Hier beschrijven we een methode voor in vivo microdialysis analyseren aspartaat en glutamaat release in de ventrale hippocampus voor epileptische en niet-epileptische rats, in combinatie met EEG-opnames. Extracellulair concentraties aspartaat of glutamaat kunnen worden gecorreleerd met de verschillende fasen van de ziekte.
Microdialysis is een gevestigde neurowetenschappen techniek die correleert de veranderingen van neurologisch werkzame stoffen verspreiden in de interstitiële ruimte van de hersenen met het gedrag en/of de specifieke resultaten van een pathologie (bijvoorbeeld aanvallen voor epilepsie). Bij de studie van epilepsie, wordt de microdialysis-techniek vaak gecombineerd met korte of zelfs lange termijn video-elektro-encefalografie (EEG) toezicht om spontane inbeslagneming frequentie, Ernst, progressie en clustering te beoordelen. De gecombineerde microdialysis-EEG is gebaseerd op het gebruik van verschillende methoden en instrumenten. Hier, we uitgevoerd in vivo microdialysis en continue video-EEG opnemen op glutamaat en aspartaat uitstroom van de monitor na verloop van tijd in verschillende fasen van de natuurlijke geschiedenis van epilepsie in een rat-model. Deze gecombineerde aanpak maakt het mogelijk de koppeling van veranderingen in de release neurotransmitter met specifieke stadia van de ontwikkeling van de ziekte en de progressie. De concentratie van het aminozuur in de dialysate werd bepaald door vloeistofchromatografie. Hier beschrijven we de methoden en het overzicht van de belangrijkste bewarende maatregelen één tijdens in vivo microdialysis moet-EEG, met bijzondere aandacht voor de stereotaxic operatie, basale en hoge kalium stimulatie tijdens microdialysis, diepte elektrode EEG opname en krachtige vloeibare chromatografie analyse aspartaat of glutamaat in het dialysate. Deze aanpak kan worden aangepast voor het testen van een scala aan drugs of ziekte veroorzaakte wijzigingen van de fysiologische concentraties aspartaat of glutamaat in de hersenen. Afhankelijk van de beschikbaarheid van een passende analytische bepaling, kan het verder worden gebruikt voor het testen van verschillende oplosbare moleculen als EEG opname tegelijkertijd in dienst.
Als u wilt bieden inzicht in de functionele aantasting van glutamaat-gemedieerde excitatory en remmende transmissie GABAergic resulterend in spontane aanvallen in de temporale kwab epilepsie (TLE), we systematisch worden gecontroleerd extracellulair concentraties van GABA1 en later de niveaus van glutamaat en aspartaat2 door microdialysis in de ventrale hippocampus van ratten op verschillende tijdstippen van de natuurlijke ziekte cursus, dat wil zeggen, tijdens de ontwikkeling en de vooruitgang van epilepsie. We profiteerde van de TLE pilocarpine model bij ratten, die de ziekte zeer nauwkeurig op het gebied van gedrags-, elektrofysiologische en histopathologische veranderingen3,4 bootst en wij de dialysate concentratie van amino gecorreleerd zuren zijn verschillende fasen: de acute fase na de epileptogene belediging, de latentie fase, het moment van de eerste spontane inbeslagneming en de chronische phass5,6,7. Framing van de fasen van de ziekte werd ingeschakeld door op lange termijn video-EEG toezicht en de precieze EEG en klinische karakterisering van spontane aanvallen. Toepassing van de techniek van de microdialysis in verband met langdurige video-EEG toezicht stond ons voor te stellen van mechanistische hypothesen voor TLE Neuropathologie. Kortom, de techniek beschreven in dit manuscript maakt het mogelijk de koppeling van neurochemical wijzigingen binnen een gedefinieerde hersenen gebied met de ontwikkeling en de progressie van epilepsie in een dierlijk model.
Gepaarde apparaten, samengesteld uit een diepte-elektrode heb geplaatst naar een canule microdialysis zijn vaak werkzaam in epilepsie onderzoeken waar veranderingen in neurotransmitters, hun metabolieten of energie substraten moeten worden gecorreleerd aan Neuronale activiteit. In de overgrote meerderheid van de gevallen, het wordt gebruikt in de dieren vrij te gedragen, maar het kan ook op een vergelijkbare manier mensenhandel, bijvoorbeeldin farmaco-resistente epileptische patiënten die een diepgaand onderzoek van de elektrode voorafgaand aan chirurgie8kunnen worden uitgevoerd. Zowel EEG opname en dialysate collectie kan afzonderlijk worden uitgevoerd (bijvoorbeeldhet implanteren van de elektrode in een halfrond en de microdialysis sonde in het andere halfrond of zelfs de microdialysis uitvoeren in één groep van dieren tijdens het uitvoeren van de enige EEG in een andere groep van dieren). Koppelen van de elektroden aan sondes echter wellicht meerdere voordelen: het vereenvoudigt stereotaxic chirurgie, beperkt weefselschade slechts één halfrond (terwijl anderzijds, intact, als een besturingselement voor histologisch onderzoek), en de resultaten als dit homogenizes zijn verkregen uit de dezelfde regio van de hersenen en hetzelfde dier.
Aan de andere kant, vereist de voorbereiding van de gekoppelde microdialysis sonde-elektrode apparaat vaardigheden en tijd als het zelfgemaakte. Men kan relatief hoge hoeveelheden geld uitgeven als gekocht uit de markt. Bovendien, wanneer microdialysis sondes (sonde tips zijn meestal 200-400 µm in diameter en 7-12 mm lang)9en EEG elektroden (elektrode tips zijn meestal van 300-500 µm in diameter, en lang genoeg om te bereiken de hersenstructuur van belang10) zijn het gemonteerde apparaat gekoppeld, en vertegenwoordigt een omvangrijk en relatief zwaar object aan één zijde van het hoofd, dat is lastig voor de dieren en gevoelig te worden verloren, met name wanneer deze is aangesloten op de pomp van de dialyse en de harde-draads EEG opnamesysteem. Dit aspect is meer relevant in epileptische dieren die zijn moeilijk te behandelen en minder aanpassen aan de microdialysis-sessies. Juiste chirurgische technieken en de juiste post-operatieve zorg kunnen resulteren in langdurige implantaten die minimale dier ongemak veroorzaken en moeten worden gestreefd naar voor combinatorische microdialysis-EEG10,11, experimenten 12.
De voordelen en beperkingen van de techniek van de microdialysis zijn in detail onderzocht door vele neurowetenschappers. Het primaire voordeel ten opzichte van andere in vivo perfusie technieken (bijvoorbeeld, snelle stroom push-pull of corticale cup perfusie) is een kleine diameter van de sonde die een betrekkelijk nauwkeurige van belang13,14oppervlakte, 15. Ten tweede, het microdialysis-membraan creëert een fysieke barrière tussen het weefsel en het perfusaat; Daarom, hoog-moleculair gewicht stoffen niet doen oversteken en interfereert niet met de analyse16,17. Bovendien, het weefsel is beschermd tegen de turbulente stroming van het perfusaat18. Een ander belangrijk voordeel is de mogelijkheid om te wijzigen de perfusaat stroom voor het maximaliseren van de concentratie van de analyt in het perfusaat (dat wil zeggen, het proces van microdialysis kan wiskundig goed worden gedefinieerd en kan worden aangepast voor hoog rendement concentraties van de analyt in het monster)19. Tenslotte kan de techniek gebruikt worden om de infusie van de drugs of de farmacologisch werkzame stoffen in het weefsel van belang te bepalen van hun effect op de site van interventie20en. Aan de andere kant, heeft microdialysis een beperkte resolutie tijd (meestal meer dan 1 min te wijten aan de tijd die nodig is voor het verzamelen van monsters) in vergelijking met elektrochemische of biologische sensoren; het is een invasieve techniek waardoor weefselschade; het compromissen de neurochemical evenwicht binnen de ruimte rond het membraan als gevolg van de continue helling van de concentratie van alle oplosbare stoffen die het perfusaat samen met de analyt van belang treedt. Tot slot, de microdialysis-techniek is sterk beïnvloed door de grenzen van de analytische technieken gebruikt voor de kwantificering van stoffen in het perfusaat9,21,22,23 . De krachtige vloeibare chromatografie (HPLC) nadat de bewerking met orthophthaldialdehyde voor glutamaat en aspartaat analyse in biologische monsters is goed gevalideerde24,25,26 , 27 en haar uitgebreide discussie valt buiten het bereik van dit manuscript, maar de gegevens die zijn geproduceerd met behulp van deze methode zal in detail worden beschreven.
Wanneer uitgevoerd naar behoren en zonder wijziging van de samenstelling van het perfusaat, kan microdialysis bieden betrouwbare informatie over het basale niveau van de neurotransmitter release. Het grootste deel van het basale niveau is waarschijnlijk het gevolg van de zender-spill-over van de synapsen9. Omdat in veel gevallen de eenvoudige bemonstering van de neurotransmitter in de extra synaptic ruimte niet voldoende is om de doelstellingen van een onderzoek, kan de techniek van de microdialysis ook worden ingezet ter stimulering van neuronen of te ontnemen van belangrijke fysiologische ionen zoals K+ of Ca2 +, te roepen of te voorkomen van het vrijkomen van de neurotransmitter.
Hoge+ K-stimulatie wordt het vaak gebruikt in de neurobiologie ter stimulering van de neuronale activiteit niet alleen in wakker dieren, maar ook in culturen van primaire en organotypic. De blootstelling van een gezond zenuwstelsel aan oplossingen met hoge concentraties van K+ (40-100 mM) roept de efflux van neurotransmitters28. Dit vermogen van neuronen te bieden een extra release in reactie op de hoge K+ kan worden aangetast in epileptische dieren1 en in andere neurodegeneratieve ziekten29,30. Ook de Ca2 + ontbering (verkregen door zoogdierlevercellen Ca2 + gratis oplossingen) wordt gebruikt om de calcium-afhankelijke release van meeste neurotransmitters gemeten door microdialysis. Het is over het algemeen geloofd dat Ca2 + afhankelijke versie van neuronale oorsprong, overwegende dat Ca2 + onafhankelijke release is afkomstig uit glia, maar veel studies verhoogd controverse over de betekenis van Ca2 +-gevoelige metingen van bv glutamaat of GABA9: dus, indien mogelijk, het is raadzaam om steun microdialysis studies met microsensor studies, omdat deze laatste hogere ruimtelijke resolutie hebben en de elektroden toestaat om dichter bij synapsen31.
Over microdialysis onderzoeken bij epileptische dieren is het belangrijk te benadrukken dat de gegevens die zijn verkregen van de meeste van hen afhankelijk van video of video-EEG monitoring van vangsten, dat wil zeggen, van de voorbijgaande voorkomen van tekenen en/of symptomen als gevolg van abnormale overmatig of synchrone Neuronale activiteit in de hersenen-32. Er zijn enkele specifieke kenmerken van electrographic vangsten in pilocarpine behandelde dieren die bij de voorbereiding van het experiment moeten worden onderzocht. Spontane aanvallen worden gevolgd door depressief activiteit met frequente EEG the spikes3 en optreden in clusters33,34. Schijnvertoning bediende niet-epileptische dieren vertonen inbeslagneming-achtige activiteit35 en daarom de parameters voor EEG opnames evaluatie moeten gestandaardiseerde36 en, indien mogelijk, de timing van microdialysis sessies goed gedefinieerd moet worden. Ten slotte raden we na de beginselen en de methodologische standaarden voor video-EEG toezicht bij controle volwassen knaagdieren beschreven door deskundigen van de International League tegen epilepsie en American epilepsie Society in hun zeer recente verslagen37 ,,38.
Hier beschrijven we microdialysis van glutamaat en aspartaat parallel met de lange termijn video-EEG opnamen in epileptische dieren en hun analyse in de dialysate door HPLC. Wij zullen de kritische stappen van het protocol waarmee men voor het beste resultaat zorgen moet benadrukken.
In dit werk, laten we zien hoe een ononderbroken video-EEG-registratie, in combinatie met microdialysis kan worden uitgevoerd in een experimenteel model van TLE. Video-EEG opname technieken worden gebruikt voor de verschillende fasen van de progressie van de ziekte bij dieren correct te diagnosticeren en de microdialysis-techniek wordt gebruikt om te beschrijven van de veranderingen in glutamaat release die zich in de tijd voordoen (geen wijzigingen gevonden voor aspartaat in een eerder gepubliceerde studie<sup class="xr…
The authors have nothing to disclose.
De auteurs bedank Anna Binaschi, Paolo Roncon en Eleonora Palma voor hun bijdrage aan manuscripten gepubliceerd in voorrang.
3-channel two-twisted electrode | Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA | MS333/3-B/SPC | Material |
guide cannula | Agn Tho's, Lindigö, Sweden | MAB 4.15.IC | Material |
Resin KK2 Plastik | Elettra Sport, Lecco, Italy | KK2 | Material |
Super Attack gel Loctite | Henkel Italia Srl, Milano, Italy | 2047420_71941 | Material |
Imalgene-Ketamine | Merial, Toulouse, France | 221300288 (AIC) | Solution |
Xylazine | Sigma, Milano, Italy | X1251 | Material |
Isoflurane-Vet | Merial, Toulouse, France | 103120022 (AIC) | Solution |
Altadol 50 mg/ ml – tramadol | Formevet, Milano, Italy | 103703017 (AIC) | Solution |
Gentalyn 0.1% crm – gentamycine | MSD Italia, Roma, Italy | 20891077 (AIC) | Material |
simplex rapid dental cement | Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom | ACR811 | Material |
GlasIonomer CX-Plus Cement | Shofu, Kyoto, Japan | PN1167 | Material |
probe clip holder | Agn Tho's, Lindigö, Sweden | p/n 100 5001 | Equipment |
Histoacryl® Blue Topical Skin Adhesive | TissueSeal, Ann Arbor, Michigan, USA | TS1050044FP | Material |
Valium 10 mg/2 ml – diazepam | Roche, Monza, Italy | 019995063 (AIC) | Material |
1 mL syringe with 25G needle | Vetrotecnica, Padova, Italy | 11.3500.05 | Material |
rat flexible feeding needle 17G | Agn Tho's, Lindigö Sweden | 7206 | Material |
Grass Technology apparatus | Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA | M665G08 | Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40) |
modular data acquisition and analysis system MP150 | Biopac, Goleta, California, USA | MP150WSW | Equipment |
digital video surveillance system | AverMedia Technologies, Fremont, California, USA | V4.7.0041FD | Equipment |
microdialysis probe | Agn Tho's, Lindigö Sweden | MAB 4.15.1.Cu | Material |
microdialysis probe | Synaptech, Colorado Springs, Colorado, USA | S-8010 | Material |
block heater | Grant Instruments, Cambridge, England | QBD2 | Equipment |
stirrer | Cecchinato A, Aparecchi Scientifici, Mestre, Italy | 711 | Equipment |
infusion pump | Univentor, Zejtun, Malta | 864 | Equipment |
fine bore polythene tubing | Smiths Medical International Ltd., Keene, New Hampshire, USA | 800/100/100/100 | Material |
blue tubing adapters | Agn Tho's, Lindigö Sweden | 1002 | Material |
red tubing adapters | Agn Tho's, Lindigö Sweden | 1003 | Material |
2.5 mL syringe with 22G needle | Chemil, Padova, Italy | S02G22 | Material |
vial cap | Cronus, Labicom, Olomouc, Czech Republic | VCA-1004TB-100 | Material |
septum | Thermo Scientific, Rockwoood, Tennessee, USA | National C4013-60 8 mm TEF/SIL septum | Material |
glass insert with bottom spring | Supelco, Sigma, Milano, Italy | 27400-U | Material |
autosampler vial | National Scientific, Thermo Fisher Scientific, Monza, Italy | C4013-2 | Material |
Smartline manager 5000 system controller and degasser unit | Knauer, Berlin, Germany | V7602 | Equipment |
Smartline 1000 quaternary gradient pump | Knauer, Berlin, Germany | V7603 | Equipment |
spectrofluorometric detector | Shimadzu, Kyoto, Japan | RF-551 | Equipment |
chromatogrphic column | Knauer, Berlin, Germany | 25EK181EBJ | Material |
chromatogrphic pre-column | Knauer, Berlin, Germany | P5DK181EBJ | Material |
mobile phase solution A | 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 6.0 | Solution | |
mobile phase solution B | 40% 0.1 M sodium phosphate buffer, 30% methanol, 30% acetonitrile, pH 6.5 | Solution | |
Ringer solution | composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 2.7, NaCl 148, CaCl2 1.2, 0.3% BSA | Solution | |
modified Ringer solution | composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 100, NaCl 50.7, CaCl2 1.2, 0.3% BSA | Solution | |
saline | 0.9% NaCl, ph adjusted to 7.0 | Solution | |
sucrose solution | 10% sucrose in distilled water | Solution |