Summary

Yalıtım ve bütün domuz pankreas Decellularization

Published: October 10, 2018
doi:

Summary

Doku mühendisliği tüm pankreasın ekzokrin ve endokrin fonksiyonları nedeniyle bir mücadeledir. Biz sağlam bir domuz pankreas ve deterjanlar Triton X-100 perfüzyon tarafından başarılı decellularization sürecinin, sodyum deoxycholate ve deoksiribonükleaz diseksiyon için bir yöntemi gösterir.

Abstract

Doku mühendisliği tüm pankreas diyabet için mevcut tedaviler artırır. Doku mühendisi pankreas için insan hücreleri ile allojenik veya xenogeneic kaynağından amacıdır. Yöntemleri verimli diseksiyon, decellularization ve domuz pankreas recellularization için bir gösteri alanı yarar olabilir. İnsan pancreases benzer-e doğru domuz pancreases üç lob ile özel bir anatomik düzenleme var (dalak, duodenal ve bağlantı) oniki parmak bağırsağı ve ince bağırsak tarafından yuvarlanır. Pankreasın duodenal lob duodenum için birkaç küçük kan damarlarının tarafından bağlanır. Doku mühendisliği pankreasın ekzokrin ve endokrin doğası nedeniyle karmaşıktır. Bu yazıda, bütün domuz pankreas teşrih ve deterjanlar ile onun yapısı ve bazı hücre dışı matriks bileşenlerinin kaydedilirken decellularize için detaylı bir protokol gösteriyoruz. Aort damarı tam perfüzyon elde etmek için giriş ve çıkış olarak portal ven olarak seçilir. Diğer kan damarları (hepatik arter, splenik ven, splenik arter, mezenterik arter ve ven ağacı) ve safra kanalını bakmaksızın. Domuz trombüsü oluşumunu önlemek için heparinized ve hemen sonra diseksiyon, org ile soğuk heparin temizlendi. Eylem ekzokrin enzim inhibe, pankreas decellularization 4 ° C’de ayarlanır Decellularization perfüzyon Triton X-100, sodyum deoxycholate ve aralıklı ve son kapsamlı çamaşır ile deoksiribonükleaz tarafından gerçekleştirilir. Başarılı bir decellularization ile pankreas beyaz görünür ve korunmuş hücre dışı matriks yapısı ile çekirdeği bir yokluğu hematoksilen eozin ile histolojik değerlendirme gösterir. Böylece, önerilen yöntem başarılı bir şekilde incelemek ve bütün domuz pankreas decellularize için kullanılabilir.

Introduction

Diabetes mellitus, kan glikoz düzeyinin varlığı ile karakterizedir. Çoğu ülkeler1büyük halk sağlığı meydan okuma olarak kabul edilmektedir. Kan glikoz düzeyi yüksek kan damarları ve sinir sistemi, göz, kalp ve böbrekler ve ekstremite iskemi zarar etkiler. Tedavi geleneksel yöntemlerle enjeksiyonları eksojen insülin, uyuşturucu ve yaşam tarzı değişiklikleri içerir. Bazı durumlarda hastalık için bir çare bir kenara koyarak, mevcut tedaviler insülin hiperglisemi sonuçlanan terapötik düzeyde korumak başarısız. Adacıkları veya tüm pankreas nakli hastalık ortadan kaldırır, ancak sık uygun donör organ sıkıntısı ve riskleri ve immünosupresyon ve encapsulation2ilgili zorluklar yüzünden yapıldığını değil.

Doku mühendisliği ve rejeneratif tıp alanında güncel gelişmeler bu sorunlar için bir çözüm sağlamak için kapasitesine sahip. Decellularization teknikle, bir insan ya da hayvan donör hücresel malzemeden önemli hücre dışı matriks (ECM) proteinler, büyüme faktörleri, kaldırılabilir ve sinyal molekülleri iskele içinde korunur. Böyle iskele potansiyel immünosupresyon organ fonksiyon ile belgili tanımlık recipientâ €™ s sigara immünojenik kök hücre3,4recellularization sonra geri yüklemek için gerek kalmadan nakledilen. Büyük hücre dışı matriks proteinleri türleri arasında korunmuş ve nakli5sonra reddedilmiş değil gibi allojenik veya xenogeneic kaynaklardan doku mühendisliği organları klinik ekimi, kullanılabilir.

Decellularization fiziksel güçleri, kimyasal deterjan ve enzimler fizyolojik bir ortamda bir doku veya organ hücreleri ve nükleer malzeme kaldırmak için optimum kullanımını içeren iyi keşfedilmiş bir yöntemdir. Recellularization hücre geri acellular organ tohum bir işlemdir. Kültür organ, sıcaklık, basınç ve gazlar6gibi fizyolojik açıdan kabul edilebilir koşulları için çok sayıda hücre, optimum hücre tohum strateji ve bir biyoreaktör sistem gerektiren entelektüel zor bir işlemdir.

Pankreas ekzokrin ve endokrin kapasiteleri nedeniyle zorlu bir doku doku mühendisliği için kabul edilebilir. Endokrin bölümü salgılar hormon insülin de dahil olmak üzere, süre ekzokrin doku birkaç sindirim enzimleri salgılar. Fare7,8, insan9ve domuz10 sağlam pancreases decellularization enzimler (tripsin, deoksiribonükleaz [DNaz]) kullanarak zaten bildirilmiştir ve non-iyonik (Triton X-100) ve iyonik deterjanlar ( Sodyum deoxycholate [SDC] ve Sodyum Lauryl Sülfat [SDS]). Ancak, yayımlanmış protokolleri, biz başarılı diseksiyon ve tam perfüzyon ve ECM yapısını koruyarak decellularization ile mücadele etti. Biz decellularization sırasında uygulanan deterjanlar hücre lizis neden böylece organ sindirim enzimleri serbest ileri sürüldü. Yayımlanan enzimler ECM iskele geri dönüşü olmayan bir zarar ve decellularization ve recellularization için verimli olun. Etkili eylem sindirim enzimleri inhibe ederken pankreas decellularizes yöntemi bir tasarım sorunu çözebilir. Onlar soğuk sıcaklık kullanılan9neden olduğunu bildirmedi, ancak biz Peloso vd., decellularization soğuk sıcaklık, pankreas, strateji seçti. Aynı zamanda, biz aort perfüzyon giriş Çölyak gövde (CT) ve superior mezenterik arter (SMA)11üzerinde seçerek bir diseksiyon strateji Taylor ve ark. bazı değişiklikleri ile tasarlanmıştır.

Kısa bir süre önce madde12içinde etkili yalıtım ve bazı ECM bileşenleri koruyarak süre domuz pankreas, decellularization için bir yöntemi göstermektedir. Bu gazetede, dalak, duodenal içeren bir bütün domuz pankreas teşrih ve bağlantı loblar ayrıntılı bir açıklama göster ve başarılı decellularization için kademeli bir iletişim kuralı mevcut.

Protocol

Bir domuz pankreas ve burada sunulan decellularization yordam diseksiyon Göteborg Üniversitesi etik kuralları izleyin. 1. Decellularization Set-up hazırlanması 3 x 5 mm silikon tüpler kullanarak, seride peristalic pompa deterjan giriş kapsayıcı bağlanın ve via degasser org pankreasta için oda (bkz. Şekil 1). Bir erkek radarı tüp organ odasında ücretsiz sonu bağlayın. Başka bir 3 x 5 mm silikon tüp kullanarak, organ odası deterjan çıkış konteyner üzerinden için perfused deterjan toplamak için peristaltik pompa bağlayın. 2 ml etiketlenmemiş pipet deterjan giriş konteyner ve deterjan çıkış cointainer tüplerde ücretsiz biter takın. Kendin 4 ° C’de tutmak Şekil 1: hazırlık perfüzyon tuzak. 3 x 5 mm silikon tüp kurulum içinde gösterildiği gibi kullanarak, dizide peristaltik pompa, degasser ve organ odası için deterjan giriş kapsayıcı bağlanın. Siyah oklar deterjan giriş kapsayıcı akışı yönünden organ odasına gösterir. Deterjan çıkış, başka bir 3 x 5 mm silikon tüp kullanın ve organ odası üzerinden peristaltik pompa deterjan çıkış kapsayıcı bağlanın. Kırmızı oklar organ odası akışı yönünden deterjan çıkış kapsayıcıya gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız. 2. Decellularization çözümleri hazırlanması Çözüm 1 (fosfat tamponlu tuz [PBS]): 8 g (137 mM) sodyum klorür, 0.2 g (2.7 mM) potasyum klorür, 1.44 g (10 mM) sodyum fosfat ve (1.8 mM) potasyum fosfat, 0,24 g 1 litre ultrasaf su ekleyin ve karıştırın eriyene kadar. PH 7.4 hidroklorik asit (HCl) için ayarlayın. Toplamda, bu çözümün 3.2 L gereklidir. Çözüm 2 (PBS + heparin): 1 L / çözüm 1, 3,4 mL heparin (17 Uluslararası birimler [IU] /mL) ekleyin. Bu çözüm taze hazırlamak ve soğuk hale gelinceye kadar buz üzerinde tutun. Toplamda, bu çözümün 1,2 L gereklidir. Çözüm 3 (Ultrasaf Su + sodyum azid + disodyum ethylenediaminetetraacetic asit [EDTA]): 1 L / Ultrasaf Su, 1.86 g (5 mM) EDTA ve 200 mg (%0.02) sodyum azid eklemek. Tuz eriyene kadar karıştırın. 4 ° C kullanmadan önce çözüm ne yapıyorsun? Toplamda, bu çözümün 22 L gereklidir. Çözüm 4 (PBS + sodyum azid + EDTA): 1 L / çözüm 1, 200 mg sodyum azid (%0.02) ve (5 mm) EDTA 1.86 g ekleyin. Tuz eriyene kadar karıştırın. 4 ° C kullanmadan önce çözüm ne yapıyorsun? Toplamda, bu çözümün 1 L gereklidir. Çözüm 5 (Ultrasaf Su + sodyum azid): için 1 L ultrasaf su ekleyin (%0.02) sodyum azid 200 mg. Tuz eriyene kadar karıştırın. 4 ° C kullanmadan önce çözüm ne yapıyorsun? Toplamda, bu çözümün 260 M gereklidir.Not: EDTA SDC ile bir çökelti oluşturur ve hemen yıkama SDC işlemden önce ve sonra kullanılacak beri çözüm 5 dışarıda bırakıldı. Çözüm 6 (SDC + Triton X-100): 940 mL için Ultrasaf Su, 40 g (% 4) ekleyin. SDC, 60 mL (% 6) Triton X-100, (%0.02) sodyum azid 200 mg ve 69,6 mg (0.4 mM) phenylmethylsulfonyl florür (PMSF). Eriyene kadar karıştırın. 4 ° C kullanmadan önce çözüm ne yapıyorsun? PMSF kullanmadan önce ekleyin. Toplamda, bu çözümün 9,6 L gereklidir. Çözüm 7 (DNaz): DNaz 10.000 Kunitz eklemek birimleri-ı (40 Kunitz adet/mL) Dulbecco’nın PBS CaCl2 ve MgCl2içeren 250 mL. Taze hazırlamak ve hemen kullanın. Çözüm için kullanmadan önce 37 ° C sıcak. Çözüm 8 (PBS + sodyum azid): 1 L / çözüm 1, 200 mg (%0.02) sodyum azid ekleyin. Tuz eriyene kadar karıştırın. 4 ° C kullanmadan önce çözüm ne yapıyorsun? Toplamda, bu çözümün 1 L gereklidir. 3. domuz pankreas diseksiyon Not: Bu çalışmada, domuz pancreases üzerinden, heparinized (400 IU/kg) dişi domuzlar bir çiftlik 45 kg ağırlığında euthanized disseke. Domuz diseksiyon tablo sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Tüm karın organları açığa bir neşter kullanarak bir ensizyon xiphoidal işleminden kasık kemiğine (yaklaşık 40 cm) için yapmak. Dalak bulun, duodenal ve bağlantı loblar. Büyük duodenal papilla düzeyini bulun ve sözlü olarak iki ayrı dikiş kullanarak o siteden onikiparmak ligate. Aşağı özofagus iki ayrı dikiş ile ligate ve mide almak makas ile bitişik harfler arasında kesti. Bağ dokusu bağırsağın ulaşmak için iki nokta üst üste ayırın. Pankreas dalak lob için verdiği iki nokta üstüste bağ dokusu ayırın. İki nokta üst üste damar birleştirilmesi (ligasyon) sonra ince bağırsak çıkarın. İnferior mezenterik ven ve inferior mezenterik arter ağaç bulup pankreas caudally görüntülendiği bir dikiş ile ligate. Splenik arter ligate ve dalak Hilus yakın bir dikiş birlikte damar ve klemple dalak kaldırmak için makasla kesti. Duodenal ve bağlantı loblar temizlenir ve vasıl belgili tanımlık son iki ayrı dikiş ile duodenum ligate kadar duodenum izleyin. Portal ven incelemek, karaciğer üzerinden herhangi bir kan kaçağı önlemek ve proksimale bağ için bir dikiş ile ligate. Portal ven decellularization sırasında bir çıkış gibi hizmet vermektedir. İncelemek ve safra kanalını ve iki dikiş ile hepatik arter ligate. Klemple dikiş için kesti. Renal ven altında aort bulmak ve pankreas alan ulaşıncaya kadar kas ve bağ dokusu kranial yönde incelemek. Pankreas nazikçe çevirin ve SMA ve CT olduğu gibi tutmak aort, incelemek ve CT daha üstün ve makas ile SMA daha aşağı aorta kesti. Makasla dokuları çevreleyen kalan kesim ve pankreas çıkar. 4-mm arteriotomy kanül için bağlı bir 50 mL şırınga kullanarak, organ çözüm 2 ile aort yoluyla tüm organ perfuses kadar veya tüm organ soğuk hale gelinceye kadar temizleme. 4. Decellularization için domuz pankreas hazırlanması Pankreas 4 ° C’de veya süreci boyunca buzda tut. Makas kullanarak oniki parmak bağırsağı dikiş kesmek, 50-150 mL Ultrasaf Su 25 mL pipet kullanarak temizlenerek temiz o yiyecek ve tekrar dikiş ile ligate. Aort bir ucunu ve SMA ve CT yanı sıra tüm dalları kaçağı önlemek için dikiş ile ligate. 4-mm arteriotomy kanül aort diğer ucunu takın ve dikiş ile ligate. Çözüm 3 ile pankreas 20 mL/dk decellularization kurulumu kullanarak 1 h için sıvı.Not: hava kabarcığı yok pankreas girin öyle ki çözüm 3 ile pompa tüpler Prefill. Herhangi bir sızdırmazlık için organ her yönden bakmak ve tüm açık damar dalları ile dikişler, portal ven dışında ligate. Çözüm 4-20 ° C’de pankreas decellularization başlayana dondur. 5. decellularization domuz pankreas Pankreas 4 ° C’de erimek Hiçbir hava kabarcıkları deterjan giriş tüpte görülmektedir kadar peristaltik pompa çözüm 3 ile decellularization set-up 20 mL/dk çalıştırın. Pankreas decellularization kapsayıcısına getirin ve deterjan giriş tüp pankreas aort bağlayın. Bir gecede 20 mL/dk 4 ° C’de, çözüm 3 ile perfüzyon tarafından organ yıkama Organ odasında yaptı çözüm dökmek. Çözüm 3 çözüm 5 ile değiştirin ve pankreas 20 mL/dk 4 ° C’de 30 dk için sıvı Organ odası çözümde dökmek. Çözüm 6 eklemek ve pankreas 20 mL/dk 4 ° C’de 8 h için sıvı Organ odası çözümde dökmek. 20 mL/dk 4 ° C’de 96 h için çözüm 5 ile perfüzyon tarafından organ yıkama Organ odası çözümde dökmek. Dulbecco’nın PBS CaCl2 ve 37 ° C’de 30 dk için MgCl2 içeren 500 mL sirkülasyon tarafından DNaz tedavisinde pankreas hazırlamak Organ odası çözümde dökmek. Çözüm 7 250 mL ekleyin ve pankreas 37 ° C’de 20 mL/dk 4 h için sıvı Organ odası çözümde dökmek. 20 mL/dk 4 ° C’de 120 h için çözüm 5 ile perfüzyon tarafından organ yıkama Org çözüm 8’kısa bir süre için 4 ° C’de veya uzun süre-20 ° C’de depolayın. 6. Decellularization doğrulanması Makas kullanarak, 3 – 10 mm biyopsi pankreasın bütün loblar üzerinden kesmek ve onları formaldehit oda sıcaklığında 48 h için düzeltin. Ultrasaf Su 15dk için parçaları yıkayın, onları standart protokolleri takip bir doku işlemcide süreci ve parafin içinde katıştırabilirsiniz. 5-µm bölümleri Microtome kullanarak kesin ve onları standart protokolleri takip Meyer Hematoksilen ve % 0,2 alkollü eozin tarafından (o) leke. Çekirdek kaybı için kontrol etmek için hafif bir mikroskop altında slaytları görüntülemek.Not: Aynı şekilde işlenmiş bir taze doku bir parça bir denetim olarak çekirdek varlığı için kontrol etmek için kullanılabilir.

Representative Results

Temsilcisi domuz pankreas diseksiyon resimler, hangi-ebilmek yardım etmek içinde bulma ve inferior mezenterik arter anatomi ve ağaç, portal ven, hepatik arter, safra kanalını ve CT ve SMA dallanma aort damar, Şekil 2Agösterilir, 2Bve 2 C (oklar, sırasıyla sarı). Şekil 3A normal pankreas, brüt morfolojisi gösterir hafif pembe görüntülendiği ve dalak, içeren bağlantı ve duodenal loblar. Decellularization sonra pembe renk kaybolur ve decellularized pankreas soluk beyaz renkte görünüyor. Dalak gösteren brüt morfoloji resim bağlantı ve duodenal decellularized pankreas lobları Şekil 3B’ gösterilir. Şekil 3 c o ile boyama tarafından normal bir pankreas birçok mavi çekirdeği varlığını gösterir. Decellularized pankreasta, çekirdekleri, bir kaybı yok Mavi çekirdeği görülen gösterdi boyama o (şekil 3D). Resim 2: bir domuz pankreas diseksiyon resimlerini. İnferior mezenterik arter ve ven ağaç (sarı ok)(a)konumu. (B) ligasyonu portal ven, hepatik arter ve safra kanalını (sarı ok). (C) aort Çölyak gövde ve superior mezenterik arter (sarı ok) dallanma. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız. Şekil 3: brüt Morfoloji ve o normal ve decellularized pancreases boyama. (A)normal pankreas brüt morfolojisi. (B) decellularized pankreas brüt morfolojisi. (C) o boyama Mavi çekirdeği varlığı normal pankreasta gösterir. (D) o boyama Mavi çekirdeği yokluğu decellularized pankreasta gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Discussion

Perfüzyon SDC ve Triton X-100 4 ° C’de kullanarak önerilen protokolünü bütün domuz pankreas başarıyla decellularize. Bu teknikte bir organ sıvı için parankimi ve onun sağlama gemiler gibi örnek diğer vasküler dallarında ligasyonu zarar vermeden üç loblar içeren sağlam pankreas diseksiyon mücadeledir sızıntı. Domuz pankreas farklı bir anatomi insan pankreas karşılaştırıldığında vardır. Bu üç lobları oluşur ve ince bağırsak ile yakın temas içinde kısmen çevresindeki tarafından kalır. Birkaç küçük kan damarlarının pankreas gelen bağırsak bağlandıkça ile birlikte pankreas, oniki parmak bağırsağı kesmiştim. En iyi duruma getirme çalışmaları sırasında bu kan damarlarının künt kesim kaçağı ve çözümleri eksik bir perfüzyon göstermiştir.

Pankreas çölyak ve superior mezenterik arter aracılığıyla aortaya bağlandığı beri perfüzyon yalnızca bir kanül ve bu nedenle, bir giriş kullanarak basit tutmak için bir giriş olarak aort seçtik. Bizim deneyim, ligasyonu CT yukarıda ve aşağıda SMA aort diseksiyonu zaman azalır ve herhangi bir iki gemi zarar riskini azaltır. Heparinized domuz ek olarak, ayrıca perfüzyon çözümleri organ boyunca ulaşmada bir perfüzyon soğuk heparin ile aort diseksiyon hemen sonra yardımcı olduğunu fark ettim. Bu kan damarlarında kan pıhtı oluşumunu engelleyerek ortaya çıkar spekülasyon. Bir pankreas Ultrasaf Su ile ilk perfüzyon diseksiyon sonra kırmızı kan hücreleri parçalayıcı ve böylece kan pıhtı oluşumunu engelleyerek organ kan kalıntıları kaldırın. Kan akışını kolayca arka plan üstüne fark gibi bu dönemde de damarları ve arterler, unligated herhangi bir küçük dalları bulmak için kullanılabilir.

Bu eylem pankreas ekzokrin hücrelerden serbest ekzokrin enzimlerin engel olacak kadar soğuk sıcaklıklarda (4 ° C), tüm decellularization yordam tutmak seçti. Hücre zarları ve proteinler12sindirmek olabilir gibi inhibe değil zaman ekzokrin enzimler hücre ve ECM üzerinde zararlı bir etkisi neden olabilir. Dondurma ve çözme etkili hücreleri patlama gibi biz bir donma/çözülme adım başlangıçta bile deterjanlar4,13perfüzyon önce dahil. Çözdürme sonra ilk yıkama hücre patlamaları kalıntıları çıkarmak. Biz kullanılan deterjan tedavi SDC ve Triton X-100 normalden daha yüksek konsantrasyonlarda ve yüksek perfüzyon hızda bir karışımıdır. ECM zarar ekzokrin hücreleri kaldırarak daha hızlı decellularization elde etmek için bu yaklaşım seçtik. Biz daha az zaman-ecek var olmak elde edilebilir Pankreas enzimleri böylece iyi ECM bileşenleri koruyarak ECM ile etkileşim için gibi sert ve hızlı bir iletişim kuralı pankreas decellularization için faydalıdır spekülasyon. Bu enzimlerin ekzokrin hücreleri14–dan serbest bırakmak belgili tanımlık harekete geçirmek yapılmasını engeller olarak ECM bileşenleri korumak için biz de serin proteaz inhibitörü (PMSF) deterjan çözümler ekledi. Böylece inhibe bakteriyel kontaminasyon15şansı bir bakteriyostatik ajan olarak eylemler olarak sodyum azid tüm decellularization çözümleri, eklenir.

Pankreas ECM yapıları ve ECM protein kollajen ve elastin korunması gösterdi bu protokol sonrası decellularized. Ancak, önemli bir glikozaminoglikan kaybına decellularized pankreasta fark edildi. Pankreas da insan cenin pankreas kök hücreleri ekler ve ekzokrin ve endokrin işaretleri ifade için için 14 gün12recellularized parçalar halinde vaat Bu şekilde decellularized. Ancak, bir sağlam ve işler durumda pankreas oluşturmak için daha fazla araştırma doğru hücre kaynakları, hücre tipleri, hücre tohumlama stratejileri ve biyoreaktör kültür değerlendirilmesinde gereklidir.

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışmada İsveç hükümeti LUA ALF bir hibe için S.S.H. tarafından finanse edildi

Materials

4mm DLP arteriotomy cannula Medtronic 31104
2ml Unlabelled pipette vWR 612-3720
Degasser Biotech AB 0001-6484
DNase-I Worthington LS0020007
Dulbecco's PBS with CaCl2 and MgCl2 Sigma Aldrich D8662
EDTA disodium salt dihydrate AlfaAesar A15161.OB
Heparin Leo 387107
Luer Male with 1/8" ID Barb Oina LM-2PP-QC For 3X5mm silicon tube
Peristaltic pump Oina SP-1X4
PMSF Roche 10837091001 Unstable in aqueous solution. Should be added fresh before perfusion.
Potassium chloride Sigma Aldrich P5405
Potassium hydrogen phosphate Sigma Aldrich P9791
SDC Sigma Aldrich 30970
Silicon tube 3X5mm VWR 2280706
Sodium Azide Sigma Aldrich 71290
Sodium chloride Sigma Aldrich 13423
Sodium hydrogen phosphate Merck 71640-M
Suture Vömel 14817
Syrringe 50mL Becton Dickinson 300137
Triton-X-100 AlfaAesar A16046.OF

References

  1. Yang, H. K., Yoon, K. H. Current status of encapsulated islet transplantation. Journal of Diabetes and its Complications. 29 (5), 737-743 (2015).
  2. Badylak, S. F., Taylor, D., Uygun, K. Whole-organ tissue engineering: Decellularization and recellularization of three-dimensional matrix scaffolds. Annual Review of Biomedical Engineering. 13, 27-53 (2011).
  3. Crapo, P. M., Gilbert, T. W., Badylak, S. F. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 32 (12), 3233-3243 (2011).
  4. Hynes, R. O. The evolution of metazoan extracellular matrix. Journal of Cell Biology. 196 (6), 671-679 (2012).
  5. Scarritt, M. E., Pashos, N. C., Bunnell, B. A. A review of cellularization strategies for tissue engineering of whole organs. Frontiers in Bioengineering and Biotechnol. 3, 43 (2015).
  6. Goh, S. K., et al. Perfusion-decellularized pancreas as a natural 3D scaffold for pancreatic tissue and whole organ engineering. Biomaterials. 34 (28), 6760-6772 (2013).
  7. Wu, D., et al. 3D Culture of MIN-6 Cells on Decellularized Pancreatic Scaffold. In Vitro and In Vivo Study. Biomed Research International. 2015, 432645 (2015).
  8. Peloso, A., et al. The Human Pancreas as a Source of Protolerogenic Extracellular Matrix Scaffold for a New-generation Bioartificial Endocrine Pancreas. Annals of Surgery. 264 (1), 169-179 (2016).
  9. Mirmalek-Sani, S. H., et al. Porcine pancreas extracellular matrix as a platform for endocrine pancreas bioengineering. Biomaterials. 34 (22), 5488-5495 (2013).
  10. Taylor, M. J., Baicu, S., Greene, E., Vazquez, A., Brassil, J. Islet isolation from juvenile porcine pancreas after 24-h hypothermic machine perfusion preservation. Cell Transplantation. 19 (5), 613-628 (2010).
  11. Elebring, E., Kuna, V. K., Kvarnstrom, N., Sumitran-Holgersson, S. Cold-perfusion decellularization of whole-organ porcine pancreas supports human fetal pancreatic cell attachment and expression of endocrine and exocrine markers. Journal of Tissue Engineering. 8, 2041731417738145 (2017).
  12. Gilpin, A., Yang, Y. Decellularization Strategies for Regenerative Medicine: From Processing Techniques to Applications. Biomed Research International. 2017, 9831534 (2017).
  13. James, G. T. Inactivation of the protease inhibitor phenylmethylsulfonyl fluoride in buffers. Analytical Biochemistry. 86 (2), 574-579 (1978).
  14. Lichstein, H. C., Soule, M. H. Studies of the Effect of Sodium Azide on Microbic Growth and Respiration: I. The Action of Sodium Azide on Microbic Growth. Journal of Bacteriology. 47 (3), 221-230 (1944).

Play Video

Citer Cet Article
Kuna, V. K., Kvarnström, N., Elebring, E., Holgersson, S. S. Isolation and Decellularization of a Whole Porcine Pancreas. J. Vis. Exp. (140), e58302, doi:10.3791/58302 (2018).

View Video