Forniamo un protocollo per l’isolamento della microglia da diverse regioni sezionate di un emisfero cerebrale adulto, seguito dalla preparazione della libreria semiautomatica per il sequenziamento profondo dell’RNA unicellulare di trascrittomi a lunghezza intera. Questo metodo aiuterà a chiarire l’eterogeneità funzionale della microglia in salute e malattia.
Come macrofagi residenti nel sistema nervoso centrale, microglia controllano attivamente lo sviluppo cerebrale e l’omeostasi, e le loro disfunzioni possono guidare le malattie umane. Sono stati compiuti notevoli progressi per scoprire le firme molecolari della microglia omeostatica e le alterazioni della loro espressione genica in risposta agli stimoli ambientali. Con l’avvento e la maturazione delle metodologie genomiche unicellulari, è sempre più riconosciuto che la microglia eterogina può essere alla base dei diversi ruoli che svolgono in diverse condizioni di sviluppo e patologiche. Un’ulteriore dissezione di tale eterogeneità può essere ottenuta attraverso un isolamento efficiente delle microglia da una determinata regione di interesse, seguito da una profilazione sensibile delle singole cellule. Qui, forniamo un protocollo dettagliato per il rapido isolamento della microglia da diverse regioni del cervello in un singolo emisfero certo adulto. Dimostriamo anche come utilizzare queste microglia ordinate per il sequenziamento profondo dell’RNA a cellule a base di piastre. Discutiamo l’adattabilità di questo metodo ad altri scenari e forniamo linee guida per migliorare il sistema per accogliere studi su larga scala.
Le microglia, che rappresentano il 5%-10% di tutte le cellule neurali, sono macrofagi residenti sparsi in tutto il sistema nervoso centrale (SNC)1. Protetto dietro barriera emato-encefalica, microglia tipica in un cervello adulto sano contengono molti processi fini che si estendono rapidamente e si ritraggono per interagire con i neuroni e altre cellule gliali nel parenchyma. La microglia può anche adottare la morfologia ameboide associata ad una maggiore funzione fagocitica durante specifiche fasi di sviluppo o su sfide immunitarie in lesioni e malattie1,2,3,4. Recenti scoperte entusiasmanti hanno chiaramente dimostrato che le microglia non sono affatto astanti passivi a segnali derivati dal cervello o patologici, ma svolgono un ruolo fondamentale nel controllo dello sviluppo cerebrale e dell’omeostasi, ad esempio, sostenendo la sopravvivenza neuronale, potando sinapsi immature, promuovendo la differenziazione delle cellule lignaggio oligodocito e l’asgiogenesi1 . Man mano che le funzioni della microglia sono chiarite, l’eccitazione è ulteriormente alimentata da studi di genetica umana, che hanno dimostrato che molti geni del rischio di malattie neurodegenerative, come TREM2, sono prevalentemente o esclusivamente espressi da microglia5,6,7. Data la loro importanza nello sviluppo e nei plausibili ruoli guidati dalle malattie, recentemente è stato compiuto un enorme sforzo verso la nostra comprensione della regolazione genica microgliale e della funzione nella speranza di trovare nuovi bersagli terapeutici per le malattie neurodegenerative1,8.
Il sequenziamento dell’RNA (RNA-seq) consente una caratterizzazione imparziale dell’espressione genica specifica del tipo di cellula, che a sua volta guida gli scienziati a studiare le funzioni geniche nelle reti cellulari dense7. L’RNA-seq era stato fatto per lo più su campioni sfusi, portando alla scoperta di una firma del gene microgliale omeostatica che li distingue da altre cellule neurali e immunitarie9. Tuttavia, un tale approccio potrebbe trascurare le differenze molecolari e funzionali tra le microglia, in particolare quelle temporanee presenti in fase di sviluppo o associate all’invecchiamento e alla malattia. Infatti, RNA-seq unicellulare (scRNA-seq) offre la sensibilità e la risoluzione che hanno rivoluzionato il campo rivelando l’eterogeneità della microglia precedentemente sottovalutata in una varietà di contesti2,3,10. Inoltre, a causa della presenza di altre cellule immunitarie simili all’interfaccia di circolazione del CNS, scRNA-seq fornisce informazioni che aiutano la progettazione di nuovi strumenti per separare e sezionare funzionalmente queste cellule correlate con poca conoscenza precedente2,11.
È stata inventata una vasta gamma di piattaforme scRNA-seq, ognuna adatta per determinate applicazioni12. In generale, i metodi basati sulle goccioline, come 10x Genomica, sono più elevati in termini di produttività con (decine di) migliaia di cellule sequenziate in ogni esecuzione e sono meno selettivi per l’input che può contenere popolazioni di cellule miste che richiedono un’ampia categorizzazione. I metodi a base di piastre forniscono una maggiore sensibilità e profondità di lettura13,14, di solito mirando a popolazioni specifiche dallo smistamento delle cellule per rivelare sottili differenze o trascrizioni rare. Data la piccola percentuale di cellule microgliali, in particolare quelle sottopopolazioni associate allo sviluppo o alla malattia, tra tutti i tipi di cellule SNC, è spesso auspicabile isolare la microglia da una specifica regione di interesse e ottenere informazioni trascrittomiche profonde e complete per comprenderne l’eterogeneità.
Qui, forniamo dettagli su come isolare microglia da diverse regioni del cervello del topo sezionate da un singolo emisfero, che vengono utilizzate per l’RNA-seq a singola cellula (o alla rinfusa) seguendo una procedura di preparazione della libreria semi-automatica basata su lamiere. L’altro emisfero può quindi essere utilizzato per la convalida istologica. Semplificato da un metodoprecedentementepubblicato 9 , questo protocollo di isolamento mira a massimizzare la resa da piccole quantità di materiali di partenza, e nel frattempo mantenere profili di espressione genica microgliale endogeni. Utilizziamo lo smistamento cellulare attivato dalla fluorescenza (FACS) per arricchire la microglia (o altre cellule immunitarie correlate di interesse) in piastre di 96 pozze e diimentare i volumi di reagenti per la preparazione della biblioteca al fine di aumentare la produttività. Mettiamo in evidenza questa piattaforma scRNA-seq sensibile, anche se possono essere applicate altre strategie basate su piastre. Questo metodo può essere facilmente adattato per isolare microglia da altri tessuti sezionati, come lesioni o foci di malattia, e l’età del topo può variare in quasi tutti gli stadi postnatali. L’isolamento efficiente della microglia regionale per gli studi sulla trascrittomica a una cellula faciliterà una migliore comprensione delle loro funzioni in materia di salute e malattia.
Microglia interagiscono attivamente con altri tipi di cellule nel SNC, e sono molto sensibili agli stimoli ambientali. Al fine di ridurre al minimo le risposte infiammatorie e i cambiamenti aberranti nella loro espressione genica durante il processo di isolamento, questo protocollo è stato semplificato da un metodoprecedentementepubblicato 9 ed è ora adatto per isolare la microglia da più regioni di un singolo emisfero cerebrale del topo in parallelo. I tessuti e i reagenti sono tenuti a temper…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Mariko L. Bennett, Liana Nicole Bonanno e Spyros Darmanis per il loro aiuto durante lo sviluppo di questo protocollo. Ringraziamo anche lo Stanford Shared FACS Facility, in particolare Meredith Weglarz e Lisa Nichols; Yen Tran, Michael Eckart di Stanford Protein and Nucleic Acid Facility (PAN) per il loro grande supporto per le riprese. Questo lavoro è finanziato dalla Fondazione JPB e dalla Fondazione Vincent J. Coates.
5 M Betaine | Sigma-Aldrich | Cat# B0300-5VL | |
10 mM dNTP mix | Thermo Fisher Scientific | Cat# R0192 | |
0.5 M EDTA, pH 8.0 | Thermo Fisher Scientific | Cat# 15575020 | |
10X Hanks’ Balanced Salt Solution | Thermo Fisher Scientific | Cat# 14185-052 | |
1 M HEPES | Thermo Fisher Scientific | Cat# 15630080 | |
1X KAPA HIFI Hotstart Master Mix | Kapa Biosciences | Cat# KK2602 | |
5 mL Round Bottom Polystyrene Tube, with Cell Strainer Cap | Corning | Cat# 352235 | |
AATI, High Sensitivity NGS Fragment Analysis Kit (1 bp – 6,000 bp) | Advanced Analytical | Cat# DNF-474-1000 | |
Bovine Serum Albumin | Sigma Aldrich | Cat# A8806 | |
DNase I | Worthington | Cat# LS002007 | Working solution: 12500 units/ml |
DTT, Molecular Grade | Promega | Cat# P1171 | |
ERCC RNA Spike-In Mix | Thermo Fisher Scientific | Cat# 4456740 | |
Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | Cat# 10437-028 | |
Illumina XT Index Kit v2 Set A (96 indexes) | Illumina | Cat# FC-131-2001 | |
Illumina XT Index Kit v2 Set B (96 indexes) | Illumina | Cat# FC-131-2002 | |
Illumina XT Index Kit v2 Set C (96 indexes) | Illumina | Cat# FC-131-2003 | |
Illumina XT Index Kit v2 Set D (96 indexes) | Illumina | Cat# FC-131-2004 | |
Lambda Exonuclease (5 U/μl) | New England BioLabs | Cat# M0262S | |
Mouse Fc block | BD Pharmingen | Cat# 553142 | |
Myelin removal beads | Miltenyl Biotec | Cat# 130-096-433 | |
Nextera XT DNA Sample Prep Kit | Illumina | Cat# FC-131-1096 | |
NextSeq 500/550 High Output Kit v2.5 (150 Cycles) | Illumina | Cat# 20024907 | |
PBS (10X), pH 7.4 | Thermo Fisher Scientific | Cat# 70011044 | |
PCRClean DX beads | Aline Biosciences | Cat# C-1003-50 | |
Propidium Iodide | Thermo Fisher Scientific | Cat# P3566 | Staining: 1:1000 |
Qubit dsDNA HS Assay Kit | Thermal Fisher Scientific | Cat# Q32851 | |
Rat monoclonal anti mouse/human CD11b, Brilliant Violet 421 (clone M1/70) | BioLegend | Cat# 101236; RRID: AB_11203704 | Staining: 1:300 |
Rat monoclonal anti mouse CD45, PE/Cy7 (clone 30-F11) | Thermo Fisher Scientific | Cat# 25-0451-82; RRID: AB_469625 | Staining: 1:300 |
Recombinant RNase Inhibitor | Takara Bio | Cat# 2313B | |
SMARTScribe Reverse Transcriptase (100 U/μl) | Clontech | Cat# 639538 | Containing 5x First strand buffer |
Oligonucleotides | |||
0.1 μM ISPCR Oligo: 5' – AAGCAGTGGTATCAA CGCAGAGT-3' |
(Picelli et al., 2014) | ||
Oligo-dT30VN primer: 5' – AAGCAGTGGTATCAACGCA GAGTACT 30 VN-3' |
(Picelli et al., 2014) | ||
TSO 5' – AAGCAGTGGTATCAACGCAGA GTACATrGrG+G-3' ("r" is forribobases and "+" is for an LNA base) |
(Picelli et al., 2014) | ||
Solutions | |||
FACS buffer | Recipe: sterile-filtered 1% FBS, 2 mM EDTA, 25 mM HEPES in 1X PBS | ||
MCS buffer | Recipe: sterile-filtered 0.5% BSA, 2 mM EDTA in 1X PBS | ||
Medium A | Recipe: 15 mM HEPES, 0.5% glucose in 1X HBSS without phenol red | ||
Plates | |||
384-well Rigi-Plate PCR Microplates, Axygen Scientific | VWR | 89005-556 | |
Hard-shell 96-well PCR plates | Bio-Rad | HSP9631 | |
Others | |||
Dumont #55 forceps | Fine Science Tools | 11295-51 | |
Dounce homogenizer, 2 ml | Wheaton | 357422 | |
Large depletion column | Miltenyi Biotec | 130-042-901 | |
Large selection column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
RNAzap | Thermo Fisher Scientific | AM9780 | |
Strainer (70 μm) | Falcon | 352350 | |
Equipment | |||
BD FACSAria II | BD Biosciences | http://www.bdbiosciences.com/ | |
Bioanalyzer | Agilent | 2100 | |
Fragment Analyzer | Agilent | 5300 | |
Mosquito HTS nanoliter pipetting robot | TTP Labtech | https://www.ttplabtech.com/ | |
Qubit 4 Fluorometer | Thermo Fisher Scientific | Q33226 |