Summary

준비 및 Nonhuman 영장류 조 혈 줄기와 조상 세포의 유전자 수정

Published: February 15, 2019
doi:

Summary

이 프로토콜의 목표 nonhuman 영장류 CD34 분리 하는+ 세포 액된 골, 유전자-수정 lentiviral 벡터와이 셀 하 고 주입 헌 호스트에 대 한 제품을 준비에서. 총 프로토콜 길이 약 48 h입니다.

Abstract

조 혈 줄기와 조상 세포 (HSPC) 이식 백혈병에 대 한 초석 치료와 거의 반세기 동안 다른 암, 인간 면역 결핍 바이러스 (hiv-1) 감염의 유일한 알려진된 치료의 기초가 되었으며에 엄청난 약속을 보여줍니다. 베타 thalassemia 같은 유전 질환의 치료. 우리의 그룹 많은 같은 시 약 및 병원에 적용 되는 기술을 최적화 하는 과학자를 허용 nonhuman 영장류 (NHPs)에 모델 HSPC 유전자 치료 프로토콜을 개발 했습니다. 여기, 우리는 CD34 정화 방법 설명+ HSPCs 및 장기적인 유지 액된 골 (BM)에서 조 혈 줄기 세포 (HSC) 하위 집합. 다른 HSPC 소스 (예: 동원된 주변 혈액 줄기 세포 [PBSCs])의 정화에 대 한 동일한 기법을 사용할 수 있습니다. 설명 하는 것은 2 일 프로토콜 있는 셀은 정화, 교양, lentivirus (LV), 수정 및 헌 호스트에 다시 주입에 대 한 준비. 성공의 주요 정보는 CD34의 순도 포함+ HSPC 인구, 반 고체 미디어, 그리고 가장 중요 한 것은, 진 수정 효율에 형태학 상으로 다른 식민지를 형성 하는 순화 된 HSPCs의 기능. HSPC 유전자 치료의 주요 장점은 모든 조 혈 세포 종류를 수명이 긴 세포의 소스를 제공 하는 기능입니다. 따라서, 이러한 방법은 암, 유전 질환 및 전염 성 질환에 대 한 모델 치료에 사용 되었습니다. 각각의 경우에서 치료 효능 붉은 혈액 세포, T 세포, B 세포, 및 골수성 하위 집합을 포함 하 여 고유 HSPC 자손의 기능을 강화 하 여 설정 됩니다. 를 분리 하는 방법을 수정 하 고 준비 HSPC 제품은 직접 적용 및 번역 인간 환자에서 여러 질병에.

Introduction

줄기 세포 유전자 치료 인간 병 리의 넓은 범위를 해결 하는 강력한 수단 이다. HSPC 유전자 치료는 특히 매력적인 접근 이다, i) 상대적으로 완화의 환자에서 이러한 셀을 수집 ii) 사용할 수 셀 표면 고기 및 ex vivo 문화 매개 변수 이며, 필드와 확장, 지식 재산 때문 때문에 iii) 과학자 들은 유전자 수정 전략 관심의 다양 한 질병에 맞게 늘어나는 도구 상자와 함께 제공. 우리는 적극적으로 HSPC 생물학, 유전자 수정 HSPCs 전 임상 생체 조건 모델에서의 engraftment 및 관련 환자 인구를 응용 프로그램의 기초 과학을 포함 하 여 여러 각도에서 HSPC 유전자 치료 접근을 조사 하고있다. 우리와 다른 기능적으로 뚜렷한 HSPC 하위 집합1,2,3, 동원 및 컨디셔닝 regimens HSPC 수율 및 최소화 하면서 engraftment를 극대화 하는 세포 표면 표현 형 특징 있다 독성4,5, 그리고 유전자 수정 및 다양 한 악성, 유전, 그리고 전염병6,7,8,를 맞게 되었습니다 유전자 편집 전략 9,10. 쥐, 개, NHPs를 포함 한 작은 큰-동물 모델의 여러에서 기능과 유전자 수정 HSPCs의 engraftment를 평가할 수 있습니다. 특히, NHP 모델은 많은 시 약, 예를 들어 CD34 CD90, 같은 HSPC 세포 표면 단백질을 위한 특정 항 체를 번갈아 인간과 NHP 셀에 사용할 수 있기 때문에 유리. 또한, 마우스, 달리 NHPs 같은 큰 동물 허용 가까이 근사 유전자 수정의 규모의 임상 효능에 필요한. 마지막으로, NHPs 에이즈-1 감염11 같은 인간의 병 리 모델링에 대 한 황금 표준 고 후보 항 암 및 항 HIV immunotherapies12,13신흥 모델 시스템입니다.

이 프로토콜의 목적은 NHP HSPC 주입 제품 준비 및 정화, 유전자 수정 방법 개요입니다. 이 프로토콜의 범위 밖에 서 우리는 이전에 표시 있지만 이러한 제품 헌 NHP 호스트에서 engraft 모든 조 혈 계보, 하 고 질병 모델1의 광범위 한 범위에서 치료 효능을 제공 합니다. 우리 또한 engrafting HSPCs의 clonality를 특징 하 고 속도 론, 매매, 및 개별 HSPCs 및 그들의 자손, 다음 헌 이식1,14형 추적 플랫폼을 구축. 여기에 제시 된 방법은 다음과 같은 목표와 함께 개발 되었습니다: i)를 매우 순수한 HSPCs 장기 engrafting HSC 하위 집합, ii) 게 유지와 ex vivo 문화, 동안 원시 HSCs iii)를 효율적으로 유전자-수정 중 대량 HSPCs 격리 또는 장기 HSC 하위 집합 engrafting 형광 활성화 된 세포 (FACS), 격리 phenotypically/기능적으로 뚜렷한 HSPC 인구, 많은 그룹2,15의 방법으로 일관 된 정렬 뿐만 아니라 자기 기반 셀 정렬 (맥)을 고용 16. 문화에 기본 HSCs의 유지 보수 (즉, 림프 및 골수성 하위 집합을 분화 완전 하 일으키 다하고 창시자로이 세포의 분화를 최소화) 여기에 설명 된 프로토콜의 필수적인 일 면 이다. 비록 우리는 원시적인 형17,18, 여기, 유지 하면서 HSPCs를 확장 하는 접근을 특징 이전는 최소한의 (48 h) 통해 HSCs를 유지에 초점을 맞추고와 ex vivo 문화 정의 하는 프로토콜을 설명 합니다.

HSPCs 및 HSC의 효율적인 수정 하위 집합이이 프로토콜의 중앙 목표 이다. 몇 가지 방법을 우리는 보고, 중 2 개는 지금까지 가장 조사에서 임상 시험: LV 중재 유전자 수정 및 편집1,,619nuclease 중재 하는 유전자. 유전자 편집 전략 특히 관심의 대상된 유전자 수정 nuclease 플랫폼의 수 중 하나를 사용, 예를 들어 C C chemokine 수용 체 타입-5 (CCR5) 치료에 대 한 HIV 감염7,19 또는 Bcl11A의 치료에 대 한 hemoglobinopathies6의. 여기, 우리는 유전자 변형 화물 통합 semirandomly 게놈1,,820LV 중재 유전자 수정에 집중 한다. LV 방식의 주요 장점은 (최대 8 또는 9 kilobases) 유전 물질의 대용량을 제공 하는 능력입니다. 유전자 편집 전략 transgene 지정 된 장소에만 통합 하는 관심의 대상으로 동종 기증자 재결합 (HDR)에 의해 개발 되고있다, 하지만 이러한 방법을 더 생체 외에서 그리고 작은 동물 모델 개발이 필요 합니다. 대조적으로, LV 벡터 사용 되었습니다 광범위 하 게 NHPs와 환자21,22. 중요 한 것은, 사용 하는 시작 HSPC 소스로 BM 액, 여기에 설명 된 프로토콜 적응 수 있다 수 쉽고 광범위 하 게, 예를 들어 PBSCs을. 위에서 설명한 대로 우리 두 종에 적용 되는 시 약을 사용 하 여 NHPs와 인간 사이의 유전적 유사성의 높은 학위의 활용. 마지막으로,이 이렇게 맞게 조정 되었습니다 다른 조 혈 하위 집합, 즉 T 세포12,,2324; 수정 하 효과 T 세포 immunotherapy 접근의 출현이이 프로토콜에서 동일한 LV 플랫폼 무 겁 게 의존 하고있다. 이러한 메서드는 모든 연구원 HSPC 생물학 또는 LV 중재 유전자 수정에 적합 합니다. 여기에 제시 된 HSPC 정화 프로토콜 소설 HSC 농축 하위 집합의 특성을 사용 하는 수 예를 들어 앞에서 설명한1,,1525. 마찬가지로, 여기에 제시 하는 방법 수 마찬가지로 LV 변환 적용 되며 다른 수많은 세포 유형 및 실험적인 질문, 둘 다 생체 외에서 그리고 vivo에서 모델에 대 한 개발.

요약 하자면, 우리는 분리 및 유전자 NHP HSPCs를 수정 하는 방법을 제시. 이러한 메서드는 다른 종 및 HSPCs의 다른 소스에 쉽게 적용할 수 있습니다. 이 철저 하 게 검증 된 프로토콜 수많은 인간의 질병에 대 한 효과가 치료의 모델링에 큰 약속을 보여줍니다.

Protocol

헌 NHP 이식, 못쓰게 (동원), 셀, 및 유전자 수정 컬렉션 이전 게시 프로토콜26일치 실시 합니다. 모든 실험 절차 검토 및 승인 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 프레드 허 친 슨 암 연구 센터와 워싱턴 대학 (프로토콜 #3235-01). 모든 연구는 관심과 건강의 국가 학회 (“가이드”);의 실험 동물의 사용에 대 한 가이드의 권장에 따라 실시 동물 연구에 무작위로 지정 되었다. <p class="jove_…

Representative Results

위에서 설명한 프로토콜은 격리 하 고 유전자 수정 NHP CD34 설계 되었습니다+ HSPCs, 이후 헌 호스트 (그림 1 및 그림 2)에 다시 들어갈 수 있습니다. 이 프로토콜에 따라 때 우리가 일반적으로 피그 원숭이에서 끝났다 BM에서 8 x 10까지9 총 Wbc 얻을 그리고, 때때로, 붉은 털 원숭이에서 그 금액을 두 번. 두 종, CD34의 수…

Discussion

LV 벡터 엔지니어링은 유전자 수정 CD34 셀 유형 베스트 특징이 방법+ HSPCs, 이후 이식 vivo에서. 여기에 설명 된 프로토콜은 유전자 수정 HSPCs, vivo에서 장기 유지의 수를 극대화 하 고 다양 한 악성, 감염 및 유전 질환을 가진 환자에 게 임상 혜택을 제공 설계 되었습니다. 유전자 편집 전략 지난 10 년간 등장, LV 수정 세포는 최고의 생체 외에서, 동물 모델, 그리고 환자1,</s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는이 원고, 그래픽 디자인, 짐 Woolace 그리고 베로니카 넬슨과 Devikha Chandrasekaran 프로토콜의 개발에 참여를 준비 하기 위한 헬렌 크로포드를 감사 합니다. 이 프로토콜의 개발 알레르기의 NIH 국립 연구소와 전염병 (R01 AI135953와 H.P.K. AI138329) 국가 심 혼, 폐, 및 혈액 연구소 (R01 HL136135, HL116217, P01 HL122173, 및 U19에서 교부 금에 의해 지원 되었다 H.P.K. HL129902), NIH P51 OD010425 뿐만 아니라, 일부 NIH/NCI 암 센터, 지원 그랜트 P30 CA015704를 통해. H.P.K.는 마 키 분자 의학 탐정 세포 및 유전자 치료에 대 한 암 연구와 프레드 허 치 부여의 자에 대 한 지원의 호세 카레라스/E. Donnall 토마스 부여 자의 취임 받는 사람으로 받은.

Materials

Stemspam SFEM II ("HSPC") Media StemCell 09655
Hank's Balanced Salt Solution Gibco 14175095
Phosphate-Buffered Saline Gibco 14190-144
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140-122
Dimethyl Sulfoxide Sigma Aldrich D2650-100
100% Ethanol Decon labs M18027161M
Cyclosporine Sigma 30024-25MG
500 mM EDTA Invitrogen 15575-038
Heat-Inactivated Fetal Bovine Serum Sigma Aldrich PS-0500-A
CH-296/ RetroNectin (2.5 mL, 1 µg/µL) TaKaRA T100B
Bovine Serum Albumin Sigma A7906-100g
HEPES Sigma H9897
Rat anti-mouse IgM magnetic beads Miltenyi Biotec 130-047-301
Recombinant HumanStem Cell Factor (SCF) Peprotech 300-07
Recombinant Human Thrombopoietin (TPO) Peprotech 300-18
Recombinant Human FMS-like tyrosine kinase 3 (FLT-3) Peprotech 300-19
Protamine sulfate Sigma P-4505
14 mL Polypropylene Round-Bottom Tube Corning 352059
Colony Gel 1402 ReachBio 1402
QuadroMACS Separators Miltenyi Biotec 130-090-976
MACS L25 Columns Miltenyi biotec 130-042-401
10 mM PGE2 Cayman Chemical 14753-5mg
TC-treated T-75 flasks Bioexpress T-3001-2
Non-TC-treated T-75 flasks Thermo-Fisher 13680-57
20 ml syringes BD Biosciences 302830
16.5 G needles BD Precision 305198
Syringe Tip Cap BD Biosciences 305819
QuickExtract DNA Solution Epicentre QE09050
8-tube strip cap PCR Tubes USA scientific 1402-2708
96-well Thermocycler Thermo-Fisher 4375786
Pre-Separation filters Miltenyi Biotec 130-041-407
Strainer, Cell; BD Falcon; Sterile; Nylon mesh; Mesh size: 70um; Color: white; 50/CS fisher scientific 352350
Ultracomp ebeads eBioscience 01-2222-42
MACSmix Tube Rotator Miltenyi 130-090-753
3 mL Luer-Lock Syringes Thermo-Fisher 14823435
35 mm x 10 mm cell culture dish Corning 430165
60 mm x 15 mm cell culture dish Corning 430196
150 mm x 25 mm cell culture dish Corning 430599
Non TC treated flasks Falcon 353133
Qiagen DNA extraction Qiagen 51104
PE Anti-Human CD90 (Thy1) Clone:5E10 Biolegend 328110
PE-CF594 Mouse Anti-Human CD34 Clone:563 BD horizon 562449
APC-H7 Mouse Anti-Human CD45RA Clone: 5H9 BD Pharmingen 561212
V450 Mouse Anti-NHP CD45 Clone:d058-1283 BD Biosciences 561291
Autologous Serum Collected from autologous host and cryopreserved prior to mobilization and collection of CD34+ HSPCs N/A Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010).
Virus-Conditioned Media (VCM) Kiem Lab, FHCRC Co-operative Center for Excellence in Hematology (CCEH) N/A Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010).
Anti-CD34 antibody, Clone 12.8 Kiem Lab N/A Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010).
Lenti F primer: AGAGATGGGTGCGAGAGCGTCA Integrated DNA Technologies N/A Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016).
Lenti R primer: TGCCTTGGTGGGTGCTACTCCTAA Integrated DNA Technologies N/A Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016).
Actin F primer: TCCTGTGGCACTCACGAAACT Integrated DNA Technologies N/A Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016).
Actin R primer: GAAGCATTTGCGGTGGACGAT Integrated DNA Technologies N/A Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016).

References

  1. Radtke, S., et al. A distinct hematopoietic stem cell population for rapid multilineage engraftment in nonhuman primates. Science Translational Medicine. 9 (414), (2017).
  2. Majeti, R., Park, C. Y., Weissman, I. L. Identification of a hierarchy of multipotent hematopoietic progenitors in human cord blood. Cell Stem Cell. 1 (6), 635-645 (2007).
  3. Notta, F., et al. Isolation of single human hematopoietic stem cells capable of long-term multilineage engraftment. Science. 333 (6039), 218-221 (2011).
  4. Hoggatt, J., et al. Rapid mobilization reveals a highly engraftable hematopoietic stem cell. Cell. 172 (1-2), 191-204 (2018).
  5. Chandrasekaran, D., Nakamoto, B., Watts, K. L., Kiem, H. P., Papayannopoulou, T. Modeling promising nonmyeloablative conditioning regimens in nonhuman primates. Human Gene Therapy. 25 (12), 1013-1022 (2014).
  6. Humbert, O., Peterson, C. W., Norgaard, Z. K., Radtke, S., Kiem, H. P. A nonhuman primate transplantation model to evaluate hematopoietic stem cell gene editing strategies for beta-hemoglobinopathies. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 8, 75-86 (2018).
  7. Peterson, C. W., et al. Differential impact of transplantation on peripheral and tissue-associated viral reservoirs: Implications for HIV gene therapy. PLoS Pathogens. 14 (4), e1006956-e1006956 (2018).
  8. Zhen, A., et al. Long-term persistence and function of hematopoietic stem cell-derived chimeric antigen receptor T cells in a nonhuman primate model of HIV/AIDS. PLoS Pathogens. 13 (12), e1006753 (2017).
  9. Moffett, H. F., et al. Hit-and-run programming of therapeutic cytoreagents using mRNA nanocarriers. Nature Communications. 8 (1), 389 (2017).
  10. Burtner, C. R., et al. Intravenous injection of a foamy virus vector to correct canine SCID-X1. Blood. 123 (23), 3578-3584 (2014).
  11. Evans, D. T., Silvestri, G. Nonhuman primate models in AIDS research. Current Opinion in HIV and AIDS. 8 (4), 255-261 (2013).
  12. Taraseviciute, A., et al. Chimeric antigen receptor T cell-mediated neurotoxicity in nonhuman primates. Cancer Discovery. 8 (6), 750-763 (2018).
  13. McGary, C. S., et al. CTLA-4(+)PD-1(-) memory CD4(+) T cells critically contribute to viral persistence in antiretroviral therapy-suppressed, SIV-infected rhesus macaques. Immunity. 47 (4), 776-788 (2017).
  14. Beard, B. C., Adair, J. E., Trobridge, G. D., Kiem, H. P. High-throughput genomic mapping of vector integration sites in gene therapy studies. Methods in Molecular Biology. 1185, 321-344 (2014).
  15. Zonari, E., et al. Efficient ex vivo engineering and expansion of highly purified human hematopoietic stem and progenitor cell populations for gene therapy. Stem Cell Reports. 8 (4), 977-990 (2017).
  16. Doulatov, S., et al. Revised map of the human progenitor hierarchy shows the origin of macrophages and dendritic cells in early lymphoid development. Nature Immunology. 11 (7), 585-593 (2010).
  17. Fares, I., et al. Cord blood expansion. Pyrimidoindole derivatives are agonists of human hematopoietic stem cell self-renewal. Science. 345 (6203), 1509-1512 (2014).
  18. Gori, J. L., et al. Endothelial cells promote expansion of long-term engrafting marrow hematopoietic stem and progenitor cells in primates. Stem Cells Translational Medicine. 6 (3), 864-876 (2017).
  19. Peterson, C. W., et al. Long-term multilineage engraftment of autologous genome-edited hematopoietic stem cells in nonhuman primates. Blood. 127 (20), 2416-2426 (2016).
  20. Peterson, C. W., et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 3, 16007 (2016).
  21. Thompson, A. A., et al. Gene therapy in patients with transfusion-dependent beta-thalassemia. The New England Journal of Medicine. 378 (16), 1479-1493 (2018).
  22. Eichler, F., et al. Hematopoietic stem-cell gene therapy for cerebral adrenoleukodystrophy. The New England Journal of Medicine. 377 (17), 1630-1638 (2017).
  23. Paul, B., et al. Efficient enrichment of gene-modified primary T cells via CCR5-targeted integration of mutant dihydrofolate reductase. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 5 (9), 347-357 (2018).
  24. Levine, B. L., Miskin, J., Wonnacott, K. Global manufacturing of CAR T cell therapy. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 4, 92-101 (2017).
  25. Masiuk, K. E., et al. Improving gene therapy efficiency through the enrichment of human hematopoietic stem cells. Molecular Therapy. 25 (9), 2163-2175 (2017).
  26. Trobridge, G. D., et al. Efficient transduction of pigtailed macaque hematopoietic repopulating cells with HIV-based lentiviral vectors. Blood. 111 (12), 5537-5543 (2008).
  27. Beard, B. C., et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354 (2010).
  28. Horn, P. A., et al. Efficient lentiviral gene transfer to canine repopulating cells using an overnight transduction protocol. Blood. 103 (10), 3710-3716 (2004).
  29. Adair, J. E., et al. Semi-automated closed system manufacturing of lentivirus gene-modified haematopoietic stem cells for gene therapy. Nature Communications. 7, 13173 (2016).
  30. Kutner, R. H., Zhang, X. Y., Reiser, J. Production, concentration and titration of pseudotyped HIV-1-based lentiviral vectors. Nature Protocols. 4 (4), 495-505 (2009).
  31. Salmon, P., Trono, D. Production and titration of lentiviral vectors. Current Protocols in Human Genetics. 54 (1), (2007).
  32. Geraerts, M., Willems, S., Baekelandt, V., Debyser, Z., Gijsbers, R. Comparison of lentiviral vector titration methods. BMC Biotechnology. 6, 34 (2006).
  33. Kiem, H. P., et al. Improved gene transfer into baboon marrow repopulating cells using recombinant human fibronectin fragment CH-296 in combination with interleukin-6, stem cell factor, FLT-3 ligand, and megakaryocyte growth and development factor. Blood. 92 (6), 1878-1886 (1998).
  34. Morton, W. R., Knitter, G. H., Smith, P. M., Susor, T. G., Schmitt, K. Alternatives to chronic restraint of nonhuman primates. Journal of the American Veterinary Medical Association. 191 (10), 1282-1286 (1987).
  35. Noser, J. A., et al. Cyclosporine increases human immunodeficiency virus type 1 vector transduction of primary mouse cells. Journal of Virology. 80 (15), 7769-7774 (2006).
  36. Uchida, N., Hsieh, M. M., Washington, K. N., Tisdale, J. F. Efficient transduction of human hematopoietic repopulating cells with a chimeric HIV1-based vector including SIV capsid. Experimental Hematology. 41 (9), 779-788 (2013).
  37. Cornetta, K., Anderson, W. F. Protamine sulfate as an effective alternative to polybrene in retroviral-mediated gene-transfer: implications for human gene therapy. Journal of Virological Methods. 23 (2), 187-194 (1989).
  38. Goerner, M., et al. The use of granulocyte colony-stimulating factor during retroviral transduction on fibronectin fragment CH-296 enhances gene transfer into hematopoietic repopulating cells in dogs. Blood. 94 (7), 2287-2292 (1999).
  39. Dao, M. A., Hashino, K., Kato, I., Nolta, J. A. Adhesion to fibronectin maintains regenerative capacity during ex vivo culture and transduction of human hematopoietic stem and progenitor cells. Blood. 92 (12), 4612-4621 (1998).
  40. North, T. E., et al. Prostaglandin E2 regulates vertebrate haematopoietic stem cell homeostasis. Nature. 447 (7147), 1007-1011 (2007).
  41. Goessling, W., et al. Prostaglandin E2 enhances human cord blood stem cell xenotransplants and shows long-term safety in preclinical nonhuman primate transplant models. Cell Stem Cell. 8 (4), 445-458 (2011).
  42. Booth, C., Gaspar, H. B., Thrasher, A. J. Treating immunodeficiency through HSC gene therapy. Trends in Molecular Medicine. 22 (4), 317-327 (2016).
  43. Humbert, O., et al. Rapid immune reconstitution of SCID-X1 canines after G-CSF/AMD3100 mobilization and in vivo gene therapy. Blood Advances. 2 (9), 987-999 (2018).

Play Video

Citer Cet Article
Radtke, S., Perez, A. M., Venkataraman, R., Reddy, S., Haworth, K. G., Humbert, O., Kiem, H., Peterson, C. W. Preparation and Gene Modification of Nonhuman Primate Hematopoietic Stem and Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (144), e58933, doi:10.3791/58933 (2019).

View Video