Summary

Visualiseren van de waardevermindering van het endotheel en gliale belemmeringen van de neurovasculaire eenheid tijdens de experimentele Autoimmune encefalomyelitis In Vivo

Published: March 26, 2019
doi:

Summary

Hier presenteren we protocollen om te onderzoeken op bijzondere waardeverminderingen van de neurovasculaire eenheid tijdens de experimentele autoimmune encefalomyelitis in vivo. Wij ingaan specifiek op het bepalen van de bloed – hersenbarrière permeabiliteit en gelatinase activiteit die betrokken zijn bij migratie van leukocyten in de glia-limitans.

Abstract

De neurovasculaire eenheid (NVU) is samengesteld uit microvasculaire endotheliale cellen vormen de bloed – hersenbarrière (BBB), een endothelial kelder membraan met ingesloten pericytes, en de glia limitans samengesteld door de parenchymal kelder-membraan en astrocytic einde-feed omarmen het abluminal aspect van het centrale zenuwstelsel (CNS) microvessels. Naast het behoud van de CNS bepaalt homeostase de NVU immuun cel smokkel naar het centraal zenuwstelsel. Tijdens de immunosurveillance van het centraal zenuwstelsel kunnen lage aantallen van geactiveerde lymfocyten het endotheel barrière oversteken zonder BBB dysfunctie of klinische ziekte te veroorzaken. In tegenstelling, tijdens neuroinflammation zoals in multiple sclerose of haar diermodel kan experimentele autoimmune encefalomyelitis (EAE) een groot aantal immuuncellen kruisen de BBB en vervolgens de glia limitans uiteindelijk bereiken de CNS parenchym leidt tot klinische ziekte. Immuun cel migratie naar de CNS parenchym is dus een proces van twee stappen waarbij een sequentiële migratie over het endotheel en gliale barrière voor de NVU met verschillende moleculaire mechanismen. Als na hun passage over het endotheel barrière, T-cellen tegenkomen hun cognaat antigeen op gerelateerde antigeen-presenteren cellen hun lokale reactivering zal starten volgende mechanismen die leiden tot de focal activering van gelatinases, die de T-cellen te steken de gliale barrière en voer de CNS parenchym kunnen. Dus, beoordeling van zowel, BBB permeabiliteit en MMP activiteit in ruimtelijke correlatie met immuun cel accumulatie in het VNV tijdens EAE om aan te geven van verlies van de integriteit van het endotheel en gliale belemmeringen voor de NVU. Hier laten we zien hoe ertoe EAE in C57BL/6 muizen door actieve immunisering en hoe vervolgens analyseren BBB permeabiliteit in vivo met behulp van een combinatie van exogene fluorescerende verklikstoffen. We tonen verder, hoe om te visualiseren en lokaliseren van gelatinase activiteit in EAE hersenen door in situ zymogaphy gekoppeld aan immunefluorescentie technieken van BBB kelder membranen en CD45 + binnenvallende immuuncellen.

Introduction

Het centrale zenuwstelsel (CNS) coördineert alle lichaam en mentale functies in gewervelde dieren, en CNS homeostase is essentieel voor een goede communicatie van neuronen. CNS homeostase is gerechtvaardigd door de neurovasculaire eenheid (NVU), die de CNS tegen de veranderende omgeving van de bloedstroom beschermt. De NVU is samengesteld uit CNS microvasculaire endotheliale cellen die biochemically uniek zijn en stellen de bloed – hersenbarrière (BBB) in continu Overspraak met pericytes, astrocyten, neuronen en componenten van de extracellulaire matrix (ECM), tot oprichting van twee aparte kelder membranen1. Het endotheel kelder membraan dat ensheathes het abluminal aspect van de endotheliale cellen van BBB herbergt een groot aantal pericytes en bestaat uit laminin α4 en laminin α5, naast andere ECM eiwitten2. In tegenstelling, het parenchymal membraan van de kelder bestaat laminin alpha1 of alpha2 laminin en wordt omarmd door astrocytic einde-voeten. Het parenchymal membraan van de kelder samen met de Astrocyt einde-voeten componeert de glia-limitans dat het CNS neuronale netwerk van de cerebrospinale vloeistof gevuld gerelateerde of de subarachnoïdale ruimtes3beveiligingsmethode. Vanwege de unieke architectuur van de NVU verschilt immuun cel smokkel naar de CNS van dat in de perifere weefsels als het vereist een proces van twee stappen met de immune cellen, eerst overtredingen van het endotheel BBB en vervolgens de glia limitans ter de CNS parenchym bereiken.

Multiple sclerose (MS) is een gemeenschappelijk neuroinflammatoire ziekte van het centraal zenuwstelsel, waarin een groot aantal immuuncellen circulerende Voer de CNS en veroorzaken neuroinflammation, demyelinisatie en focale verlies van BBB integriteit4. Verlies van BBB integriteit is een vroeg kenmerk van MS, zoals aangegeven door de aanwezigheid van gadolinium-contrast verbetering van de laesies in het VNV als gevisualiseerde door magnetische resonantie beeldvorming (MRI)5. Extravasation van de leukocyten in het centraal zenuwstelsel plaatsvindt op het niveau van de postcapillary venules; de precieze mechanismen die betrokken zijn bij immuun cel diapedesis in het membraan van de kelder BBB en vervolgens de gliale barrière moeten echter nog worden onderzocht. Experimentele autoimmune encefalomyelitis (EAE) fungeert als een dierlijk model voor MS en heeft aanzienlijk bijgedragen aan onze huidige kennis over MS pathogenese. Bijvoorbeeld heeft met behulp van de EAE-model men ontdekt dat leukocyte extravasation treedt op in een meerstaps proces, met inbegrip van een eerste opname en rollen stap gemedieerd door selectinen en mucin-achtige moleculen zoals selectine P glycoproteïne ligand (PSGL) -1, gevolgd door integrine-afhankelijke stevige arrestatie en kruipen van T cellen op BBB endotheliale cellen te tolerant zijden voor diapedesis6.

Zodra T cellen hebben gekruist het endotheel BBB en het endotheel kelder membraan, moeten zij hun cognaat antigeen op macrofagen en dendritische cellen strategisch gelokaliseerd in de ruimten van leptomeningeale of gerelateerde tegenkomen. Deze interactie induceert focal productie van pro-inflammatoire mediatoren die trigger de volgende mechanismen nodig voor CNS weefsel invasie van immune cellen via de glia limitans7,8,9. Focal activering van matrix-metalloproteinasen (MMP) -2 en MMP-9 verandert chemokine activering en induceert afbraak van extracellulaire matrix receptoren op Astrocyt einde-voeten, die een voorwaarde is voor immuun cel migratie over de glia-limitans in de CNS parenchym en voor het opwekken van het begin van de klinische symptomen van EAE10,11.

Het combineren van detectie van CNS infiltreren immuun cel met BBB verstrekt lekkage en gelatinase activiteit in CNS weefselsecties waardevolle informatie over de functionele integriteit van het endotheel en gliale blok in het kader van neuroinflammation. Bijvoorbeeld, we onlangs onderzocht de constitutieve verlies van het endotheel tight junction molecuul regulates adhesie molecuul (JAM)-B mensenhandel immuun cel in het centraal zenuwstelsel in het kader van EAE. In vergelijking met gezonde wild-type C57BL/6 muizen, gezonde JAM-B-deficiënte nestgenoten toonde geen bijzondere waardevermindering van BBB integriteit zoals blijkt uit de beoordeling van de in vivo permeabiliteit met behulp van zowel endogene als exogene traceurs12. In het kader van EAE toonde JAM-B-deficiënte C57BL/6 muizen verbeterd ziekte symptomen, die werd geassocieerd met inflammatoire cel overlapping in de leptomeningeale en gerelateerde spaties12. Dit fenomeen bestuderen we toegepast in situ zymography, waardoor identificatie van gelatinase activiteit om te testen of het gebrek aan gelatinase activiteit in JAM-B-deficiënte muizen mogelijk verantwoordelijk voor het verlaagde aantal immuuncellen kundig voor inbreuk op de glia limitans12.

Gegeven van de beschikbaarheid van gemodificeerde verschillende genetisch muis modellen ontbreekt, bijvoorbeeld verschillende BBB tight junction moleculen die wijzigingen in functie van de BBB veroorzaken kunnen, methoden voor het onderzoeken van BBB integriteit zijn belangrijk. Daarnaast kon nieuw ontwikkelde geneesmiddelen beïnvloeden op NVU belemmeringen. Hier laten we zien hoe ertoe EAE in C57BL/6 muizen door actieve immunisatie met de myeline Oligodendrocyt glycoproteïne (MOG)-peptide aa35-55 in volledige Freund de hulpstoffen. We dan uitleggen hoe te lokaliseren immuun cel infiltratie in de barrières van het endotheel en gliale van de NVU en hoe om te bestuderen in vivo endotheel en gliale barrière integriteit door ter plaatse detectie van exogene verklikstoffen en gelatinase, respectievelijk.

Protocol

Alle studies werden uitgevoerd onder de richtlijnen volgens de Zwitserse wetgeving inzake de bescherming van dieren en zijn goedgekeurd door het Veterinair Bureau van het Zwitserse kanton Bern (toestemming nummers: BE 31/17 en worden 77/18/EG). 1. behuizing van C57BL/6 muizen in specifieke pathogene vrije (SPF) voorwaarden Huis muizen in individuele geventileerde kooien met een 12/12 h licht-donker cyclus. Voedsel en water ad libidum. Om het toezicht op de microbiologische kwaliteit…

Representative Results

Evaluatie van de klinische cursus van EAE in C57BL/6 muizen zou moeten resulteren in een bocht van de ziekte zoals afgebeeld in figuur 2A en veranderingen in het lichaamsgewicht muis als aangegeven in figuur 2B. C57BL/6 muizen geïmmuniseerd met MOGaa35-55 meestal beginnen te ontwikkelen van de ziekte symptomen rond dag 10-12 na actieve immunisatie (figuur 1A). Geïmmuniseerde muizen Toon een voorbijgaande daling van het lichaamsgew…

Discussion

Hier presenteren we een protocol om te induceren en monitor EAE in vrouwelijke C57BL/6 muizen. Vrouwtjes worden bij voorkeur gekozen, en er is een incidentie van vrouwen: mannen van 3:1 in MS. Om te beoordelen van de ernst van de EAE, wij maakte gebruik van een 3-punts scoren blad. EAE ernst is over het algemeen scoorde met betrekking tot de ernst van de motorische stoornissen. Muizen met geavanceerde stadia van EAE, d.w.z. exposeren een score boven 2 mag worden opgeofferd om te voorkomen dat onnodig lijden van de dieren…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij erkennen dankbaar Lydia Sorokin, die heeft haar oorspronkelijke in situ zymography protocol10 gedeeld met ons.

Materials

AMCA anti-rabbit antibody Jackson ImmunoResearch 111-156-045 Store at 4 °C; protect from light
Anti-CD45 Antibody (30F11) Pharmingen 07-1401 Store at 4 °C
Anti-Laminin Antibody DAKO Z0097 Store at 4 °C
Breeding food e.g. PROVIMI KLIBA SA 3336
Individually ventilated cages, Blue line Type II or III e.g. Tecniplast 1145T, 1285L
BSA fraction V Applichem A1391 Store at 4 °C
Cold gelatine Sigma-Aldrich G 9391
Coplin jar + rack e.g. Carl Roth GmbH + Co. KG H554.1; H552.1
Cy3 anti-rat antibody Jackson ImmunoResearch 111-156-144 Store at 4 °C; protect from light
Cover slips 24 x 40 mm # 1 e.g. Thermo Scientific 85-0186-00
Dextran Alexa Fluor 488 (10,000 MW) e.g. Molecular probes D22910 Store at -20 °C; protect from light
Dextran Texas Red (3000 MW) Invitrogen D3328 Store at -20 °C; protect from light
EnzChek Gelatinase/Collagenase Assay Kit  Thermo Fisher Scientific; EnzCheck E12055 Store at -20 °C; protect form light
Female C57BL/6J mice (8-12 weeks) e.g. Janvier Labs Females, 8-12 weeks
Freezing box for histology slides e.g. Carl Roth GmbH + Co. KG 2285.1
18G x 1½’’ (1.2mm x 40mm) injection needle e.g. BD, BD Microlance 3 304622
27G x ¾’’ – Nr. 20 (0.4mm x 19mm) injection needle e.g. BD, BD Microlance 3 302200
30G x ½’’ (0.3 mm x 13 mm) injection needle e.g. BD, BD Microlance 3 304000
Incomplete Freund’s adjuvant (IFA) e.g. Santa Cruz Biotechnology sc-24648 Store at 4°C
Maintenance food e.g. PROVIMI KLIBA SA 3436
MOGaa35-55 peptide e.g. GenScript Store at -80 °C
microscope slides (Superfrost Plus ) Thermo Scientific J1800AMNZ
Mycobacterium tuberculosis H37RA e.g. BD 231141 Store at 4 °C 
NaCl 0.9 % B. Braun 3535789
O.C.T. compound (Tissue-Tek ) Sakura 4583
Omnican 50 30G x ½’’ B. Braun 9151125S
Paraformaldehyde Merck 30525-89-4
Pertussis toxin e.g. List biological laboratories, Inc. 180 Store at 4 °C
poly(vinyl alcohole) (Mowiol 4-88) Sigma-Aldrich 81381
Protease Inhibitor EDTA free (Roche) Sigma-Aldrich 4693132001 Store at 4 °C
repelling pen e.g. DAKO Pen e.g. DAKO S2002
sealing film e.g. Parafilm M e.g Sigma-Aldrich P7793
Silica gel e.g. Carl Roth GmbH + Co. KG 9351.1
Stitch scissor F.S.T 15012-12
syringe 1 ml e.g. PRIMO 62.1002
syringe 10 ml e.g. CODAN Medical ApS 2022-05
vaporizer system Univentor 400 UNO.BV

References

  1. Tietz, S., Engelhardt, B. Brain barriers: Crosstalk between complex tight junctions and adherens junctions. Journal of Cell Biology. 209, 493-506 (2015).
  2. Wu, C., et al. Endothelial basement membrane laminin alpha5 selectively inhibits T lymphocyte extravasation into the brain. Nature Medicine. 15, 519-527 (2009).
  3. Hannocks, M. J., et al. Molecular characterization of perivascular drainage pathways in the murine brain. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 38, 669-686 (2018).
  4. Kermode, A. G., et al. Breakdown of the blood-brain barrier precedes symptoms and other MRI signs of new lesions in multiple sclerosis. Pathogenetic and clinical implications. Brain. 113 (Pt 5), 1477-1489 (1990).
  5. Tommasin, S., Gianni, C., De Giglio, L., Pantano, P. Neuroimaging techniques to assess inflammation in Multiple Sclerosis. Neurosciences. , (2017).
  6. Lopes Pinheiro, M. A., et al. Immune cell trafficking across the barriers of the central nervous system in multiple sclerosis and stroke. Biochimica Biophysica Acta. 1862, 461-471 (2016).
  7. Bartholomaus, I., et al. Effector T cell interactions with meningeal vascular structures in nascent autoimmune CNS lesions. Nature. 462, 94-98 (2009).
  8. Kyratsous, N. I., et al. Visualizing context-dependent calcium signaling in encephalitogenic T cells in vivo by two-photon microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114, E6381-E6389 (2017).
  9. Lodygin, D., et al. A combination of fluorescent NFAT and H2B sensors uncovers dynamics of T cell activation in real time during CNS autoimmunity. Nature Medicine. 19, 784-790 (2013).
  10. Agrawal, S., et al. Dystroglycan is selectively cleaved at the parenchymal basement membrane at sites of leukocyte extravasation in experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Experimental Medicine. 203, 1007-1019 (2006).
  11. Song, J., et al. Focal MMP-2 and MMP-9 activity at the blood-brain barrier promotes chemokine-induced leukocyte migration. Cell Reports. 10, 1040-1054 (2015).
  12. Tietz, S., et al. Lack of junctional adhesion molecule (JAM)-B ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis. Brain, Behavior, and Immunity. 73, 3-20 (2018).
  13. Mähler Convenor, M., Berard, M., Feinstein, R., Gallagher, A., Illgen-Wilcke, B., Pritchett-Corning, K., Raspa, M. FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units. Lab Anim. 48 (3), 178-192 (2014).
  14. Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice. Journal of Visual Experiments. , (2014).
  15. Tietz, S. M., et al. Refined clinical scoring in comparative EAE studies does not enhance the chance to observe statistically significant differences. European Journal of Immunology. 46, 2481-2483 (2016).
  16. Mendel, I., Kerlero de Rosbo, N., Ben-Nun, A. A myelin oligodendrocyte glycoprotein peptide induces typical chronic experimental autoimmune encephalomyelitis in H-2b mice: fine specificity and T cell receptor V beta expression of encephalitogenic T cells. European Journal of Immunology. 25, 1951-1959 (1995).
  17. Miller, S. D., Karpus, W. J. Experimental autoimmune encephalomyelitis in the mouse. Current Protocols in Immunology. 15, (2007).
  18. Sobel, R. A., Tuohy, V. K., Lu, Z. J., Laursen, R. A., Lees, M. B. Acute experimental allergic encephalomyelitis in SJL/J mice induced by a synthetic peptide of myelin proteolipid protein. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 49, 468-479 (1990).
  19. Westarp, M. E., et al. T lymphocyte line-mediated experimental allergic encephalomyelitis–a pharmacologic model for testing of immunosuppressive agents for the treatment of autoimmune central nervous system disease. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 242, 614-620 (1987).
  20. Klotz, L., et al. B7-H1 shapes T-cell-mediated brain endothelial cell dysfunction and regional encephalitogenicity in spontaneous CNS autoimmunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113, E6182-E6191 (2016).
  21. Tietz, S. M., et al. MK2 and Fas receptor contribute to the severity of CNS demyelination. PLoS One. 9, e100363 (2014).
  22. Coisne, C., Mao, W., Engelhardt, B. Cutting edge: Natalizumab blocks adhesion but not initial contact of human T cells to the blood-brain barrier in vivo in an animal model of multiple sclerosis. Journal of Immunology. 182, 5909-5913 (2009).
  23. Korner, H., et al. Critical points of tumor necrosis factor action in central nervous system autoimmune inflammation defined by gene targeting. Journal of Experimental Medicine. 186, 1585-1590 (1997).
  24. Krueger, M., et al. Blood-brain barrier breakdown involves four distinct stages of vascular damage in various models of experimental focal cerebral ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 35, 292-303 (2015).
  25. Hawkins, B. T., Egleton, R. D. Fluorescence imaging of blood-brain barrier disruption. Journal of Neuroscience Methods. 151, 262-267 (2006).
  26. Graesser, D., et al. Altered vascular permeability and early onset of experimental autoimmune encephalomyelitis in PECAM-1-deficient mice. Journal of Clinical Investigation. 109, 383-392 (2002).
  27. Engelhardt, B., Sorokin, L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Seminars in Immunopathology. 31, 497-511 (2009).
  28. Owens, T., Bechmann, I., Engelhardt, B. Perivascular spaces and the two steps to neuroinflammation. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 67, 1113-1121 (2008).
  29. Sixt, M., et al. Endothelial cell laminin isoforms, laminins 8 and 10, play decisive roles in T cell recruitment across the blood-brain barrier in experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Cell Biology. 153, 933-946 (2001).
  30. Grewal, I. S., et al. CD62L is required on effector cells for local interactions in the CNS to cause myelin damage in experimental allergic encephalomyelitis. Immunity. 14, 291-302 (2001).

Play Video

Citer Cet Article
Tietz, S. M., Engelhardt, B. Visualizing Impairment of the Endothelial and Glial Barriers of the Neurovascular Unit during Experimental Autoimmune Encephalomyelitis In Vivo. J. Vis. Exp. (145), e59249, doi:10.3791/59249 (2019).

View Video