representative Results

Uma linha do tempo de etapas descritas no protocolo é mostrada na Figura 1. As entradas corticais que chegam de áreas corticais de ordem superior ou de núcleos talâmicos não primários têm campos terminais parcialmente sobrepostos na camada 1 do córtex visual não primário24. Para isolar caminhos aferentes independentes thalamocortical ou corticocortical, um vetor viral contendo ChR2 e um repórter fluorescente eYFP em Po ou Cg foi injetado. As células dentro…

Discussion

Neste manuscrito, é descrito um protocolo para avaliação de respostas intra e extracelulares a caminhos aferentes seletivamente ativados em fatias cerebrais ex vivo.

O uso de ferramentas optogenéticas e esquemas paralelos de gravação permite que os investigadores testem respostas de populações locais a diferentes insumos de regiões cerebrais distantes, enquanto registram simultaneamente de populações-alvo de interneurons. O uso da tecnologia optogenética permite que terminais de ax…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem bryan Krause pelo apoio técnico e orientação sobre este projeto.

Este trabalho foi apoiado pela International Anesthesia Research Society (IMRA to AR), National Institutes of Health (R01 GM109086 to MIB) e pelo Departamento de Anestesiologia, Faculdade de Medicina e Saúde Pública, Universidade de Wisconsin, Madison, WI, EUA.

Materials

2.5x broadfield objective lens Olympus MPLFLN2.5X
40x water immersion objective lens Olympus LUMPLFLN40XW
95% O2/5% CO2 mixture Airgas Z02OX95R2003045
A16 probe NeuroNexus A16x1-2mm-100-177-A16 16-channel probe
AAV2-hSyn-hChR2(H134R)-EYFP Karl Deisseroth Lab, UNC Vector Core
Anesthetic gas monitor (POET II) Criticare 602-3A
ATP, Magnesium Salt Sigma Aldrich A9187 intracellular solution
B6.Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J The Jackson Laboratory 007914 Cre-dependent tdTomato mouse
B6;129P2-Pvalbtm1(cre)Arbr/J The Jackson Laboratory 008069 PV-Cre mouse
Belly Dancer Shaker Thomas Scientific 1210H86-TS for equilibration of sealed gas bags
Betadine solution Generic brand
Bleach Generic brand for silver chloriding patch clamp electrode
Bupivicaine
Calcium Chloride (CaCl2) Dot Scientific DSC20010 ACSF
Capillary glass (patch clamp recordings) King Precision Glass, Inc. KG-33 Borosilicate, ID: 1.1mm, OD: 1.7mm, Length: 90.0mm
Capillary glass (viral injections) Drummond Scientific Company 3-000-203-G/X 3.5"
Control of junior micromanipulator Luigs and Neumann SM8 for control of junior micromanipulator
Control of manipulators and shifting table Luigs and Neumann SM7 for control of multichannel electrode and shifting table
Digidata 1440A + Clampex 10 Molecular Devices 1440A Digitizer and software
E-3603 tubing Fisher Scientific 14171208 for delivery of 95% O2/5% CO2 gas mixture to incubation chamber + application of pressure during patch clamping
EGTA Dot Scientific DSE57060 intracellular solution
ERP-27 EEG Reference/Patch Panel Neuralynx Retired
Filling needle World Precision Instruments 50821912 for filling patch clamp pipettes
Filter cube for imaging EYFP Olympus U-MRFPHQ
Filter paper Fisher Scientific 09801E lay over slice template during preparation of tissue block
Flaming/Brown micropipette puller Sutter Instrument P-1000 2.5×2.5 Box filament
Gas dispersion tube Sigma Aldrich CLS3953312C
Glass syringe (100 mL) Sigma Aldrich Z314390 for filling gas-sealed bags
Gluconic Acid, Potassium Salt (K-gluconate) Dot Scientific DSG37020 intracellular solution
Glucose Dot Scientific DSG32040 ACSF
GTP, Sodium Salt Sigma Aldrich G8877 intracellular solution
Headstage-probe adaptor NeuroNexus A16-OM16 adaptor to connect 16-channel probe to headstage input
Hemostatic Forceps VWR International 76192-096
HEPES Dot Scientific DSH75030 ACSF,intracellular solution
HS-16 Headstage Neuralynx Retired
Isoflurane Patterson Veterinary 07-893-1389
Isopropyl alcohol (70%) VWR International 101223-746
Junior micromanipulator Luigs and Neumann 210-100 000 0090-R for manipulation of patch clamp electrode
LED Light Source Control Module Mightex BLS-PL02_US optogenetic light source control
Lidocaine
Lynx-8 Amplifier Neuralynx Retired
Lynx-8 Power Supply Neuralynx Retired
Magnesium Sulfate (MgSO4) Dot Scientific DSM24300 ACSF
mCherry, Texas Red filter cube Chroma 49008 for imaging tdTomato fluorescent reporter
Meloxicam
Micropipette holder Fisher Scientific NC9044962
Microsyringe pump World Precision Instruments UMP3-4
Mineral oil Generic brand
MultiClamp 700A Molecular Devices/Axon Instruments 700A Amplifier
Nitrogen (for air table) Airgas NI200
Nylon mesh Fisher Scientific 501460083 stretched over horseshoe of flattened platinum wire, slice rest on top of this during recordings
Nylon, cut from pantyhose Generic brand small piece to create slice platform in incubation chamber, single fibers to create platinum harp
Ophthalmic ointment Fisher Scientific NC1697520
Pipette Dot Scientific 307 For transferring tissue to rig
Platinum wire VWR International BT124000 2 cm, flattened, to make platinum harp
Polygon400 Mightex DSI-E-0470-0617-000 optogenetic light delivery system, comes with PolyScan2 software
Potassium Chloride (KCl) Dot Scientific DSP41000 ACSF
Potassium Phosphate (KH2PO4) Dot Scientific DSP41200 ACSF
Razor blade Fisher Scientific 12-640
Sapphire blade (for vibratome) VWR International 100492-502
Scalpel blade Santa Cruz Biotechnology, Inc. sc-361445
Sealed gas bag Fisher Scientific 109236
Shifting table for microscope Luigs and Neumann 380FMU
Sodium Bicarbonate (HCO3-) Dot Scientific DSS22060 ACSF
Sodium Chloride (NaCl) Dot Scientific DSS23020 ACSF, intracellular solution
Ssttm2.1(cre)Zjh/J (SOM-IRES-Cre) The Jackson Laboratory 013044 SOM-Cre mouse
Stereotaxic instrument Kopf Model 902 Dual Small Animal
Super glue Staples 886833 to fix tissue block to specimen stage during slice preparation
Surgical drill RAM Products Inc. DIGITALMICROTORQUE Microtorque II
Syringe (1 mL) with LuerLock tip Fisher Scientific 309628 for application of pressure during patch clamping
Syringe (1 mL) with slip tip WW Grainger, Inc. 19G384 for filling patch clamp pipettes
Syringe Filters VWR International 66064-414
Upright microscope Olympus BX51
Vibrating microtome Leica Biosystems VT1000S
Wypall towels Fisher Scientific 19-042-427

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Citer Cet Article
Murphy, C. A., Raz, A., Grady, S. M., Banks, M. I. Optogenetic Activation of Afferent Pathways in Brain Slices and Modulation of Responses by Volatile Anesthetics. J. Vis. Exp. (161), e61333, doi:10.3791/61333 (2020).

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