Hier präsentieren wir ein Protokoll zur murine granulocyte-macrophage-colony-stimulating-factor-producing T (THGM)-Helferzellen von naiven CD4 + T-Zellen, einschließlich Isolierung von naiven CD4 + T-Zellen, Differenzierung von THGM, zu differenzieren und Analyse von differenzierten Zellen THGM. Diese Methode kann auf Studien der Verordnung und Funktion von THGM Zellen angewendet werden.
Der Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierende Faktor (GM-CSF)-Herstellung von T-Helfer (THGM)-Zelle ist eine neu identifizierten T Helfer Zelle Teilmenge, die überwiegend sondert GM-CSF ohne Herstellung von Interferon (IFN) γ oder Interleukin (IL)-17 und wird festgestellt, dass Spielen Sie eine wesentliche Rolle in der autoimmunen Neuroinflammation. Eine Methode zur Isolierung von naiven CD4 + T-Zellen aus einer einzelligen Aussetzung der splenocyten und THGM Zellgeneration von naiven CD4 + T-Zellen wäre eine nützliche Technik in der Studie von T zellvermittelte Immunität und Autoimmunerkrankungen. Hier beschreiben wir eine Methode, die Maus naive CD4 + T-Zellen in THGM Zellen gefördert durch IL-7 unterscheidet. Das Ergebnis der Unterscheidung wurde durch die Analyse der Zytokine Ausdruck mit verschiedenen Techniken, einschließlich intrazelluläre Zytokin Färbung kombiniert mit Durchflusszytometrie, eine quantitative Real-Time Polymerase-Kettenreaktion (PCR), beurteilt und Enzym-linked Immunosorbentprobe Assays (ELISA). Mit dem T-H-GM Differenzierung Protokoll wie beschrieben hier, etwa 55 % der Zellen ausgedrückt GM-CSF mit einem minimalen Ausdruck IFNα oder IL-17. Der vorherrschende Ausdruck von GM-CSF von THGM Zellen wurde durch die Analyse des Ausdrucks von GM-CSF, IFNα und IL-17 mRNA und Protein Ebene bestätigt. So können mit dieser Methode, naive CD4 + T-Zellen, T zu unterscheidenHGM Zellen in Vitro, die werden in der Studie von THGM Zellbiologie.
CD4 + T-Helferzellen (TH) sind wesentliche Bestandteile des Immunsystems, da entscheidende Rollen in der Wirt Verteidigung gegen mikrobielle Krankheitserreger, in der Krebs-Überwachung, und Autoimmunität1,2,3. Bei der T-Zell-Rezeptor (TCR) Aktivierung naive CD4 + T-Zellen differenzieren sich in TH1, TH2, TH 17 oder regulatorischen T (Treg) Zellen unter dem Einfluss von verschiedenen Zytokin Milieus2,4, 5. vor kurzem eine neue Untergruppe von TH Zellen, die überwiegend GM-CSF produziert, wurde identifiziert und benannt THGM6. Die Differenzierung der Zellen THGM treibt IL-7 durch die Aktivierung von einem Signalwandler und Aktivator der Transkription 5 (STAT5). Diese Zellen eine große Menge von GM-CSF zum Ausdruck bringen und dabei eine geringe Expression von anderen T-H-Handy-Signatur Zytokine wie z. B. IFNγ und IL-176. GM-CSF erwies sich als eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung von CD4 + T-Zell-vermittelten Neuroinflammation7,8. GM-CSF mit dem Ausdruck T Zellen im Vergleich zu IFNγ oder IL-17-exprimierenden autoreaktiven T-Zellen, in Wildtyp übertragen (WT) Mäusen verursacht ein früher Krankheitsbeginn und höheren Schweregrad der Erkrankung. Darüber hinaus scheiterte Csf2– / – T-Zellen induzieren Experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis (EAE) nach adoptively auf WT-Empfänger übertragen werden, während T-Zellen IFNγ oder IL-17A fehlt die Fähigkeit, EAE7vermitteln beibehalten. Darüber hinaus verbessert eine Blockade von GM-CSF mit neutralisierenden Antikörpern EAE Krankheit schwere8. Darüber hinaus führte ein Mangel an STAT5 in T-Zellen in Mäusen in einer verminderten THGM-Generation und somit in einen Widerstand von den Mäusen EAE Entwicklung6. Diese Ergebnisse unterstreichen die Bedeutung von GM-CSF mit dem Ausdruck TH Zellen in autoimmune schwere Krankheit. So wäre eine Methode um GM-CSF mit dem Ausdruck TH Zellen von naiven CD4 + T-Zellen zu unterscheiden in der Untersuchung der Pathogenese von Autoimmunerkrankungen Neuroinflammation und T-Zell-vermittelten Immunantwort wichtig. Allerdings erzeugt ein Protokoll, das effizient THGM Zellen aus murinen naive CD4 + nicht etabliert hat.
Hier präsentieren wir eine Methode, die naive CD4 + T-Zellen murine THGM Zellen unterscheidet. Dieses Protokoll beschreibt das gesamte Verfahren, einschließlich der Entnahme der Milz von der Maus, die Vorbereitung eine einzellige Suspension, die CD4 positive Selektion, die Fluoreszenz-aktivierte Zelle Sortieren (FACS) und die TH Zelle Differenzierung und Analyse. Die differenzierte T-Helferzellen werden analysiert, indem intrazellulären Zytokin Färbung kombiniert mit Durchflusszytometrie zu bestimmen, die Cytokine Ausdruck Ebene einzellige durch eine quantitative Echtzeit-PCR die Zytokin-Expression auf mRNA-Ebene zu bestimmen und von ELISA die Zytokin-Expression auf proteinebene zu bewerten. Diese Methode kann auf Studien von THGM Zellbiologie unter verschiedenen Bedingungen, wie z. B. EAE, angewendet werden, wo GM-CSF eine wichtige Rolle in der Pathogenese spielt.
Wir beschrieben hier ein Protokoll von einer in-vitro- THGM Differenzierung von Maus-naive CD4 +-Zellen, gefolgt von einer Analyse der differenzierten Zellen, die Methode zu validieren. Der Hinweis Milz und Lymphknoten naive CD4 + T-Zell-Reinigung und THGM Differenzierung einsetzbar. Die Cytokine Ausdruck von intrazellulären Zytokin Färbung kombiniert mit Durchflusszytometrie zeigte, dass etwa 55 % der Zellen bestimmt waren veranlasst, GM-CSF-exprimierenden Zellen unter der Bedingung T<su…
The authors have nothing to disclose.
Diese Studie wurde unterstützt durch Zuschüsse aus dem National University Health System of Singapore (T1-2014 12. Oktober und T1-2015-10 Sep).
RPMI 1640 | Biowest | L0500-500 | |
FBS Heat Inactivated | Capricorn | FBS-HI-12A | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
10x PBS | 1st Base | BUF-2040-10 | Diluted to 1x PBS in sterile water |
EDTA | 1st Base | BUF-1053-100ml-pH8.0 | |
10X ACK buffer | Biolegend | 420301 | diluted in sterile water |
cell strainer | SPL Life Sciences | 93070 | |
CD4 microbeads | Miltenyi Biotec | 130-049-201 | |
2-Mercaptoethanol | Sigma | M7522 | |
LS column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
magnetic stand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
1ml syringe | Terumo | SS+01T | |
Centrifuge | Eppendorf | Eppendorf 5810R | |
Sony SY3200 cell sorter | Sony | Sony SY3200 cell sorter | |
50ml conical centrifuge tube | Greiner Bio-One | 210261 | |
15m conical centrifuge tube | Greiner Bio-One | 188271 | |
FACS tube | Corning | 352054 | |
24 well cell culture plate | Greiner Bio-One | 662160 | |
anti-mouse CD4 PerCP-eFluor 710 | eBioscience | 46-0041-82 | |
PE conjugated anti-mouse CD25 (IL-2Ra, p55) | eBioscience | 12-0251-82 | |
anti-human/mouse CD44 APC | eBioscience | 17-0441-82 | |
anti-mouse CD62L FITC | eBioscience | 11-0621-85 | |
Neubauer-improved counting chamber | Marienfeld | 640010 | |
Hyclone Trypan Blue Solution | GE healthcare Life Sciences | SV30084.01 | |
microscope | Nikon | Nikon Elipse TS100 | |
Purified anti-mouse CD3e antibody | Biolegend | 100314 | |
Purified hamster anti-mouse CD28 | BD Biosciences | 553295 | |
Purified Rat anti-mouse IFNγ | eBioscience | 16-7312-85 | |
Purified anti-mouse IL-4 Antibody | Biolegend | 504102 | |
Recombinant Mouse IL-7 Protein | R&D system | 407-ML | |
Recombinant Mouse IL-6 | R&D system | 406‑ML | |
recombinant human TGF-beta | R&D system | 240-B-010 | |
PMA | Merck Millipore | 19-144 | |
Ionomycin | Sigma | I0634 | |
GolgiPlug protein transport inhibitor | BD Biosciences | 51-2301KZ | |
Intracellular Fixation&Permeabilization buffer set | eBioscience | 88-8824-00 | |
anti-mouse GM-CSF PE | eBioscience | 12-7331-82 | |
FITC anti-mouse IL-17A | Biolegend | 506908 | |
APC anti-mouse IFN-gamma | Biolegend | 505810 | |
GO Taq qPCR master mix | Promega | A6002 | |
mouse GM-CSF ELISA Ready-SET-Go! | invitrogen | 88-7334-88 | |
Mouse IL-17A Uncouted ELISA | invitrogen | 88-7371-22 |