Summary

بروتوكول يستند إلى FACS لعزل الحمض النووي الريبي من الخلايا الثانوية للغدد التبعي الذكور Drosophila

Published: September 05, 2019
doi:

Summary

هنا، نقدم بروتوكولا ً لانفصال وفرز خلايا محددة من الغدد التبعية الذكور دروسوفيلا (الخلايا الثانوية) لتسلسل الحمض النووي الريبي وRT-qPCR. يتم تحقيق عزل الخلايا من خلال تنقية FACS للخلايا الثانوية التي تعبر عن GFP بعد عملية فصل متعددة الخطوات التي تتطلب تشريح، والهضم البروتياز والتشتت الميكانيكي.

Abstract

لفهم وظيفة الجهاز، غالباً ما يكون من المفيد فهم دور مجموعات الخلايا المكونة له. لسوء الحظ، فإن ندرة مجموعات الخلايا الفردية غالباً ما تجعل من الصعب الحصول على ما يكفي من المواد للدراسات الجزيئية. على سبيل المثال، الغدة التبعية للجهاز التناسلي الذكور دروسوفيلا يحتوي على نوعين من الخلايا السرية متميزة. تشكل الخلايا الرئيسية 96% من الخلايا السرية للغدة، في حين تشكل الخلايا الثانوية (SC) 4% المتبقية من الخلايا (حوالي 80 خلية لكل ذكر). على الرغم من أن كلا النوعين من الخلايا تنتج مكونات هامة من السائل المنوي، ومن المعروف أن عدد قليل فقط من الجينات تكون محددة لSCs. وقد أعاقت ندرة الـ SCs، حتى الآن، دراسة تحليل النسخ من هذا النوع المهم من الخلايا. هنا، يتم تقديم طريقة تسمح لتنقية SCs لاستخراج الحمض النووي الريبي والتسلسل. يتكون البروتوكول في تشريح الغدد أولا من الذباب التعبير عن مراسل GFP SC محددة ومن ثم إخضاع هذه الغدد لهضم البروتياز والتفكك الميكانيكي للحصول على الخلايا الفردية. بعد هذه الخطوات، يتم فرز الخلايا الفردية والحية، التي تحمل علامة GFP باستخدام فارز الخلايا المنشطة الفلورسنت (FACS) لتنقية RNA. ينتج عن هذا الإجراء RNAs SC محددة من ~ 40 الذكور لكل شرط لRT-qPCR المصب و / أو تسلسل RNA في غضون يوم واحد. تسمح سرعة وبساطة الإجراء بتحديد نسخ العديد من الذبابات المختلفة، من الأنماط الجينية المختلفة أو الظروف البيئية، في فترة قصيرة من الزمن.

Introduction

تتكون الأعضاء من أنواع خلايا متعددة، لكل منها وظائف منفصلة وتعبر في بعض الأحيان عن مجموعات مختلفة إلى حد كبير من الجينات. للحصول على فهم دقيق لكيفية عمل الجهاز، غالباً ما يكون من الضروري دراسة كل نوع خلية متميزة التي تشكل هذا الجهاز. واحدة من الطرق الأساسية المستخدمة لاستكشاف وظيفة ممكنة هو تحليل النسخ. توفر هذه الطريقة القوية لقطة من التعبير الجيني في الخلية، للكشف عن العمليات والمسارات النشطة. ومع ذلك، هذا النوع من التحليل غالباً ما يكون من الصعب على مجموعات الخلايا النادرة التي يجب تنقيتها من الخلايا المجاورة أكثر وفرة بكثير. على سبيل المثال، الغدة التبعية الذكور دروسوفيلا هو جهاز تتكون في المقام الأول من نوعين من الخلايا السرية. وبما أن أندر من نوعي الخلايا لا يشكل سوى 4٪ من خلايا هذه الغدة، لم يتم استخدام تحليل النسخ من نوع الخلية المحددة للمساعدة في تحديد وظيفة هذه الخلايا.

الغدد التبعي (AGs) هي أجهزة الجهاز التناسلي الذكور في الحشرات. وهي مسؤولة عن إنتاج معظم بروتينات السائل المنوي (بروتينات السوائل المنوية (SFPs) وبروتينات الغدة التبعي (ACPs)). ومن المعروف أن بعض هذه SFPs للحث على الاستجابات الفسيولوجية والسلوكية في الإناث التزاوج، وتسمى عادة استجابة ما بعد التزاوج (PMR). وتشمل بعض PMRs: زيادة معدل الإباضة ووضع البيض، وتخزين والإفراج عن الحيوانات المنوية، وتغيير في النظام الغذائي للإناث، وانخفاض في تقبل الإناث إلى الذكور التودد الثانوي2. وبما أن الحشرات تؤثر على العديد من القضايا المجتمعية الرئيسية من الصحة البشرية (كناقلات للأمراض الفتاكة) إلى الزراعة (يمكن أن تكون الحشرات آفات، ومع ذلك فهي حاسمة بالنسبة للتلقيح ونوعية التربة)، فإن فهم تكاثر الحشرات هو مجال هام من مجالات البحث. وقد تقدمت دراسة AGs وACPs بشكل ملحوظ مع الكائن الحي النموذجي Drosophila melanogaster. وقد أبرزت هذه الدراسات دور AGs وبعض البروتينات الفردية التي تنتجها في خلق PMR، مما يؤثر على العمل في الأنواع الأخرى مثل ناقلات المرض Aedes aegypti3،4، وغيرها من الحشرات1 ،5. وعلاوة على ذلك، كما تفرز AGs مكونات السائل المنوي1،6 وغالبا ما يعتقد أنها التناظرية الوظيفية للغدة البروستاتا الثدييات والحويصلة المنوية. هذا التشابه وظيفة جنبا إلى جنب مع أوجه التشابه الجزيئي بين اثنين من أنواع الأنسجة، جعلت من AGs نموذجا للغدة البروستاتا في الذباب7.

داخل الذكور دروسوفيلا، وهناك اثنين من الفصوص من الغدد التبعي. يمكن النظر إلى كل فص على أنه هيكل يشبه الكيس يتكون من طبقة أحادية من الخلايا السرية المحيطة بالتجويف المركزي، وملفوفة بعضلات ناعمة. كما ذكر أعلاه، هناك نوعان من الخلايا السرية المورفولوجية والتنموية والمتميزة وظيفيا ً التي تشكل هذه الغدة: الخلايا الرئيسية على شكل مضلع (تشكل حوالي 96٪ من الخلايا)، والخلايا الثانوية المستديرة الأكبر (SC) (تشكل 4٪ المتبقية من الخلايا، أو حوالي 40 خلية لكل فص). وقد تبين أن كلا النوعين من الخلايا ينتجان مجموعات متميزة من الـ ACPs للحث على وجود التصوير بالرنين المغناطيسي والحفاظ عليه. معظم البيانات التي تم الحصول عليها حتى الآن تسليط الضوء على دور بروتين واحد في إثارة معظم السلوكيات المميزة للPMR. هذا البروتين، الببتيد الجنس، هو صغير، 36 الببتيد الأحماض الأمينية التي تفرزها الخلايا الرئيسية8،9،10. على الرغم من أن الببتيد الجنس يبدو أن تلعب دورا رئيسيا في PMR، ACPs الأخرى، التي تنتجها كل من الخلايا الرئيسية والثانوية، كما تبين أن تؤثر على جوانب مختلفة من PMR11،12،13،14 ،15،16،17. على سبيل المثال، استنادا إلى معرفتنا الحالية، يبدو أن SCs، عن طريق البروتينات التي تنتجها، مطلوبة لإدامة إشارة SP بعد اليوم الأول18.

وبالنظر إلى ندرة SCs (80 خلية فقط لكل ذكر)، فإن كل معرفتنا بهذه الخلايا والبروتينات التي تنتجها تأتي من علم الوراثة ونهج المرشح. وحتى الآن، لم يُثبت سوى قائمة صغيرة نسبياً من الجينات أنها خاصة بشركة SC. وتشمل هذه القائمة البروتين homeodomain المعيبة proventriculus (Dve)19, وlncRNA MSA20, Rab6, 7, 11 و 1921, CG1656 و CG1757511, 15،21 وعامل النسخ homeobox البطن-B (عبد الب)18. في السابق، أظهرنا أن متحولة ناقصة لكل من التعبير عن عبد الب وMSA lncRNA في الخلايا الثانوية(iab-6cocuD1 متحولة) تقصير طول PMR من ~ 10 أيام إلى يوم واحد فقط12 , 18 سنة , 20.ويبدو أن هذا النمط الظاهري هو سبب التخزين غير السليم من SP في الجهاز التناسلي الأنثوي12,18,20. على المستوى الخلوي، تظهر الخلايا الثانوية لهذا المتحولمورولوجيا غير طبيعية، وفقدان هياكلها المميزة مثل الفراغول18،20،21. باستخدام هذا الخط متحولة، حاولنا سابقا لتحديد الجينات المشاركة في وظيفة SC عن طريق مقارنة ملامح النسخ من AGs كله من نوع البرية أو الغدد التبعي متحولة12. أيضا، وأظهرت مختبرات أخرى أن عدد SC، مورفولوجيا ومحتوى vacuolar تعتمد على النظام الغذائي الذكور، وحالة التزاوج والعمر21،25،26.

وعلى الرغم من إحراز تقدم إيجابي باستخدام هذه النهج، فإن نسخة كاملة من اللجنة لم تتحقق بعد. ندرة هذه الخلايا في هذا الجهاز جعلت من الصعب التقدم أكثر حتى من خلايا النوع البرية. لاختبار التعبير الجيني، فإن التغيرات في هذه الخلايا بعد محفزات بيئية معينة ستكون أكثر صعوبة. وهكذا، هناك حاجة إلى طريقة لعزل وتنقية الحمض النووي الريبي SC التي كانت سريعة وبسيطة بما فيه الكفاية لأداء في ظل خلفيات وراثية مختلفة والظروف البيئية.

كل من الجينات عبد-B وMSA تتطلب محسن 1.1 كيلو بايت محددة من مجمع Drosophila Bithorax (يسمى محسن D1) للتعبير عنها في SCs18,20. وقد تم استخدام هذا محسن سابقا لإنشاء برنامج تشغيل GAL4 التي، عند ربطها UAS-GFP،قادرة على دفع تعبير GFP قوية على وجه التحديد في SCs. وهكذا، استخدمنا هذا الخط كأساس لبروتوكول FACS لعزل هذه الخلايا من كل من النوع البري وiab-6cocuD1 AGs). كما iab-6cocuD1 متحولة SCuD1 عرض مورفولوجيا الخلوية المختلفة، ونحن نظهر أن هذا البروتوكول يمكن استخدامها لعزل الخلايا لتحديد النسخ من هذا النوع من الخلايا النادرة في ظل ظروف مختلفة إلى حد كبير.

Protocol

1. خطوط دروسوفيلا المستخدمة وجمع الذكور لهذا البروتوكول، استخدم الذكور التعبير GFP في SCs وليس الخلايا الرئيسية. هنا، يتم استخدام برنامج تشغيل عبد الب-GAL4 (الموضح في المرجع18)،مع UAS-GFP (على كروموسوم 2). كما يمكن استخدام برامج التشغيل المناسبة الأخرى. لعزل SCs في ظل ظ…

Representative Results

البروتوكول المعروض هنا يمكّن أحد التجارب من عزل الخلايا الثانوية عن الغدد التبعية الذكور ية دروسوفيلا واستخراج الحمض النووي الريبي في غضون يوم واحد(الشكل 1). نحن نستخدم بناء عبد-B-GAL4 18 لتسمية الخلايا…

Discussion

طرق انفصال الخلايا من أنسجة دروسوفيلا مثل الأقراص التخيلية هي بالفعل وصف23. فشلت محاولاتنا ببساطة لاستخدام هذه الإجراءات على الغدد الملحقة، وتشجيعنا على تطوير هذا البروتوكول الجديد. وكان الهضم البروتياز وtrituration الميكانيكية الخطوات الحاسمة ونحن troubleshot لنجاح الإجراء، وب?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ونحن ممتنون لأعضاء مختبر “كارش”، وللتشكيل الأنسيولوجي iGE3، والمرفق الأساسي لـ “فلو سيتومتري” التابع لجامعة جنيف، وللدكتور جان بيير أوبري – لاشيناي الذي وضع البروتوكول الخاص بـ FACS. نشكر لوكا ستيكلي على مساعدته في تصور القراءات على IGV. نشكر أنفسنا على الإذن اللطيف لإعادة استخدام الأرقام، والمحررين لدفعتنا إلى أن نكون مبدعين مع الكتابة.

تم تمويل هذا البحث من قبل دولة جنيف (CI، RKM، FK)، والصندوق الوطني السويسري للبحوث (www.snf.ch) (FK وRKM) والتبرعات من مؤسسة كلاراز (FK).

Materials

24-wells Tissue Culture plate VWR 734-2325
Binocular microscope for dissection
Binocular with light source for GFP
Bunsen
Draq7 0.3 mM BioStatus DR71000
Plastic microtubes 1.5 mL Eppendorf
FACS Beckman Coulter MoFlo Astrios
Fine dissection forceps
Foetal bovine serum Gibco 10270-106 heat inactivated prior to use
Glass dishes for dissection
Ice bucket
ImProm-II Reverse Transcription System Promega A3800
MasterPure RNA Purification Kit Epicentre MCR85102
Nextera XT kit illumina https://emea.illumina.com/products/by-type/sequencing-kits/library-prep-kits/nextera-xt-dna.html
P1000 Gilson
P20 Gilson
P200 Gilson
Papain 50U/mL stock
PBS home made
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063
PolydT primers
Random hexamer primers
RNA 6000 Pico kit Agilent
Schneider’s Drosophila medium Gibco 21720-001
SMARTer cDNA synthesis kit Takara https://www.takarabio.com/products/cdna-synthesis/cdna-synthesis-kits/smarter-cdna-synthesis-kits
SYBR select Master mix for CFX applied biosystems 4472942
Thermo Shaker Hangzhou Allsheng intruments MS-100
Tipone 1250 μl graduated tip Starlab S1161-1820
Tipone 200 μl bevelled tip Starlab S1161-1800
TrypLE Express Enzyme Gibco 12604013
Vortex

References

  1. Avila, F. W., Sirot, L. K., LaFlamme, B. A., Rubinstein, C. D., Wolfner, M. F. Insect seminal fluid proteins: identification and function. Annual Review of Entomology. 56, 21-40 (2011).
  2. Carmel, I., Tram, U., Heifetz, Y. Mating induces developmental changes in the insect female reproductive tract. Current Opinion in Insect Science. 13, 106-113 (2016).
  3. League, G. P., Baxter, L. L., Wolfner, M. F., Harrington, L. C. Male accessory gland molecules inhibit harmonic convergence in the mosquito Aedes aegypti. Current Biology. 29 (6), R196-R197 (2019).
  4. Degner, E. C., et al. Proteins, Transcripts, and Genetic Architecture of Seminal Fluid and Sperm in the Mosquito Aedes aegypti. Molecular & Cellular Proteomics. 18 (Suppl 1), S6-S22 (2019).
  5. Wedell, N. Female receptivity in butterflies and moths. Journal of Experimental Biology. 208 (Pt 18), 3433-3440 (2005).
  6. Laflamme, B. A., Wolfner, M. F. Identification and function of proteolysis regulators in seminal fluid. Molecular Reproduction and Development. 80 (2), 80-101 (2013).
  7. Wilson, C., Leiblich, A., Goberdhan, D. C., Hamdy, F. The Drosophila Accessory Gland as a Model for Prostate Cancer and Other Pathologies. Current Topics in Developmental Biology. 121, 339-375 (2017).
  8. Kubli, E., Bopp, D. Sexual behavior: how Sex Peptide flips the postmating switch of female flies. Current Biology. 22 (13), R520-R522 (2012).
  9. Kubli, E. Sex-peptides: seminal peptides of the Drosophila male. Cellular and Molecular Life Sciences. 60 (8), 1689-1704 (2003).
  10. Liu, H., Kubli, E. Sex-peptide is the molecular basis of the sperm effect in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (17), 9929-9933 (2003).
  11. Ram, K. R., Wolfner, M. F. Sustained post-mating response in Drosophila melanogaster requires multiple seminal fluid proteins. PLoS Genetics. 3 (12), e238 (2007).
  12. Sitnik, J. L., Gligorov, D., Maeda, R. K., Karch, F., Wolfner, M. F. The Female Post-Mating Response Requires Genes Expressed in the Secondary Cells of the Male Accessory Gland in Drosophila melanogaster. Génétique. 202 (3), 1029-1041 (2016).
  13. Avila, F. W., Wolfner, M. F. Acp36DE is required for uterine conformational changes in mated Drosophila females. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (37), 15796-15800 (2009).
  14. Adams, E. M., Wolfner, M. F. Seminal proteins but not sperm induce morphological changes in the Drosophila melanogaster female reproductive tract during sperm storage. Journal of Insect Physiology. 53 (4), 319-331 (2007).
  15. Singh, A., et al. Long-term interaction between Drosophila sperm and sex peptide is mediated by other seminal proteins that bind only transiently to sperm. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 102, 43-51 (2018).
  16. Avila, F. W., Wolfner, M. F. Cleavage of the Drosophila seminal protein Acp36DE in mated females enhances its sperm storage activity. Journal of Insect Physiology. 101, 66-72 (2017).
  17. Chapman, T., Davies, S. J. Functions and analysis of the seminal fluid proteins of male Drosophila melanogaster fruit flies. Peptides. 25 (9), 1477-1490 (2004).
  18. Gligorov, D., Sitnik, J. L., Maeda, R. K., Wolfner, M. F., Karch, F. A novel function for the Hox gene Abd-B in the male accessory gland regulates the long-term female post-mating response in Drosophila. PLoS Genetics. 9 (3), e1003395 (2013).
  19. Minami, R., et al. The homeodomain protein defective proventriculus is essential for male accessory gland development to enhance fecundity in Drosophila. PLoS One. 7 (3), e32302 (2012).
  20. Maeda, R. K., et al. The lncRNA male-specific abdominal plays a critical role in Drosophila accessory gland development and male fertility. PLoS Genetics. 14 (7), e1007519 (2018).
  21. Prince, E., et al. Rab-mediated trafficking in the secondary cells of Drosophila male accessory glands and its role in fecundity. Traffic. 20 (2), 137-151 (2019).
  22. Robinson, M. D., Oshlack, A. A scaling normalization method for differential expression analysis of RNA-seq data. Genome Biology. 11 (3), R25 (2010).
  23. Khan, S. J., Abidi, S. N., Tian, Y., Skinner, A., Smith-Bolton, R. K. A rapid, gentle and scalable method for dissociation and fluorescent sorting of imaginal disc cells for mRNA sequencing. Fly (Austin). 10 (2), 73-80 (2016).
  24. Corrigan, L., et al. BMP-regulated exosomes from Drosophila male reproductive glands reprogram female behavior. Journal of Cell Biology. 206 (5), 671-688 (2014).
  25. Leiblich, A., et al. Bone morphogenetic protein- and mating-dependent secretory cell growth and migration in the Drosophila accessory gland. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (47), 19292-19297 (2012).
  26. Kubo, A., et al. Nutrient conditions sensed by the reproductive organ during development optimize male fecundity in Drosophila. Genes to Cells. 23 (7), 557-567 (2018).
  27. Immarigeon, C., Karch, F., Maeda, R. K. FACS-based isolation and RNA extraction of Secondary Cells from the Drosophila male Accessory Gland. bioRxiv. , 630335 (2019).

Play Video

Citer Cet Article
Immarigeon, C., Karch, F., Maeda, R. K. A FACS-based Protocol to Isolate RNA from the Secondary Cells of Drosophila Male Accessory Glands. J. Vis. Exp. (151), e60218, doi:10.3791/60218 (2019).

View Video