Summary

Studere oksidativt Stress forårsaket av Mitis gruppe Streptococci i Caenorhabditis elegans

Published: March 23, 2019
doi:

Summary

Rundormer Caenorhabditis elegans er en utmerket modell å dissekere vert-patogen interaksjoner. Beskrevet her, er en protokoll for å infisere ormen med medlemmer av mitis gruppe streptococci og fastsette aktivisering av oksidativt stressrespons mot H2O2 produsert av denne gruppen av organismer.

Abstract

Caenorhabditis elegans (C. elegans), et frittlevende nematode, har dukket opp som en attraktiv modell å studere vert-patogen interaksjoner. Presentert protokollen bruker denne modellen til å bestemme virusets forårsaket av mitis gruppe streptococci via produksjon av H2O2. Mitis gruppe streptococci er en trussel som forårsaker mange menneskelige sykdommer som bacteremia, endokarditt og orbital cellulitt. Beskrevet her er en protokoll for å bestemme overlevelse av disse ormene svar til H2O2 produsert av denne gruppen av patogener. Bruker genet skn-1 koding for en oksidativt stress respons transkripsjon faktor, er det vist at denne modellen er viktig for å identifisere vert gener som er viktige mot streptokokk infeksjoner. Videre er det vist at aktivering av oksidativt stressrespons kan overvåkes i nærvær av disse patogener med en transgene reporter ormen belastning, der SKN-1 er smeltet grønne fluorescerende protein (GFP). Disse analyser gir mulighet til å studere oksidativt stressrespons til H2O2 avledet av noen biologiske i motsetning til exogenously lagt reaktive oksygen arter (ROS) kilder.

Introduction

Mitis gruppe streptococci er menneskelige commensals av orofaryngeal hulrom1. Men kan disse organismene unnslippe denne nisje og forårsaker en rekke invasive sykdommer2. Infeksjoner forårsaket av disse mikroorganismer inkluderer bacteremia, endokarditt og orbital cellulitt,2,,3,,4,,5,,6. Videre de dukker opp som forårsaker agenter av blodbanen infeksjoner i immunsupprimerte, neutropenic og pasienter som har gjennomgått kjemoterapi5,7,8,9 .

Mekanismene underliggende mitis gruppe patogenesen er obskure, fordi noen virulens faktorer har blitt identifisert. Gruppen mitis er kjent for å produsere H2O2, som har vist seg for å spille en viktig rolle i oral mikrobielle samfunn10. Flere studier har nylig merket en rolle for H2O2 som en cytotoxin som induserer epithelial celle død11,12. S. lungebetennelse, som tilhører denne gruppen, har vist seg å produsere høye nivåer av H2O2 som induserer DNA skade og apoptose i alveolar celler13. Bruker en akutt lungebetennelse dyremodell, viste samme forskerne at produksjonen av H2O2 av bakterier gir en virulens fordel. Studier på pneumokokk hjernehinnebetennelse har også vist at patogen-avledet H2O2 fungerer synergi med pneumolysin å utløse neuronal celle død14. Disse observasjonene klart å etablere at H2O2 produsert av denne gruppen av bakterier er viktig for deres virusets.

Interessant, har det også vist at medlemmer av mitis gruppe S. mitis og S. oralis forårsake død Rundormer C. elegans via produksjon av H2O215,16. Denne frittlevende Rundormer har blitt brukt som en enkel, genetisk medgjørlig modell for å studere mange biologiske prosesser. Ormen har nylig dukket opp som en modell å studere vert-patogen interaksjoner17,18. I tillegg har flere studier understreket viktigheten av å studere oksidativt stress bruker denne organismen19,20,21. Den korte livssyklusen, evne til å pusse gener av interesse ved RNAi, og bruk av grønne fluorescerende protein (GFP)-smeltet journalister å overvåke genuttrykk er noen av attributtene som gjør det et attraktivt modellsystem. Enda viktigere, er veier som regulerer oksidativt stress og medfødt immunitet i ormen svært bevart med pattedyr20,22.

I denne protokollen, skal vi se hvordan å bruke C. elegans å belyse virusets skyldes streptokokk-avledet H2O2. En modifisert overlevelse analysen vises, og medlemmer av gruppen mitis er kjøpedyktig drepe ormer raskt via produksjon av H2O2. Ved hjelp av medlemmer av gruppen mitis, en vedvarende biologiske kilde til reaktive oksygen arter er (ROS) gitt, i motsetning til kjemiske kilder som induserer oksidativt stress i ormer. Videre kan bakterier kolonisere ormer, hvilke innrømmer for H2O2 å rettes direkte mot intestinal cellene (i forhold til andre kilder som må krysse flere barrierer). Analysen valideres enten 1) for å bestemme overlevelse skn-1 mutert stamme eller 2) ved å banke ned skn-1 bruker RNAi i ormer i forhold til N2 vill-type og vektor kontroll behandlet ormer. SKN-1 er en viktig transkripsjon faktor som regulerer oksidativt stressrespons i C. elegans23,24,25. I tillegg til overlevelse analyser brukes en orm belastning uttrykke SKN-1B/C::GFP transgene reporter overvåke aktivering av oksidativt stress respons via produksjon av H2O2 av gruppen mitis.

Protocol

1. forberedelse av din (Todd-Hewitt gjærekstrakt) Agar plater 1 L media, legge 30 g av Todd-Hewitt pulver, 2 g gjærekstrakt og 20 g agar til en 2 L Erlenmeyer kolbe. Legg 970 mL deionisert vann innholdet i flasken og inkluderer en røre bar. Autoclave media ved en temperatur på 121 ° C og presset av 15 lb/tomme2 for 30 min. Deretter angi media på en røre plate og gi kjøling med mild omrøring. Hell media i riktig størrelse sterilt Petri retter (100 x 15 mm retter for vekst og vedlik…

Representative Results

Medlemmer av mitis gruppen S. mitis, S. oralis, og S. gordonii raskt drept ormer, i motsetning til S. mutans, S. salivarius, og ikke-patogene E. coli OP50 (Figur 3A). Median overlevelse for S. mitis, S. oralis, og S. gordonii var 300 min og 300 min 345 min, henholdsvis. For å avgjøre hvis drapet ble formidlet av H2O2, ble catalase supplert…

Discussion

Metodene beskrevet kan brukes for andre patogene bakterier som Enterococcus faecium, som også produserer H2O2 dyrket under anaerob eller gram-negative forhold26. For mest sykdomsfremkallende organismer tar det vanligvis flere dager til uker å fullføre de overlevelse analyser. Men på grunn av robust produksjon av H2O2 av medlemmer av gruppen mitis, kan disse analyser fullføres innen 5-6 timer under forholdene beskrevet. Dette sikrer evnen å…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Bing-Yan Wang, Dr. Gena Tribble (University of Texas, School of Dentistry), Dr. Richard Lamont (Universitetet i Louisville, School of Dentistry) og Dr. Samuel Shelburne (MD Anderson Cancer Center) for å gi laboratorie- og kliniske stammer av mitis gruppe streptococci. Vi takker også Dr. Keith Blackwell (genetikk, Harvard Medical School) for C. elegans stammer. Til slutt, vi takker Dr. Danielle Garsin og hennes lab (University of Texas, McGovern Medical School) for å gi reagenser og ormen stammer å gjennomføre studiet. Noen ormen stammer ble levert av CGC, som finansieres av NIH Office forskning infrastruktur programmer (P40 OD010440).

Materials

Media and chemicals
Agarose  Sigma Aldrich A9539-50G
Bacto peptone  Fisher Scientific DF0118-17-0
BD Bacto Todd Hewitt Broth Fisher Scientific DF0492-17-6
BD BBL Sheep Blood, Defibrinated   Fisher Scientific B11947
BD Difco Agar  Fisher Scientific DF0145-17-0
BD Difco LB Broth Fisher Scientific DF0446-17-3
Blood agar (TSA with Sheep Blood) Fisher Scientific R01200
Calcium Chloride Fisher Scientific BP510-500
Carbenicillin Fisher Scientific BP26481
Catalase  Sigma Aldrich C1345-1G
Cholesterol Fisher Scientific ICN10138201
IPTG Fisher Scientific MP21021012
Magnesium sulfate Fisher Scientific BP213-1
Nystatin Acros organics AC455500050
Potassium Phosphate Dibasic Fisher Scientific BP363-500
Potassium phosphate monobasic Fisher Scientific BP362-500
Sodium Azide Sigma Aldrich S2002-25G
Sodium chloride  Fisher Scientific BP358-1
Sodium Hydroxide Fisher Scientific SS266-1
8.25% Sodium Hypochlorite
Sodium Phosphate Dibasic  Fisher Scientific BP332-500
Streptomycin Sulfate  Fisher Scientific BP910-50
Tetracyclin Sigma Aldrich 87128-25G
(−)-Tetramisole hydrochloride Sigma Aldrich L9756
Yeast extract Fisher Scientific BP1422-500 
Consumables 
15mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes  Fisher Scientific 12-565-269
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 10mL Fisher Scientific 07-200-574
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 25mL Fisher Scientific 07-200-575
Falcon Bacteriological Petri Dishes with Lid (35 x 10 mm) Fisher Scientific 08-757-100A
No. 1.5  18 mm X 18 mm Cover Slips Fisher Scientific 12-541A
Petri Dish with Clear Lid (60 x 15 mm) Fisher Scientific FB0875713A
Petri Dishes with Clear Lid (100X15mm) Fisher Scientific FB0875712
Plain Glass Microscope Slides (75 x 25 mm) Fisher Scientific 12-544-4
Software 
Prism Graphpad
Bacterial Strains
S. oralis ATCC 35037
S. mitis ATCC 49456
S. gordonii DL1 Challis  
E. coli OP50
E. coli HT115
Worm Strains
Strain Genotype Transgene Source
N2 C. elegans wild isolate CGC
EU1 skn-1(zu67) IV/nT1 [unc-?(n754) let-?] (IV;V) CGC
LD002 IdIs1 SKN-1B/C::GFP + rol-6(su1006) Keith Blackwell

References

  1. Human Microbiome Project, C. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 486 (7402), 207-214 (2012).
  2. Mitchell, J. Streptococcus mitis: walking the line between commensalism and pathogenesis. Molecular Oral Microbiology. 26 (2), 89-98 (2011).
  3. Dyson, C., Barnes, R. A., Harrison, G. A. Infective endocarditis: an epidemiological review of 128 episodes. Journal of Infection. 38 (2), 87-93 (1999).
  4. Sahasrabhojane, P., et al. Species-level assessment of the molecular basis of fluoroquinolone resistance among viridans group streptococci causing bacteraemia in cancer patients. International Journal of Antimicrobial Agents. 43 (6), 558-562 (2014).
  5. Shelburne, S. A., et al. Streptococcus mitis strains causing severe clinical disease in cancer patients. Emerging Infectious Diseases. 20 (5), 762-771 (2014).
  6. van der Meer, J. T., et al. Distribution, antibiotic susceptibility and tolerance of bacterial isolates in culture-positive cases of endocarditis in The Netherlands. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 10 (9), 728-734 (1991).
  7. Han, X. Y., Kamana, M., Rolston, K. V. Viridans streptococci isolated by culture from blood of cancer patients: clinical and microbiologic analysis of 50 cases. Journal of Clinical Microbiology. 44 (1), 160-165 (2006).
  8. Hoshino, T., Fujiwara, T., Kilian, M. Use of phylogenetic and phenotypic analyses to identify nonhemolytic streptococci isolated from bacteremic patients. Journal of Clinical Microbiology. 43 (12), 6073-6085 (2005).
  9. Kohno, K., et al. Infectious complications in patients receiving autologous CD34-selected hematopoietic stem cell transplantation for severe autoimmune diseases. Transplant Infectious Disease. 11 (4), 318-323 (2009).
  10. Zhu, L., Kreth, J. The role of hydrogen peroxide in environmental adaptation of oral microbial communities. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 717843 (2012).
  11. Okahashi, N., et al. Hydrogen peroxide contributes to the epithelial cell death induced by the oral mitis group of streptococci. PLoS One. 9 (1), 88136 (2014).
  12. Stinson, M. W., Alder, S., Kumar, S. Invasion and killing of human endothelial cells by viridans group streptococci. Infection and Immunity. 71 (5), 2365-2372 (2003).
  13. Rai, P., et al. Streptococcus pneumoniae secretes hydrogen peroxide leading to DNA damage and apoptosis in lung cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (26), 3421-3430 (2015).
  14. Braun, J. S., et al. Pneumococcal pneumolysin and H(2)O(2) mediate brain cell apoptosis during meningitis. Journal of Clinical Investigation. 109 (2), 19-27 (2002).
  15. Naji, A., et al. The activation of the oxidative stress response transcription factor SKN-1 in Caenorhabditis elegans by mitis group streptococci. PLoS One. 13 (8), 0202233 (2018).
  16. Bolm, M., Jansen, W. T., Schnabel, R., Chhatwal, G. S. Hydrogen peroxide-mediated killing of Caenorhabditis elegans: a common feature of different streptococcal species. Infection and Immunity. 72 (2), 1192-1194 (2004).
  17. Sifri, C. D., Begun, J., Ausubel, F. M. The worm has turned–microbial virulence modeled in Caenorhabditis elegans. Trends in Microbiology. 13 (3), 119-127 (2005).
  18. Irazoqui, J. E., Ausubel, F. M. 99th Dahlem conference on infection, inflammation and chronic inflammatory disorders: Caenorhabditis elegans as a model to study tissues involved in host immunity and microbial pathogenesis. Clinical & Experimental Immunology. 160 (1), 48-57 (2010).
  19. Van Raamsdonk, J. M., Hekimi, S. Reactive Oxygen Species and Aging in Caenorhabditis elegans: Causal or Casual Relationship. Antioxidants & Redox Signaling. 13 (12), 1911-1953 (2010).
  20. Tissenbaum, H. A. Using C. elegans for aging research. Invertebrate Reproduction & Development. 59, 59-63 (2015).
  21. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology & Medicine. 88, 290-301 (2015).
  22. Irazoqui, J. E., Urbach, J. M., Ausubel, F. M. Evolution of host innate defence: insights from Caenorhabditis elegans and primitive invertebrates. Nature Reviews Immunology. 10 (1), 47-58 (2010).
  23. Park, S. K., Tedesco, P. M., Johnson, T. E. Oxidative stress and longevity in Caenorhabditis elegans as mediated by SKN-1. Aging Cell. 8 (3), 258-269 (2009).
  24. An, J. H., et al. Regulation of the Caenorhabditis elegans oxidative stress defense protein SKN-1 by glycogen synthase kinase-3. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (45), 16275-16280 (2005).
  25. An, J. H., Blackwell, T. K. SKN-1 links C. elegans mesendodermal specification to a conserved oxidative stress response. Genes & Development. 17 (15), 1882-1893 (2003).
  26. Moy, T. I., Mylonakis, E., Calderwood, S. B., Ausubel, F. M. Cytotoxicity of hydrogen peroxide produced by Enterococcus faecium. Infection and Immunity. 72 (8), 4512-4520 (2004).
  27. Pincus, Z., Mazer, T. C., Slack, F. J. Autofluorescence as a measure of senescence in C. elegans: look to red, not blue or green. Aging (Albany NY). 8 (5), 889-898 (2016).
  28. Teuscher, A. C., Ewald, C. Y. Overcoming Autofluorescence to Assess GFP Expression During Normal Physiology and Aging in Caenorhabditis elegans. Bio-protocol. 8 (14), (2018).

Play Video

Citer Cet Article
Naji, A., Al Hatem, A., van der Hoeven, R. Studying Oxidative Stress Caused by the Mitis Group Streptococci in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (145), e59301, doi:10.3791/59301 (2019).

View Video