여기, 우리는 어떻게 작은 각 엑스레이 뿌리기 (SAXS) 고분자 구조를 나타내는 저해상도 봉투에 대 한 정보를 활용할 수 있습니다 제시. 고해상도 구조 기술 엑스레이 결정학, 핵 자기 공명 등와 함께에서 사용 될 때 SAXS 다중 도메인 단백질 및 고분자 복합물 솔루션에 대 한 자세한 통찰력을 제공할 수 있습니다.
도메인이 여러 개인 구형 단백질을 포함 하는 단백질 단백질 상호 작용 어떻게 같은 단지 형태와 도메인 지향/위치는 어떻게 결정에 대 한 기술적인 도전을 제시. 여기, ab의 initio 모델링을 통해 multicomponent 시스템에는 특정 도메인 중재 하십시오 상호 작용 elucidating에 대 한 잠재력을 가진 프로토콜을 설명 합니다. 고분자 및 그들의 어셈블리 솔루션 구조를 계산 하는 방법 관련 된 작은 각 엑스레이 뿌리기 (SAXS), 크로마토그래피, 그리고 하이브리드 접근 방식 함께 원자 해결책 구조에서 데이터를 통합 하는 제공 됩니다. 구체적인 예를 전체 길이 nidogen-1, 세포 외 기질 단백질을 조립 하 고 형성 하는 확장, 곡선 nanostructure의 복잡 한. 하나는 구형 도메인 laminin γ-1, 지하실 멤브레인 구조에 연결 합니다. 이 유연한 다중 도메인 단백질 복합물의 정확한 구조를 결정 하기 위한 기초를 제공 하 고 자동화 로봇 및 크기 배제 크로마토그래피 시스템 함께 싱크 로트 론 근원에 의해 활성화 됩니다. 이 조합은 급속 한 분석을 여러 oligomeric 상태 SAXS 데이터 수집 직전 분리 되어 있습니다. 분석 선회, 입자 크기, 분자 모양과 우선 페어링의 반지름에 대 한 정보를 생성합니다. 구성 요소 단백질의 고해상도 구조를 피팅 하 여 단지의 3D 모델을 생성 하기 위한 프로토콜도 제공 됩니다.
셀 역할을 분자 기계 신호 폭포 및 구조적 무결성 관리 같은 세포질 기능을 수행 하는 단백질의 복잡 한 네트워크를 포함 합니다. 이러한 다양 한 구성 요소 이동 및 3 차원 공간에서 상호 작용 하는 방법으로 고분자의 특정 기능에 상승을 제공 합니다. 단백질 구조, 역동성, 및 상호 작용 기능을 결정의 중요성은 이러한 속성을 측정 하기 위해 지속적으로 진화, 복잡 한 기술에 대 한 필요를 제공 했다. 이들의 핵 자기 공명 (NMR), 엑스레이 결정학 (XRC) 등 최근, Cryo 전자 현미경 검사 법 (CEM) 고해상도 구조 정보 제공. 그러나, XRC CEM 많은 바이오 상태 중의 구조를 생성 하 고 NMR에 의해 3 차원 구조 결정은 일반적으로 작은 구형 단백질을 제한 하는 동안 단백질 구조 역학에 대 한 정보 부족. 이러한 한계를 극복 하기 위해 한 가지 방법은 작은 각 x 선 산란 (SAXS), 다중 도메인, 큰 또는 complexed 시스템의 분자 봉투를 생성 하 고 전역 명료 고해상도 딱딱한 고분자 구조를 결합을 활용 하는 건축 및 동적 기능입니다.
SAXS는 구조 뿐만 아니라 복잡 한 표시 동적 특성에 뿐만 아니라 통찰력을 주는 약 10-20 Å 1의 해상도 가진 고분자 복합물의 저해상도 봉투 생성 합니다. SAXS는 분자 구조를 밝히기 위해 엑스레이 활용, 비록 그것입니다 XRC 달리 솔루션에서 입자의 무작위 등방성 방향 회절, 아니라 오히려 산란, 원자 분해능을 얻을 수 없습니다 리드 하지 않습니다. 대신, 전자는 고분자의 “봉투”는 고분자 표시 conformations의 평균을 나타내는 생성 됩니다. 이 정보는 단일 단백질 또는 소 단위 조직, 유연성 또는 더 큰, 다중 단백질 복잡 한 역학의 영역을 유추할 수 직접 피팅 이전 해결된 원자 해결책 구조에 사용할 수 있습니다. SAXS 데이터는 고 에너지 단색 엑스레이 사용 하 여 synchrotrons 또는 약한 x-레이 소스 샘플 노출 시간 (그림 1)의 초 보다 시간을 요구를 제공 하는 내부 소스에서 수집 됩니다. SAXS 데이터는 종종 여러 샘플 하나의 실험적인 체제와 시스템에 유용한 데이터의 수집에 오랜된 시간을 필요로 하는 버퍼에서에서 수집 됩니다. 샘플, 따라서 해야 안정적이 고 비 집계 동적 산란 (DLS) 등 높은-품질 SAXS 데이터2 를 분석 ultracentrifuge (AUC) 분석 검증 품질 관리 방법에 따라 적어도 몇 시간에 대 한 , 3. 우리가 짧게에 ab initio 모델링을 사용 하 여 감동과 함께 SAXS, 그것의 사용, 혜택, 한계 및 샘플 준비와 초점에 무 겁 게 데이터 수집 및 분석, 뒤에 원리의 실제적인 설명 제공에 세포 외 기질 단백질 nidogen-1과 laminin γ-1 실험 예를 들어.
원칙, 혜택, 그리고 SAXS의 한계:
SAXS 뒤에 지도 principle(s)은 비교적 간단 하다: 관심의 macromolecule(s)의 monodispersed 준비의 솔루션 모 세관 내에서 배치 되 고 고 에너지 단색 x 선 빔에 노출 됩니다. 광자 원인 진동, 하려면 원자 포탄의 전자 같은 에너지와 파장의 방출 되는 구형 파의 결과로. 모든 전자 진동 것입니다 지속적인 배경, 달성 될 것 이다 고 결과 전자 밀도 고분자의 배경에 대조 됩니다. 결과 산란 강도 산란 각도, 2Θ의 기능으로 수집 됩니다 (그림 1).
다른 기술 하면서 XRC, NMR, CEM 구조 정보 제공 원자 수준에서와 같은 다른 기술을 제공할 수 없습니다 SAXS에 여러 이득이 있다. SAXS 거의 모든 버퍼에 수행할 수 있습니다 그리고 어떤 특별 한 샘플 준비를 필요 하지 않습니다. 이 모노-또는 divalent 양이온 또는 pH4,5변경의 유무 등 다양 한 조건 하에서 고분자의 구조와 동작을 공부에서 특히 중요 하다. SAXS는 고분자6, 뭔가 다른 나열 된 기술을 투쟁 수 유연한 영역에 대 한 정보를 제공 하는 기능이 있다. 그러므로, SAXS는 강한 무료 고분자의 안정적인 부분 XRC, NRM 또는 CEM와 전체 고분자 공부 또는 복잡 한 SAXS 낮은 해상도 분석 기술과 같은 다양 한 분석 도구를 사용 하 여 결합으로 사용 될 수 있습니다. FoXSDock7 또는 CRYSOL8. SAXS 솔루션 기술 이기 때문에, XRC에서 얻은 그 같은 정적 구조 솔루션6에서 경우 확인 하려면 자주 사용 됩니다. SAXS는 또한 상대적으로 적은 양의 샘플 투자 (일반적으로 50-100 µ L)과 상대적으로 작은 양의 실험 시간 (30 분-1 시간)을 요구 하는 기술 되 고의 이점이 있다.
SAXS의 가장 큰 한계는 샘플 집계 및 저하, 잘못 된 구조 예측으로 이어질 수 있는 취약점 이다. 집계도 5%로 낮은 수 있습니다 최대 입자 크기 (D최대)와 반지름 (Rg) 선회의 과대평가로 이어지는 매우 높은 금액에 빛을 피해 라. 다른 한편으로, 분자 속성의 과소 평가 샘플 저하 될 수 있습니다. 이 취약점은 SAXS는 평균 기법 샘플 동질성은 안정적이 고 재현 가능한 결과 달성 하는 중요 한 의미 되 고에서 발생 합니다. SAXS에 의해 분석 하는 모든 샘플 정화 및 동질성 검사, 변성 및 네이티브 젤 전기 이동 법, 크기 배제 크로마토그래피, 비 산, 동적 빛의 여러 방법의 받을 따라서, 분석 ultracentrifugation입니다. 종종, SAXS beamlines SAXS (S-SAXS)3,9시 전에 최종 품질 관리로 고성능 액체 착 색 인쇄기를 통해 샘플 단계 실행 됩니다. SAXS 데이터 여러 농도에서 수집 되어야 하 고 각 데이터 집합의 Rg 비교 해야, interparticle 상호 작용 및 집계, 입자의 과대평가 방지 하기 위해 가까운 유사성을 보장 치수, 부정확 한 데이터 분석 및 모델링. 분산 농도 및 크기에 따라, 이후 작은 고분자의 농도 범위는 좀 더 구체적인 최적화가 필요할 수 있습니다. 이것은 상호 정리, 큰 크기 작은 각도 작은 크기 큰 각도 쪽으로 향해 흩어입니다. 이 데이터 수집, 나오 가 비례 R6, R은 입자 반지름에에서 명시 한다. SAXS의 최종 한계 노출, 데이터의 왜곡으로 이어질 수 있는 동안 샘플에 방사선 손상 위한 잠재력을 이다. 그것은이 하지 발생 되도록 SAXS 샘플 노출 전후 샘플 품질을 비교 하는 것이 좋습니다.
이 종이 포함 버퍼 빼기, Guinier 분석, Kratky 분석, 데이터 병합 및 P(r) 배포의 프로토콜에서에서 설명 하는 SAXS 데이터 분석의 중요 한 단계. Ab initio 비드 모델링 너무 광범위 한 여기 자세히 덮여 있을 것 이며 따라서 짧게 덮여만.
Synchrotrons (예: 독일에서 DESY, 영국에서 다이아몬드와 프랑스에서 ESRF), 그것은 SAXS는 아주 작은 분수에 대 한 데이터를 수집할 수 (~ 몇 µ L)으로 분수 각 샘플의는 되 고 eluted s 열에서 즉 연결 된 인라인 (참조 그림 1 ). 탄력적 흩어져 SAXS 데이터 버퍼 빼기 자리를 차지할 수 전에 악기 제조 업체 나는 싱크 로트 론을 제공 하는 패키지를 사용 하 여 평균 광선 이다. 결과 1 D 데이터 Y에 ( 내가(q))에 흩어져 빛의 양을 나타냅니다-축 및 산란 각도 (q= 4πsinθ/λ, λ가 파장 사건 X-광선) 그림 1에 제시 된. 프리머스/qt12 프로그램 어떤 배경 때문에 버퍼를 직접 사용 하 고 섹션 1.1에서에서 설명. 다른 프로그램으로; ScÅtter43 ( www.bioisis.net에서 다운로드)와 https://www.youtube.com/channel/UCvFatdC5HcZOLv6OSjblfeA, 그리고 bioXtas 원시44 ( 에서 https://에 제공 되는 자습서 bioxtas-raw.readthedocs.io/en/Latest/index.html) ATSAS 패키지의 대 안으로 이용 될 수 있다.
Guinier 분석 샘플 집계 동질성 뿐만 아니라 선회 반경 (Rg)를 제공 하는 낮은 s 지역14SAXS 데이터에 따라 관심의 고분자에 대 한 정보를 제공 합니다. 음모는 SAXS 데이터 곡선 q 1.30 최대의 최대 범위와 맞춤 다음 각 농도에서 얻은 프리머스/qt 구성 Rgx. 반면에 비선형 Guinier 집계 결과 플롯15,16monodispersed 샘플 준비 (그림 2D),이 지역에서 선형 Guinier 플롯을 제공 해야 합니다. Guinier 분석 선형 이면 강 체 모델링 수행 또는 저해상도 모델의 앙상블을 만들 것인지를 결정할 때 유용 Kratky 음모와 관심의 고분자의 “unfoldedness”의 정도 관찰할 수 있습니다. 구형 단백질 분자를 확장 하는 반면 종 모양의 곡선을 플롯 또는 펼친된 펩 티 드 고원 또는 심지어 더 큰 q 범위에서 증가 하 고 부족 한 종-모양 (그림 2C)를 표시 하는 Kratky에 표시 됩니다.
그러나 1 D 점도 (그림 2D)의 낮은 q 영역에서 데이터 요소를 고려만 Guinier 분석에서 Rg 를 취득,, 그것은 거의 전체 데이터 집합을 사용 하 여 간접 푸리에 변환을 수행할 수 실제 공간 거리 분포 함수 (P(r)) D맥스 와 Rg 에 정보를 제공으로 ln (I (q)) 대 (q)의 상호 공간 정보를 변환 하려면 (그림 2B) P(r) 음모의 모양 관심18,19의 고분자의 총 솔루션 구조를 나타냅니다. 실제 공간 데이터를 상호 공간 데이터의 변환을 중요 한 단계 이지만 자세한 설명은이 문서의 범위 내에서 아니에요. 따라서, Svergun20 각 매개 변수를 이해 하는 문서를 참조 하십시오.
일단 버퍼 뺀 데이터 개별 농도에서 Rg, Kratky 분석을 사용 하 여 그들의 접는 패턴을 조사 하 여 다음에 대 한 일관 된 값으로 Guinier 분석을 통해 처리 됩니다, 그리고 이러한 데이터를 병합할 수 있습니다. 병합 된 데이터 위에서 설명한 대로 nidogen-1, laminin γ-1, 그리고 그들의 복합물 처리 하 고 결과 P(r) 플롯 2B를 그림에 표시 됩니다. 이상적으로, 하나 또한 쌍 거리 분포 함수 비슷한 Rg 및 D최대 값을 제공 하는 각 농도 대 한 수집 SAXS 데이터를 각 농도 대 한 P(r)를 계산 해야 합니다. Rg 및 D최대 남아 있으면 비슷한 농도의 넓은 범위는 사용자 진행 해야 합니다. 그 신호를 따라 데이터가 잘릴 수 있습니다 데이터 병합 전에 주목 한다. 이것은 종종 경우 농도 및 조사 고분자의 분자량이 낮은 경우입니다.
다양 한 모드에서 DAMMIN를 사용 하 여 저해상도 모양 분석을 수행할 수 있습니다 (예: 패스트, 슬로우, 전문가 모드, 등). 빠른 모드는 P(r) 음모 제공 좋은 품질 모델을 평가 하는 이상적인 첫 번째 단계입니다. 일반적으로, 적어도 10 모델 경우 저해상도 구조 재현 가능한 결과 얻을 수 있습니다, χ (0.5-1.0의 값으로 간주 됩니다 좋은 우리의 광범위 한 작업에 따라 적합된 매개 변수의 낮은 선 확인 각 P(r) 음모에 대 한 얻을 수 있어야 ), 실험적으로 수집된 SAXS 데이터와 모델에서 파생 된 데이터 계약을 설명 하는 값. 게시를 위해, 우리는 일반적으로 느림 또는 전문가 모드를 사용 하 고 적어도 15 모델 계산. DAMMIN, 뿐만 아니라 그것, DAMMIF37, 뿐만 아니라 GASBOR38 의 더 빠른 버전 대안 있습니다. 또한, 단백질-단백질 또는 단백질 핵 산 단지 공부, MONSA 프로그램35, 고분자 뿐만 아니라 그들의 복잡 한에 대 한 개별 SAXS 데이터의 동시 피팅을 용이 하 게 사용 가능 하다. 에 대 한 자세한 내용은 RNA-단백질 상호 작용 연구를 위해 또한 고해상도 모델 계산, 파 텔 외3에 의해 최근 기사를 참조.
SAXS는 이론적으로 간단 하지만 의심할 여 지 없이 다른 구조 생물학 도구 및 결과 자체에 사용할 수 있는 구조적 데이터의 저해상도 또는 고해상도 기법을 정보를 명료 하 게와 함께에서 매우 보완 방법 고분자 구조와 역학에 대 한 으로 고분자와 그들의 단지 monodispersed 준비를 얻을 수 있습니다, SAXS 솔루션에 구조 생물학 고분자의 모든 종류의 상호 작용을 공부 하 고 활용할 수 있습니다. 여기서 설명 하는 복잡 한 경우 그것은 놀라운 그 적은 질소 1과 laminin의 전반적인 액세스할 수 표면적의 10% 보다 γ-1은 매장이 복잡 한 반면 두 단백질의 도메인의 나머지는 자유롭게 다른 상호 작용에 액세스할 수 (그림 3)의 구조적 강성을 유지 하는 세포 외 기질에 단백질. 복잡 한에 대 한 정보를 얻기 ~ 240kDa 다른 구조 생물학 기술이 엑스레이 결정학, NMR, Cryo-EM 현미경을 사용 하 여 매우 어려운 것입니다.
엑스레이 결정학 또는 NMR을 통해 잠복 단백질 구조는 기본적으로 시간이 걸리는 과정입니다. 구조 결정에서이 병목은 SAXS 구조적 기술; 그것의 힘을 표시 한 지역 단일 SAXS 실험에 대 한 데이터 수집 시간을 걸릴 수 있으며 유선형된 분석 소프트웨어의 도움으로 분석 할 수 있습니다 신속 하 고 효율적으로. SAXS는 크게 처리량을 증가 구조 연구는 독립 실행형 기술로 고해상도 데이터를 사용할 수 전에 고분자 구조의 저해상도 모델을 제공 하기 때문에. 다른 구조 기술에 방 벽은 시간의 긴 기간 동안 단백질 식 및 안정성의 높은 레벨을 필요로 하는 데이터 수집에 대 한 매우 순수 하 고, 집중 샘플에 대 한 요구 사항. SAXS 또한 순수 하 고 집중 될 필요가 샘플, 샘플 볼륨은 약 100 µ L 만들기 SAXS 분석 다른 구조 기술에 비해 상대적으로 저렴 한 방법. 또한, SAXS 크기 배타 착 색 인쇄기와 결합 되고있다 점점 일반적인 추가 품질 관리 단계를 제공 합니다. 최근 앙상블 최적화 방법 (엄)45,46 을 사용 하 여 유연한 시스템을 명료 하 게 하는 NMR 및 SAXS 데이터의 조합에 강한 발전 되었습니다. Mertens와 Svergun47에 의해 최근 논문에서 저자 NMR, 함께 NMR와 함께에서 사용 되 고 SAXS 데이터의 많은 다른 예제와 함께 조합에 엄 SAXS의 여러 최근 사례를 설명 합니다. 진보, SAXS의 분야에서 계속 해 서 만들어지고는 그리고 새로운 기술을 하지 그냥 다른 구조 기술에 무료, SAXS와 함께에서 사용할 수에 대 한 개발 되고있다. 따라서, 우리는 SAXS에 대 한 수요가 시간이 지남에, 특히 동적 시스템 기능 유연성에 의해 정의 된 특징을 NMR와 함께에 증가할 것 이다 믿는다.
The authors have nothing to disclose.
이 프로젝트는 NSERC RGPIN-2018-04994, 캠퍼스 앨버타 혁신 프로그램 (RCP-12-002 C) 및 앨버타 프리온 연구소에 의해 지원 되었습니다 / 앨버타 혁신적인 바이오 솔루션 (201600018) 보조금 지 TRP 수 여는 RNA에 캐나다 연구의 자 & 생물 물리학 단백질 (201704)과 NSERC 발견 그랜트 (RGPIN-2017-04003) 인정. TM 자금 NSERC 발견 그랜트 TRP.에 의해
HEK 293 EBNA Cell Line | In-Lab availability | – | Cell line used to overexpress protein(s) |
Ni Sepharose High Performance histidine-tagged protein purification resin | GE Healthcare | 17524801 | Affinity protein purification resin |
Superdex 200 Increase 10/300 | GE Healthcare | 28990944 | SEC Column |
ÄKTA Pure FPLC | GE Healthcare | – | FPLC System |
Nanodrop | Nanodrop | – | Spectrophotometer |
Basic Reagents (NaCl, Tris-HCl etc.) | |||
S-MAX3000 | Rigaku | – | SAXS Pinhole Camera System |
Zetasizer Nano-S | Malvern Instruments Ltd | – | Dynamic Light Scattering instrument |
0.1µm Filter | Millipore | JVWP04700 | Used to Concentrate Sample Prior to DLS |
Thrombin cleavage kit | abcam | ab207000 | Thrombin cleavage to remove His tag |
Strep-Tactin Sepharose Column | IBA | 2-1201-010 | Strep-Tag Affinity Purification |
D-desthiobiotin | Sigma-Aldrich | 533-48-2 | Elution of Strep Tag Protein |
Software | |||
SAXGUI | Rigaku | – | Data Collection for SAXS and data reduction |
ATSAS Suit | Franke et al., 2017 | – | SAXS Data Analysis Software program suite |
PRIMUS | Konarev et al., 2003 | – | Buffer Subtraction |
GNOM | Svergun, 1992 | – | Rg, Dmax and p(r) Calculation |
DAMMIF | Franke and Svergun, 2009 | – | Ab initio model calculation |
DAMAVER | Volkov and Svergun, 2003 | – | Averaged Solution Conformation calculations |
MONSA | Svergun, 1999 | – | Simultaneous model fitting for the complex |
GASBOR | Svergun et al., 2001 | – | Alternative Ab initio model calculations |
DTS Software V6.20 | Malvern Instruments Ltd | – | DLS supplied instrument software |
PyMOL | Schrodinger, LLC. | – | The PyMOL Molecular Graphics System V2.0 |
The Protein Data Bank | Berman et al., 2000 | – | PDB ID: 1NPE |