Summary

Separação de Epiderme de Rato e Derme com Termolise para Detectar mRNA inflamatório específico do local e proteína

Published: September 29, 2021
doi:

Summary

Apresentado aqui é um protocolo para a separação da epiderme da derme para avaliar a produção de mediadores inflamatórios. Após a inflamação, a epiderme da pata traseira de rato é separada da derme por termolysina a 4 °C. A epiderme é então usada para análise de mRNA por RT-PCR e avaliação de proteínas por mancha ocidental e imunohistoquímica.

Abstract

Técnicas fáceis de usar e baratas são necessárias para determinar a produção específica do local de mediadores inflamatórios e neurotrophins durante lesões, inflamações e/ou sensibilização da pele. O objetivo deste estudo é descrever um protocolo de separação epidérmico-dérmica usando termolysina, uma proteína que está ativa a 4 °C. Para ilustrar este procedimento, os ratos Sprague Dawley são anestesiados, e as patas traseiras direitas são injetadas com carrageenan. Seis e doze horas após a injeção, ratos com inflamação e ratos ingênuos são eutanizados, e um pedaço de pata traseira, pele glabrous é colocada no frio Dulbecco’s Modified Eagle Medium. A epiderme é então separada na membrana do porão da derme por termolysina em PBS com cloreto de cálcio. Em seguida, a derme é protegida por fórceps de microdisseção, e a epiderme é gentilmente provocada. A coloração azul toluidina das seções teciduais mostra que a epiderme é separada limpamente da derme na membrana do porão. Todas as camadas celulares queratinócitos permanecem intactas, e as cristas epidérmicas de rete, juntamente com recuos de papilas dérmicas são claramente observadas. O RT-PCR qualitativo e em tempo real é usado para determinar o fator de crescimento nervoso e os níveis de expressão interleucina-6. Manchas ocidentais e imunohistoquímica são finalmente realizadas para detectar quantidades de fator de crescimento nervoso. Este relatório ilustra que a digestão da termolise fria é um método eficaz para separar a epiderme da derme para avaliação de alterações de mRNA e proteínas durante a inflamação.

Introduction

A avaliação de mediadores inflamatórios e fatores neurotróficos da pele pode ser limitada devido à heterogeneidade dos tipos celulares encontrados na derme inflamada e epiderme1,2,3. Várias enzimas, técnicas químicas, térmicas ou mecânicas envolvendo separação das duas camadas ou para a realização da dissociação celular para avaliação foram revisadas recentemente4. Ácido, álcali, sal neutro e calor podem dividir a epiderme da derme rapidamente, mas o inchaço celular e extracelular geralmente ocorre5,6. Tripo, pancreatina, descamefástase, keratinase, colagenase, pronase, dispase e termolise são enzimas que foram usadas para separação epidérmico-dérmica4,7. Trippsina e outras enzimas proteolíticas de larga escala estão ativas a 37-40 °C, mas devem ser monitoradas cuidadosamente para evitar a dissociação de camadas epidérmicas. Dispase corta a epiderme na lamina densa, mas requer 24h para separação no frio4,8 ou pontos de tempo mais curtos a 37 °C4,9. Uma característica limitante de todas essas técnicas é a potencial interrupção da morfologia tecidual e perda de integridade de mRNA e proteína.

Para manter a integridade do mRNA e da proteína, um método de separação da pele deve ser realizado no frio por um curto período de tempo. Na avaliação das técnicas de separação da pele para estudos de inflamação, a termolise é uma enzima eficaz para separar a epiderme da derme a temperaturas frias4. A termolise está ativa a 4 °C, corta hemidesmosmosomos epidérmicos da lamina lucida, e separa a epiderme da derme dentro de 1-3 h4,8,10. O objetivo deste relatório é otimizar o uso de termolysina para separação de epiderme inflamada de ratos inflamados da derme para detectar níveis de mRNA e proteína para mediadores inflamatórios e fatores neurotróficos. Vários relatórios preliminares foram apresentados11,12,13,14,15. O objetivo deste manuscrito é descrever uma técnica ideal de separação da pele utilizando termolysina e demonstrar a detecção de 1) marcadores de inflamação, 2) interleucina-6 (IL-6) mRNA, e 3) mRNA e proteína na epiderme de ratos com inflamação induzida por carrageenano (C-II)16,17. Um relatório preliminar usando o modelo adjuvante completo da Freund indica que os níveis de MRNA e proteína ngf aumentam precocemente durante a inflamação15. Em camundongos, a sensibilização da pele com a aplicação tópica da oxazolona causa um aumento precoce no IL-6 mRNA usando a hibridização in situ36. Tanto o IL-6 quanto o NGF foram implicados em C-II18,19, mas não houve relatos que descrevam níveis de mRNA ou proteína para IL-6 ou NGF especificamente da epiderme durante os estágios agudos de C-II.

A técnica de termolise é barata e simples de executar. Além disso, a separação termolísina da epiderme da derme permite a análise mRNA, western blot e imunohistoquímica de mediadores inflamatórios e fatores neurotróficos durante o processo de inflamação15. Os pesquisadores devem ser capazes de usar facilmente essa técnica em estudos pré-clínicos e clínicos de inflamação cutânea.

Protocol

Este protocolo segue as diretrizes de cuidados com animais do Oklahoma State University Center for Health Sciences IACUC (#2016-03). 1. Inflamação induzida por carrageenano (C-II) Anestesize ratos machos e/ou fêmeas Sprague Dawley (200-250 g; 8-9 semanas de idade) com isoflurane (ou anestésico injetável). Verifique a profundidade da anestesia tocando a córnea e apertando levemente a pata traseira esquerda. Quando o animal estiver apropriadamente anestesiado, nenhuma re…

Representative Results

A injeção de carrageenano na pata traseira do rato causou sintomas clássicos de inflamação, como vermelhidão e edema16,17. O inchaço da pata traseira foi medido com pinças mecânicas20. Um valor de linha de base da espessura da pata foi obtido para cada rato antes do tratamento carrageenano e medido novamente às 6h e 12 h. A espessura da pata aumentou significativamente em relação aos valores da linha de base<strong class="xfig"…

Discussion

O estudo determinou que a epiderme da pele de pata traseira de rato foi facilmente separada da derme usando termolise (0,5 mG/mL) em PBS com cloreto de cálcio de 1 mM a 4 °C por 2,5 h. A avaliação histológica indicou que a epiderme foi separada da derme na membrana do porão e que as cristas de rete epidérmicas estavam intactas. Termolysina é um metalloendopeptidase extracelular produzido por Gram-positivo (Geo)Bacillus thermoproteolyticus24. Sua atividade é estável a 4 …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O financiamento para esta pesquisa foi fornecido pelos Institutos Nacionais de Saúde NIH-AR047410 (KEM)

Materials

λ-carrageenan Millipore Sigma 22049 Subcutaneous injection of carrageenan induces inflammation
7500 Fast Real-Time PCR System Thermo Fisher Scientific 4351107 For RT-PCR analysis
Calcium chloride (CaCl2), anhydrous Millipore Sigma 499609 Prevents autolysis of thermolysin
Crystal Mount Aqueous Mounting Medium Millipore Sigma C0612 Aqueous mounting medium after toluidine blue staining
Donkey anti-Mouse Alexa Fluor 555 Thermo Fisher Scientific A-31570 Secondary antibody for immunohistochemistry
Donkey anti-Rabbit IgG, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-21206 Secondary antibody for immunohistochemistry
Dulbecco's Modified Eagle Medium Thermo Fisher Scientific 11966-025 To maintain tissue integrity
Ethylenediaminetetraacetic acid Millipore Sigma E6758 Stops thermolysin reaction
Moloney Murine Leukemia Virus (M-MLV) Reverse transcriptase Promega M1701 For complementary DNA synthesis
Mouse anti-NGF Antibody (E-12) Santa Cruz Biotechnology sc-365944 For neurotrophin immunohistochemistry
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific P36930 To retard immunofluorescence quenching
Rabbit anti-PGP 9.5 Cedarlane Labs CL7756AP For intraepidermal nerve staining
SAS Sprague Dawley Rat Charles River Strain Code 400 Animal used for inflammation studies
Shandon M-1 Embedding Matrix Thermo Fisher Scientific 1310TS Tissue embedding matrix for tinctorial- and immuno-histochemistry
SimpliAmp Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific A24811 For RT-PCR analysis
SYBR Select Master Mix Thermo Fisher Scientific 4472908 For RT-PCR analysis
Thermolysin Millipore Sigma T7902 From Geobacillus stearothermophilus
Toluidine Blue Millipore Sigma 89640 For tinctorial staining for brightfield microscopy
TRIzol Reagent Thermo Fisher Scientific 15596026 For total RNA extraction for RTPCR

References

  1. Choi, J. E., Di Nardo, A. Skin neurogenic inflammation. Seminars in Immunopathology. 40 (3), 249-259 (2018).
  2. Manti, S., Brown, P., Perez, M. K., Piedimonte, G. The role of neurotrophins in inflammation and allergy. Vitamins and Hormones. 104, 313-341 (2017).
  3. Schäkel, K., Schön, M. P., Ghoreschi, K. Pathogenesis of psoriasis. Zeitschrift für Dermatologie, Venerologie, und verwandte Gebiete. 67 (6), 422-431 (2016).
  4. Zou, Y., Maibach, H. I. Dermal-epidermal separation methods: research implications. Archives of Dermatological Research. 310 (1), 1-9 (2018).
  5. Baumberger, J. Methods for the separation of epidermis from dermis and some physiologic and chemical properties of isolated epidermis. Journal of the National Cancer Institute. 2, 413-423 (1942).
  6. Felsher, Z. Studies on the adherence of the epidermis to the corium. Journal of Investigative Dermatology. 8, 35-47 (1947).
  7. Einbinder, J. M., Walzer, R. A., Mandl, I. Epidermal-dermal separation with proteolytic enzymes. Journal of Investigative Dermatology. 46, 492-504 (1966).
  8. Rakhorst, H. A., et al. Mucosal keratinocyte isolation: a short comparative study on thermolysin and dispase. International Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 35 (10), 935-940 (2006).
  9. Tschachler, E., et al. Sheet preparations expose the dermal nerve plexus of human skin and render the dermal nerve end organ accessible to extensive analysis. Journal of Investigative Dermatology. 122 (1), 177-182 (2004).
  10. Walzer, C., Benathan, M., Frenk, E. Thermolysin treatment-a new method for dermo-epidermal separation. Journal of Investigative Dermatology. 92, 78-81 (1989).
  11. Anderson, M. B., Miller, K. E., Schechter, R. Evaluation of rat epidermis and dermis following thermolysin separation: PGP 9.5 and Nav 1.8 localization. Society for Neuroscience Abstract. 584 (9), (2010).
  12. Ibitokun, B. O., Anderson, M. B., Miller, K. E. Separation of corneal epithelium from the stroma using thermolysin: evaluation of corneal afferents. Society for Neuroscience Abstract. , 584 (2010).
  13. Nawani, P., Anderson, M., Miller, K. E. Structure-property relationship of skin. Oklahoma Center for Neuroscience Symposium Abstract. , (2011).
  14. Anderson, M. B., Miller, K. E. Intra-epidermal nerve fiber reconstruction and quantification in three-dimensions. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23 (2017).
  15. Gujar, V. K. E., Miller, K. E. Expression of nerve growth factor in adjuvant-induced arthritis (AIA): A temporal study. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23 (2017).
  16. Vinegar, R., et al. to carrageenan-induced inflammation in the hind limb of the rat. Federation Proceedings. 46 (1), 118-126 (1987).
  17. Fehrenbacher, J. C., Vasko, M. R., Duarte, D. B. Models of inflammation: Carrageenan- or complete Freund’s Adjuvant (CFA)-induced edema and hypersensitivity in the rat. Current Protocols in Pharmacology. , (2012).
  18. Li, K. K., et al. exerts its anti-inflammatory effects associated with suppressing ERK/p38 MAPK and Heme Oxygenase-1 activation in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages and carrageenan-induced mice paw edema. International Immunopharmacology. 54, 366-374 (2018).
  19. Sammons, M. J., et al. Carrageenan-induced thermal hyperalgesia in the mouse: role of nerve growth factor and the mitogen-activated protein kinase pathway. Brain Research. 876 (1-2), 48-54 (2000).
  20. Hoffman, E. M., Miller, K. E. Peripheral inhibition of glutaminase reduces carrageenan induced Fos expression in the superficial dorsal horn of the rat. Neuroscience Letters. 472 (3), 157-160 (2010).
  21. Crosby, H. A., Ihnat, M., Spencer, D., Miller, K. E. Expression of glutaminase and vesicular glutamate transporter type 2 immunoreactivity in rat sacral dorsal root ganglia following a surgical tail incision. Pharmacy and Pharmacology International Journal. 2 (3), 00023 (2015).
  22. Hoffman, E. M., Schechter, R., Miller, K. E. Fixative composition alters distributions of immunoreactivity for glutaminase and two markers of nociceptive neurons Nav1.8 and TRPV1, in the rat dorsal ganglion. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 58 (4), 329-344 (2010).
  23. Hoffman, E. M., Zhang, Z., Schechter, R., Miller, K. E. Glutaminase increases in rat dorsal root ganglion neurons after unilateral adjuvant-induced hind paw inflammation. Biomolecules. 6 (1), 10 (2016).
  24. van den Burg, B., Eijsink, V. Thermolysin and related Bacillus metallopeptidases. Handbook of Proteolytic Enzymes. , 540-553 (2013).
  25. Matthews, B. W. Thermolysin. Encyclopedia of Inorganic and Bioinorganic Chemistry. , (2011).
  26. Hybbinette, S., Boström, M., Lindberg, K. Enzymatic dissociation of keratinocytes from human skin biopsies for in vitro cell propagation. Experimental Dermatology. 8 (1), 30-38 (1999).
  27. Glade, C. P., et al. Multiparameter flow cytometric characterization of epidermal cell suspensions prepared from normal and hyperproliferative human skin using an optimized thermolysin-trypsin protocol. Archives of Dermatological Research. 288 (4), 203-210 (1996).
  28. Sato, J. D., Kan, M. Media for culture of mammalian cells. Current Protocols in Cell Biology. , (2001).
  29. Gragnani, A., Sobral, C. S., Ferreira, L. M. Thermolysin in human cultured keratinocyte isolation. Brazilian Journal of Biology. 67 (1), 105-109 (2007).
  30. Germain, L., et al. Improvement of human keratinocyte isolation and culture using thermolysin. Burns. 19 (2), 99-104 (1993).
  31. Michel, M., et al. Characterization of a new tissue-engineered human skin equivalent with hair. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 35 (6), 318-326 (1999).
  32. Fassina, G., et al. Autolysis of thermolysin. Isolation and characterization of a folded three-fragment complex. European Journal of Biochemistry. 156 (2), 221-228 (1986).
  33. Petho, G., Reeh, P. W. Sensory and signaling mechanisms of bradykinin, eicosanoids, platelet-activating factor, and nitric oxide in peripheral nociceptors. Physiological Reviews. 92 (4), 1699-1775 (2012).
  34. Djouhri, L., et al. Time course and nerve growth factor dependence of inflammation-induced alterations in electrophysiological membrane properties in nociceptive primary afferent neurons. Journal of Neuroscience. 21 (22), 8722-8733 (2001).
  35. Denk, F., Bennett, D. L., McMahon, S. B. Nerve growth factor and pain mechanisms. Annual Review of Neuroscience. 40, 307-325 (2017).
  36. Flint, M. S., Dearman, R. J., Kimber, I., Hotchkiss, S. A. Production and in situ localization of cutaneous tumour necrosis factor alpha (TNF-alpha) and interleukin 6 (IL-6) following skin sensitization. Cytokine. 10 (3), 213-219 (1998).
  37. Crosby, H. A., Ihnat, M., Miller, K. E. Evaluating the toxicity of the analgesic glutaminase inhibitor 6-diazo-5-oxo-L-norleucine in vitro and on rat dermal skin fibroblasts. MOJ Toxicology. 1 (1), 00005 (2015).

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Citer Cet Article
Gujar, V., Anderson, M. B., Miller, K. E., Pande, R. D., Nawani, P., Das, S. Separation of Rat Epidermis and Dermis with Thermolysin to Detect Site-Specific Inflammatory mRNA and Protein. J. Vis. Exp. (175), e59708, doi:10.3791/59708 (2021).

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