Summary

At studere Oxidative Stress forårsaget af Mitis gruppe streptokokker i Caenorhabditis elegans

Published: March 23, 2019
doi:

Summary

Nematode Caenorhabditis elegans er en fremragende model for dissekere vært-patogen interaktioner. Beskrevet her er en protokol til at inficere orm med medlemmer af mitis gruppe streptokokker og bestemme aktivering af oxidative stress reaktion mod H2O2 produceret af denne gruppe af organismer.

Abstract

Caenorhabditis elegans (C. elegans), en fritlevende nematode, fremstod som en attraktiv model til at studere vært-patogen interaktioner. Den præsenterede protokol bruger denne model til at bestemme patogenicitet forårsaget af mitis gruppe streptokokker via produktion af H2O2. Mitis gruppe streptokokker er en spirende trussel, der forårsager mange menneskelige sygdomme såsom bakteriæmi, endocarditis, og orbital cellulitis. Beskrevet her er en protokol til at bestemme overlevelse af disse orme som svar på H2O2 produceret af denne gruppe af patogener. Ved at bruge gen skn-1 kodning for en oxidativ stress reaktion transskription faktor, er det vist, at denne model er vigtige for at identificere vært gener, der er væsentlige mod streptokok infektion. Desuden er det vist, at aktivering af oxidative stressrespons kan overvåges i nærværelse af disse patogener ved hjælp af en transgene reporter orm stamme, hvor SKN-1 er sammenvokset til grøn fluorescerende proteiner (NGL). Disse assays giver mulighed for at studere oxidative stress reaktionen på H2O2 afledt af en biologisk kilde i modsætning til eksogent tilføjet reaktive ilt arter (ROS) kilder.

Introduction

Mitis gruppe streptokokker er menneskelige latente i svælg cavity1. Men, disse organismer kan undslippe denne niche og forårsage en række invasive sygdomme2. Infektioner forårsaget af disse mikroorganismer omfatter bakteriæmi, endocarditis, og orbital cellulitis2,3,4,5,6. Desuden, de dukker op som agenser af infektioner i blodet i immunkompromitterede, neutropeni, og kræftpatienter, der har undergået kemoterapi5,7,8,9 .

Mekanismerne underliggende mitis gruppe patogenesen er uklare, fordi få virulens faktorer er blevet identificeret. Gruppen mitis er kendt for at producere H2O2, som har vist sig for at spille en vigtig rolle i mundtlig mikrobielle samfund10. For nylig, flere undersøgelser har fremhævet en rolle for H2O2 som en cytotoxin, der inducerer epitelcelle død11,12. S. lungebetændelse, der tilhører denne gruppe, har vist sig at producere høje niveauer af H2O2 der inducerer DNA-skader og apoptose i alveolær celler13. Ved hjælp af en akut lungebetændelse dyremodel, vist de samme forskere, at produktionen af H2O2 af bakterier giver en virulens fordel. Undersøgelser på pneumokok-meningitis har også vist, at patogenet-afledte H2O2 virker synergistisk med pneumolysin til at udløse neuronal celle død14. Disse observationer fastsætter klart, at H2O2 produceret af denne gruppe af bakterier er vigtig for deres sygdomsfremkaldende evne.

Interessant, har det også vist sig at medlemmer af mitis gruppe S. mitis og S. oralis medføre døden af den ødelægge C. elegans via produktion af H2O215,16. Denne fritlevende nematode har været brugt som en enkel, genetisk tractable model til at studere mange biologiske processer. Mere nylig, ormen er opstået som en model til at studere vært-patogen interaktioner17,18. Derudover har flere undersøgelser fremhævet vigtigheden af at studere oxidativt stress ved hjælp af denne organisme19,20,21. Dens korte livscyklus, evne til knockdown gener af interesse af RNAi og brug af grønne fluorescerende proteiner (NGL)-sammensmeltet reportere til overvågning af genekspression er nogle af de attributter, der gør det til en attraktiv modelsystem. Endnu vigtigere, er de veje, der regulerer oxidativ stress og medfødt immunitet i ormen meget bevaret med pattedyr20,22.

I denne protokol, er det vist hvordan C. elegans til at belyse patogenicitet forårsaget af streptokok-afledte H2O2. En modificeret overlevelse assay er vist, og medlemmer af gruppen mitis er i stand til at dræbe ormene hurtigt via produktion af H2O2. Ved hjælp af medlemmer af gruppen mitis, en vedvarende biologisk kilde af reaktive ilt arter er (ROS) fastsat, i modsætning til kemiske kilder, der inducerer oxidativt stress i worms. Endvidere, bakterier er at kolonisere orme hurtigt, hvilket gør til H2O2 rettes direkte til tarmens celler (sammenlignet med andre kilder, der er nødt til at krydse flere barrierer). Analysen er valideret, enten 1) ved fastsættelsen overlevelse af skn-1 mutant stamme eller 2) ved at banke ned skn-1 ved hjælp af RNAi i orme i forhold til N2 vildtype og vektor kontrol behandles orme. SKN-1 er en vigtige transkriptionsfaktor, der regulerer oxidative stressrespons i C. elegans23,24,25. Ud over overlevelsen assays bruges en orm stamme at udtrykke en SKN-1B/C::GFP transgene reporter til at overvåge aktivering af oxidative stress respons via produktion af H2O2 af gruppen mitis.

Protocol

1. forberedelse af THY (Todd-Hewitt gærekstrakt) Agar plader 1 L medier, tilføje 30 g af Todd-Hewitt pulver, 2 g af gærekstrakt og 20 g agar til en 2 L erlenmeyerkolben. 970 mL deioniseret vand tilsættes til kolbens indhold og omfatter en røre bar. Autoklave medier ved en temperatur på 121 ° C og tryk på 15 lb/tommer2 til 30 min. Derefter indstille medierne på en røre pladen og mulighed for køling med blid omrøring. Hæld medierne i passende størrelse sterile petriskåle (100 m…

Representative Results

Medlemmer af mitis gruppe S. mitis, S. oralis, og S. gordonii hurtigt dræbt orme, i modsætning til S. mutans, S. salivarius, og ikke-sygdomsfremkaldende E. coli OP50 (fig. 3A). Den mediane overlevelse for S. mitis, S. oralis, og S. gordonii var 300 min, 300 min. og 345 min, henholdsvis. For at bestemme, hvis drab blev formidlet af H2O2, bl…

Discussion

De beskrevne metoder kan bruges til andre patogene bakterier såsom Enterococcus faecium, som også producerer H2O2 dyrkes under anaerob eller microaerophilic betingelser26. Typisk for de fleste sygdomsfremkaldende organismer tager det flere dage til uger at gennemføre overlevelse assays. Den robuste produktion af H2O2 af medlemmer af gruppen mitis, kunne disse assays afsluttes inden for 5-6 h under de beskrevne betingelser. Dette sikrer evnen …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Bing-Yan Wang, Dr. Gena Tribble (The University of Texas, Tandlægeskolen), Dr. Richard Lamont (University of Louisville, Tandlægeskolen), og Dr. Samuel Shelburne (MD Anderson Cancer Center) for at give laboratorie- og klinisk stammer af mitis gruppe streptokokker. Vi takker også Dr. Keith Blackwell (Institut for genetik, Harvard Medical School) for C. elegans stammer. Endelig, vi takker Dr. Danielle Garsin og hendes lab (The University of Texas, McGovern Medical School) for at give reagenser og ormen stammer til at gennemføre undersøgelsen. Nogle orm stammer blev leveret af CGC-udvalg, som er finansieret af NIH Office for forskning infrastruktur programmer (P40 OD010440).

Materials

Media and chemicals
Agarose  Sigma Aldrich A9539-50G
Bacto peptone  Fisher Scientific DF0118-17-0
BD Bacto Todd Hewitt Broth Fisher Scientific DF0492-17-6
BD BBL Sheep Blood, Defibrinated   Fisher Scientific B11947
BD Difco Agar  Fisher Scientific DF0145-17-0
BD Difco LB Broth Fisher Scientific DF0446-17-3
Blood agar (TSA with Sheep Blood) Fisher Scientific R01200
Calcium Chloride Fisher Scientific BP510-500
Carbenicillin Fisher Scientific BP26481
Catalase  Sigma Aldrich C1345-1G
Cholesterol Fisher Scientific ICN10138201
IPTG Fisher Scientific MP21021012
Magnesium sulfate Fisher Scientific BP213-1
Nystatin Acros organics AC455500050
Potassium Phosphate Dibasic Fisher Scientific BP363-500
Potassium phosphate monobasic Fisher Scientific BP362-500
Sodium Azide Sigma Aldrich S2002-25G
Sodium chloride  Fisher Scientific BP358-1
Sodium Hydroxide Fisher Scientific SS266-1
8.25% Sodium Hypochlorite
Sodium Phosphate Dibasic  Fisher Scientific BP332-500
Streptomycin Sulfate  Fisher Scientific BP910-50
Tetracyclin Sigma Aldrich 87128-25G
(−)-Tetramisole hydrochloride Sigma Aldrich L9756
Yeast extract Fisher Scientific BP1422-500 
Consumables 
15mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes  Fisher Scientific 12-565-269
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 10mL Fisher Scientific 07-200-574
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 25mL Fisher Scientific 07-200-575
Falcon Bacteriological Petri Dishes with Lid (35 x 10 mm) Fisher Scientific 08-757-100A
No. 1.5  18 mm X 18 mm Cover Slips Fisher Scientific 12-541A
Petri Dish with Clear Lid (60 x 15 mm) Fisher Scientific FB0875713A
Petri Dishes with Clear Lid (100X15mm) Fisher Scientific FB0875712
Plain Glass Microscope Slides (75 x 25 mm) Fisher Scientific 12-544-4
Software 
Prism Graphpad
Bacterial Strains
S. oralis ATCC 35037
S. mitis ATCC 49456
S. gordonii DL1 Challis  
E. coli OP50
E. coli HT115
Worm Strains
Strain Genotype Transgene Source
N2 C. elegans wild isolate CGC
EU1 skn-1(zu67) IV/nT1 [unc-?(n754) let-?] (IV;V) CGC
LD002 IdIs1 SKN-1B/C::GFP + rol-6(su1006) Keith Blackwell

References

  1. Human Microbiome Project, C. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 486 (7402), 207-214 (2012).
  2. Mitchell, J. Streptococcus mitis: walking the line between commensalism and pathogenesis. Molecular Oral Microbiology. 26 (2), 89-98 (2011).
  3. Dyson, C., Barnes, R. A., Harrison, G. A. Infective endocarditis: an epidemiological review of 128 episodes. Journal of Infection. 38 (2), 87-93 (1999).
  4. Sahasrabhojane, P., et al. Species-level assessment of the molecular basis of fluoroquinolone resistance among viridans group streptococci causing bacteraemia in cancer patients. International Journal of Antimicrobial Agents. 43 (6), 558-562 (2014).
  5. Shelburne, S. A., et al. Streptococcus mitis strains causing severe clinical disease in cancer patients. Emerging Infectious Diseases. 20 (5), 762-771 (2014).
  6. van der Meer, J. T., et al. Distribution, antibiotic susceptibility and tolerance of bacterial isolates in culture-positive cases of endocarditis in The Netherlands. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 10 (9), 728-734 (1991).
  7. Han, X. Y., Kamana, M., Rolston, K. V. Viridans streptococci isolated by culture from blood of cancer patients: clinical and microbiologic analysis of 50 cases. Journal of Clinical Microbiology. 44 (1), 160-165 (2006).
  8. Hoshino, T., Fujiwara, T., Kilian, M. Use of phylogenetic and phenotypic analyses to identify nonhemolytic streptococci isolated from bacteremic patients. Journal of Clinical Microbiology. 43 (12), 6073-6085 (2005).
  9. Kohno, K., et al. Infectious complications in patients receiving autologous CD34-selected hematopoietic stem cell transplantation for severe autoimmune diseases. Transplant Infectious Disease. 11 (4), 318-323 (2009).
  10. Zhu, L., Kreth, J. The role of hydrogen peroxide in environmental adaptation of oral microbial communities. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 717843 (2012).
  11. Okahashi, N., et al. Hydrogen peroxide contributes to the epithelial cell death induced by the oral mitis group of streptococci. PLoS One. 9 (1), 88136 (2014).
  12. Stinson, M. W., Alder, S., Kumar, S. Invasion and killing of human endothelial cells by viridans group streptococci. Infection and Immunity. 71 (5), 2365-2372 (2003).
  13. Rai, P., et al. Streptococcus pneumoniae secretes hydrogen peroxide leading to DNA damage and apoptosis in lung cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (26), 3421-3430 (2015).
  14. Braun, J. S., et al. Pneumococcal pneumolysin and H(2)O(2) mediate brain cell apoptosis during meningitis. Journal of Clinical Investigation. 109 (2), 19-27 (2002).
  15. Naji, A., et al. The activation of the oxidative stress response transcription factor SKN-1 in Caenorhabditis elegans by mitis group streptococci. PLoS One. 13 (8), 0202233 (2018).
  16. Bolm, M., Jansen, W. T., Schnabel, R., Chhatwal, G. S. Hydrogen peroxide-mediated killing of Caenorhabditis elegans: a common feature of different streptococcal species. Infection and Immunity. 72 (2), 1192-1194 (2004).
  17. Sifri, C. D., Begun, J., Ausubel, F. M. The worm has turned–microbial virulence modeled in Caenorhabditis elegans. Trends in Microbiology. 13 (3), 119-127 (2005).
  18. Irazoqui, J. E., Ausubel, F. M. 99th Dahlem conference on infection, inflammation and chronic inflammatory disorders: Caenorhabditis elegans as a model to study tissues involved in host immunity and microbial pathogenesis. Clinical & Experimental Immunology. 160 (1), 48-57 (2010).
  19. Van Raamsdonk, J. M., Hekimi, S. Reactive Oxygen Species and Aging in Caenorhabditis elegans: Causal or Casual Relationship. Antioxidants & Redox Signaling. 13 (12), 1911-1953 (2010).
  20. Tissenbaum, H. A. Using C. elegans for aging research. Invertebrate Reproduction & Development. 59, 59-63 (2015).
  21. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology & Medicine. 88, 290-301 (2015).
  22. Irazoqui, J. E., Urbach, J. M., Ausubel, F. M. Evolution of host innate defence: insights from Caenorhabditis elegans and primitive invertebrates. Nature Reviews Immunology. 10 (1), 47-58 (2010).
  23. Park, S. K., Tedesco, P. M., Johnson, T. E. Oxidative stress and longevity in Caenorhabditis elegans as mediated by SKN-1. Aging Cell. 8 (3), 258-269 (2009).
  24. An, J. H., et al. Regulation of the Caenorhabditis elegans oxidative stress defense protein SKN-1 by glycogen synthase kinase-3. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (45), 16275-16280 (2005).
  25. An, J. H., Blackwell, T. K. SKN-1 links C. elegans mesendodermal specification to a conserved oxidative stress response. Genes & Development. 17 (15), 1882-1893 (2003).
  26. Moy, T. I., Mylonakis, E., Calderwood, S. B., Ausubel, F. M. Cytotoxicity of hydrogen peroxide produced by Enterococcus faecium. Infection and Immunity. 72 (8), 4512-4520 (2004).
  27. Pincus, Z., Mazer, T. C., Slack, F. J. Autofluorescence as a measure of senescence in C. elegans: look to red, not blue or green. Aging (Albany NY). 8 (5), 889-898 (2016).
  28. Teuscher, A. C., Ewald, C. Y. Overcoming Autofluorescence to Assess GFP Expression During Normal Physiology and Aging in Caenorhabditis elegans. Bio-protocol. 8 (14), (2018).

Play Video

Citer Cet Article
Naji, A., Al Hatem, A., van der Hoeven, R. Studying Oxidative Stress Caused by the Mitis Group Streptococci in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (145), e59301, doi:10.3791/59301 (2019).

View Video