a microscopia da localização da único-molécula 3D é utilizada para sondar as posições espaciais e as trajetórias do movimento de proteínas cDNAs etiquetadas em pilhas bacterianas vivas. O protocolo de análise experimental e de dados descrito neste documento determina os comportamentos diffusivos prevalentes de proteínas citosómicas baseadas em trajetórias unimoléculas agrupadas.
A microscopia da localização da único-molécula sonda a posição e os movimentos de moléculas individuais em pilhas vivas com dezenas de definição temporal espacial e milisecond do nanômetro. Estas capacidades fazem a microscopia da localização da único-molécula serida idealmente para estudar funções biológicas do nível molecular em ambientes fisiologicamente relevantes. Aqui, demonstramos um protocolo integrado para aquisição e processamento/análise de dados de rastreamento de molécula única para extrair os diferentes Estados diffusivos que uma proteína de interesse pode expor. Esta informação pode ser usada para quantificar a formação complexa molecular em células vivas. Fornecemos uma descrição detalhada de uma experiência de localização de molécula 3D baseada em câmera, bem como as etapas subseqüentes de processamento de dados que produzem as trajetórias de moléculas individuais. Essas trajetórias são então analisadas por meio de uma estrutura de análise numérica para extrair os Estados difusivos prevalentes das moléculas rotuladas fluorescentamente e a abundância relativa desses Estados. A estrutura de análise é baseada em simulações estocásticas de trajetórias de difusão brownianas intracelulares que são confinadas espacialmente por uma geometria de célula arbitrária. Com base nas trajetórias simuladas, as imagens de molécula única bruta são geradas e analisadas da mesma forma que as imagens experimentais. Dessa forma, as limitações experimentais de precisão e precisão, que são difíceis de calibrar experimentalmente, são explicitamente incorporadas ao fluxo de trabalho de análise. O coeficiente de difusão e as frações populacionais relativas dos Estados diffusivos prevalentes são determinados ajustando-se as distribuições dos valores experimentais utilizando combinações lineares de distribuições simuladas. Nós demonstramos a utilidade de nosso protocolo resolvendo os Estados difusivo de uma proteína que exiba Estados difusivo diferentes em cima de formar complexos do Homo-e do hetero-oligomeric no citosol de um micróbio patogénico bacteriano.
Examinar o comportamento difusivo de biomoléculas fornece a introspecção em suas funções biológicas. Técnicas baseadas em microscopia de fluorescência tornaram-se ferramentas valiosas para observar biomoléculas em seu ambiente de células nativas. A recuperação da fluorescência após o photobranqueamento (Frap) e a espectroscopia da correlação da fluorescência (FCS)1 fornecem comportamentos difusivo Ensemble-calculados. Inversamente, a microscopia da localização da único-molécula permite a observação de moléculas cDNAs etiquetadas individuais com definição espacial e temporal elevada2,3,4. Observar moléculas individuais é vantajoso desde que uma proteína do interesse pode existir em Estados difusivo diferentes. Por exemplo, dois Estados difusivo prontamente distinguíveis surgem quando um regulador transcricional, tal como o cubador em Escherichia coli, difunde livremente no citosol ou se liga a uma seqüência do ADN e se torna imobilizado no temporal da medida5 . Rastreamento de molécula única fornece uma ferramenta para observar esses diferentes Estados diretamente, e análises sofisticadas não são necessárias para resolvê-los. No entanto, torna-se mais desafiador resolver vários Estados diffusivos e suas frações populacionais nos casos em que suas taxas diffusivas são mais semelhantes. Por exemplo, devido à dependência de tamanho do coeficiente de difusão, diferentes Estados de oligomerização de uma proteína se manifestam como diferentes Estados diffusivos6,7,8,9 , 10. esses casos exigem uma abordagem integrada em termos de aquisição, processamento e análise de dados.
Um fator crítico que influencia as taxas difusivo de moléculas citosólico é o efeito do confinamento pelo limite da pilha. As restrições colocadas no movimento molecular por um limite de células bacterianas causam uma taxa de difusão medida das moléculas citosómicas para parecer mais lenta do que se o mesmo movimento tivesse ocorrido em um espaço não confinado. Para moléculas muito lentamente difuso, o efeito do confinamento celular é insignificante devido à falta de colisões com o limite. Nesses casos, pode ser possível resolver com precisão os Estados diffusivos, ajustando as distribuições de deslocamentos moleculares, rou coeficientes de difusão aparente, D *, utilizando modelos analíticos baseados nas equações para o movimento browniano ( difusão aleatória)11,12,13. No entanto, para a difusão rápida de moléculas citosómicas, as distribuições experimentais já não se assemelham àquelas obtidas para o movimento browniano não confinado devido a colisões de moléculas de difusão com os limites das células. Os efeitos de confinamento devem ser contabilizados para determinar com precisão os coeficientes de difusão não confinados das moléculas rotuladas fluorescentamente. Várias abordagens foram recentemente desenvolvidas para dar conta dos efeitos de confinamento (semi-) analiticamente 5,14,15,16 ou numericamente através de simulações de Monte Carlo de Difusão Brownian6,10,16,17,18,19.
Aqui, nós fornecemos um protocolo integrado para coletar e analisar dados da microscopia da localização da único-molécula com um foco particular no seguimento da único-molécula. O objetivo final do protocolo é resolver Estados diffusivos de proteínas citosómicas rotuladas fluorescentamente no interior, neste caso, células bacterianas em forma de haste. Nosso trabalho constrói em um protocolo precedente para o seguimento da único-molécula, em que um polymerase do ADN, PolI, foi mostrado para existir em um estado encadernado e não acoplado do ADN pela análise de difusão20. Aqui, nós expandimos a análise de rastreamento de molécula única para medições 3D e executamos simulações computacionais mais realistas para resolver e quantificar vários Estados diffusivos simultaneamente presentes nas células. Os dados são adquiridos usando um microscópio de fluorescência 3D de super resolução, construído em casa, que é capaz de determinar a posição 3D dos emissores fluorescentes por imagem com a função de propagação de pontos de dupla hélice (dhpsf)21,22. As imagens RAW de molécula única são processadas usando um software escrito personalizado para extrair as localizações de molécula única 3D, que são combinadas em trajetórias de moléculas únicas. Milhares de trajetórias são agrupadas para gerar distribuições de coeficientes de difusão aparente. Em uma etapa final, as distribuições experimentais são encaixadas com distribuições numericamente geradas obtidas através de simulações de Monte-Carlo de movimento browniano em um volume confinado. Nós aplicamos este protocolo para resolver os Estados difusivo do tipo-3 proteína yscq do sistema da secreção em viver Yersinia enterocolitica. Devido à sua natureza modular, nosso protocolo é geralmente aplicável a qualquer tipo de experimento de rastreamento de única molécula ou de partículas únicas em geometrias de células arbitrárias.
Um fator crítico para a aplicação bem sucedida do protocolo apresentado é assegurar-se de que os sinais da único-molécula estejam bem separados de se (isto é, precisam de ser esparsos no espaço e no tempo (Mov. 1 suplementar)). Se houver mais de uma molécula fluorescente em uma célula ao mesmo tempo, então a localização pode ser incorretamente atribuída à trajetória de outras moléculas. Isto é referido como o problema de ligação30. As condições experimentais,…
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos a Alecia Achimovich e Ting Yan pela leitura crítica do manuscrito. Agradecemos a Ed Hall, cientista sênior do grupo de serviços avançados de pesquisa em informática da Universidade da Virgínia, para ajudar na configuração das rotinas de otimização utilizadas neste trabalho. O financiamento para este trabalho foi fornecido pela Universidade de Virginia.
2,6-diaminopimelic acid | Chem Impex International | 5411 | Necessary for growth of Y. enterocolitica cells used. |
4f lenses | Thorlabs | AC508-080-A | f = 80mm, 2" |
514 nm laser | Coherent | Genesis MX514 MTM | Use for fluorescence excitation |
agarose | Inivtrogen | 16520100 | Used to make gel pads to mount liquid bacterial sample on microscope. |
ammonium chloride | Sigma Aldrich | A9434 | M2G ingredient. |
bandpass filter | Chroma | ET510/bp | Excitation pathway. |
Brain Heart Infusion | Sigma Aldrich | 53286 | Growth media for Y. enterocolitica. |
calcium chloride | Sigma Aldrich | 223506 | M2G ingredient. |
camera | Imaging Source | DMK 23UP031 | Camera for phase contrast imaging. |
dielectric phase mask | Double Helix, LLC | N/A | Produces DHPSF signal. |
disodium phosphate | Sigma Aldrich | 795410 | M2G ingredient. |
ethylenediaminetetraacetic acid | Fisher Scientific | S311-100 | Chelates Ca2+. Induces secretion in the T3SS. |
flip mirror | Newport | 8892-K | Allows for switching between fluorescence and phase contrast pathways. |
fluospheres | Invitrogen | F8792 | Fluorescent beads. 540/560 exication and emission wavelengths. 40 nm diameter. |
glass cover slip | VWR | 16004-302 | #1.5, 22mmx22mm |
glucose | Chem Impex International | 811 | M2G ingredient. |
immersion oil | Olympus | Z-81025 | Placed on objective lens. |
iron(II) sulfate | Sigma Aldrich | F0518 | M2G ingredient. |
long pass filter | Semrock | LP02-514RU-25 | Emission pathway. |
magnesium sulfate | Fisher Scientific | S25414A | M2G ingredient. |
microscope platform | Mad City Labs | custom | Platform for inverted microscope. |
nalidixic acid | Sigma Aldrich | N4382 | Y. enterocolitica cells used are resistant to nalidixic acid. |
objective lens | Olympus | 1-U2B991 | 60X, 1.4 NA |
Ozone cleaner | Novascan | PSD-UV4 | Used to eliminate background fluorescence on glass cover slips. |
potassium phosphate | Sigma Aldrich | 795488 | M2G ingredient. |
Red LED | Thorlabs | M625L3 | Illuminates sample for phase contrast imaging. 625nm. |
sCMOS camera | Hamamatsu | ORCA-Flash 4.0 V2 | Camera for fluorescence imaging. |
short pass filter | Chroma | ET700SP-2P8 | Emission pathway. |
Tube lens | Thorlabs | AC508-180-A | f=180 mm, 2" |
Yersinia enterocolitica dHOPEMTasd | N/A | N/A | Strain AD4442, eYFP-YscQ |
zero-order quarter-wave plate | Thorlabs | WPQ05M-514 | Excitation pathway. |