Summary

Medição de deformabilidade e heterogeneidade de glóbulos vermelhos no sangue por Ektacytometry

Published: January 12, 2018
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Summary

Aqui nós apresentamos técnicas para medir a deformabilidade eritrócitos e heterogeneidade celular por ektacytometry. Estas técnicas são aplicáveis às investigações gerais de deformabilidade eritrócitos e investigações específicas de doenças do sangue caracterizadas pela presença de eritrócitos rígidas e deformáveis em circulação, tais como anemia falciforme.

Abstract

Deformabilidade eritrócitos diminuída é característica de vários distúrbios. Em alguns casos, o grau de deformabilidade defeituoso pode prever a severidade da doença ou a ocorrência de complicações sérias. Ektacytometry usa a laser viscosidade de difração para medir a deformabilidade dos glóbulos vermelhos, sujeitos a crescente tensão de cisalhamento ou um gradiente osmótico em um valor constante de tensão de cisalhamento aplicada. No entanto, medições de deformabilidade direto são difíceis de interpretar quando medindo sangue heterogênea que se caracteriza pela presença de eritrócitos rígidas e deformáveis. Isto é devido à incapacidade das células rígidas para alinhar corretamente em resposta à tensão de cisalhamento e resulta em um padrão de difração distorcida, marcado por uma exagerada diminuição da deformabilidade aparente. Medição do grau de distorção fornece um indicador da heterogeneidade das hemácias no sangue. Na anemia falciforme, isto está correlacionado com a porcentagem de células rígidas, que reflete a concentração de hemoglobina e a composição da hemoglobina das hemácias. Além de medir a deformabilidade, ektacytometry gradiente osmótico fornece informações sobre a fragilidade osmótica e o status de hidratação de eritrócitos. Estes parâmetros também refletem a composição da hemoglobina das células vermelhas do sangue de pacientes de anemia falciforme. Ektacytometry mede deformabilidade em populações de células vermelhas e não, portanto, fornecer informações sobre a deformabilidade ou propriedades mecânicas de eritrócitos individuais. Independentemente disso, o objetivo das técnicas descritas neste documento é fornecer um método conveniente e confiável para medir a deformabilidade e heterogeneidade celular do sangue. Estas técnicas podem ser úteis para monitorar mudanças temporais, bem como a progressão da doença e resposta à intervenção terapêutica em diversos transtornos. A anemia falciforme é um exemplo bem caracterizado. Outros distúrbios potenciais onde medidas de deformabilidade eritrócitos e/ou heterogeneidade são de interesse incluem o armazenamento de sangue, diabetes, infecção Plasmodium , deficiência de ferro e as anemias hemolítica devido a defeitos de membrana.

Introduction

Ektacytometry fornece uma medida conveniente de deformabilidade eritrócitos em resposta a alterações na tensão de cisalhamento (medida em Pascal (Pa)), ou suspendendo a osmolalidade média. Parâmetros pertinentes de deformabilidade eritrócitos incluem o índice de alongamento máximo (Max de El), uma medida da máxima da deformabilidade de uma célula vermelha em resposta à crescente tensão de cisalhamento e a tensão de cisalhamento ½ (SS ½), a tensão de cisalhamento necessária para alcançar o máximo de metade deformabilidade. 1 ektacytometry gradiente osmótico tem vários parâmetros informativos. Estes incluem o índice de alongamento mínimo (EI Min), uma medida da proporção de superfície e o volume e a osmolalidade em que ocorre (O Min), que é uma medida de fragilidade osmótica. EI Max e a osmolalidade em que ocorre (O (EI Max)) fornecem informações sobre a área de superfície da membrana flexibilidade e celular. Alongamento máximo metade no braço hipertônico do gradiente osmótico é representado pela EI hiper. EI hiper e a osmolalidade em que ele ocorre, O hiper, fornecem informações sobre a viscosidade intracelular da célula vermelha que é determinada pela concentração de hemoglobina. 2 , 3 medição deformabilidade em sangue heterogêneo é complicada pelo fato de que células rígidas, tais como glóbulos vermelhos falciformes, não alinhar corretamente com a direção do fluxo, tais como células deformáveis em resposta ao aumento da tensão de cisalhamento. Em vez de produzir uma imagem de difração característicos de elíptico, rígidas células produzem um padrão esférico que resulta em um padrão de difração em forma de diamante quando sobrepostos sobre a elipse produzida pelas células deformáveis. 4 , 5 , 6 o padrão esférico foi mostrado para corresponder a células falciformes irreversíveis, realizando ektacytometry em frações isoladas das células após centrifugação de densidade. 6 o cálculo do índice de alongamento inclui medidas de ambos os longa e curta eixo da elipse; uma forma de diamante, portanto, produz uma diminuição aparente no alongamento, aumentando a largura do eixo curto. 7 anteriormente mostrou que o grau de distorção do padrão de difração está correlacionado com a porcentagem de hemoglobina falciforme (HbS) e a percentagem de células falciformes no sangue de pacientes com anemia falciforme. 5 o grau de distorção do padrão de difração pode ser obtido por análises matemáticas complexas. 8 pode também ser obtido ajustando a abertura da abertura da câmera sobre o ektacytometer ou nível de cinza do encaixe software para alterar a altura do padrão de difração. 5 no entanto, detalhes sobre como ajustar o nível de cinza não estão bem definidos e a abertura da câmera não é facilmente acessível sobre a geração mais recente de ektacytometer o comercialmente disponível. Para contornar esses problemas, o ganho facilmente acessível câmera pode ser usado para ajustar alturas padrão de difração. 9 usar esse método para estimar a heterogeneidade celular, o grau de distorção do padrão de difração pode ser correlacionado com a porcentagem de hemoglobina fetal no sangue de pacientes com anemia falciforme. 10 vários parâmetros ektacytometry gradiente osmótico da mesma forma são correlacionados com a porcentagem de fetal ou foice de hemoglobina no sangue de pacientes com anemia falciforme. Correlações de distorção da padrão de difração provavelmente refletem a contribuição da composição da hemoglobina para a percentagem de células rígidas, não deformável. De interesse adicional, o perfil de toda ektacytometry gradiente osmótico sofre alterações de bifásico que correspondem à percentagem de células densas em circulação durante a crise falciforme. 11

Ektacytometry também é útil no estudo de várias outras doenças. Ektacytometry gradiente osmótico é diagnóstico para os distúrbios de membrana eritrócitos herdadas, como esferocitose hereditária, elliptocytosis hereditária e pyropoikilocytosis hereditária. 3 , 12 , 13 , 14 deformabilidade diminuição ocorre na deficiência de ferro. 15 caracterização da lesão de”armazenamento” de sangue empregou ektacytometry e futuros estudos investigando tanto a natureza da lesão e intervenções para prevenir a sua formação durante o armazenamento de sangue bancado são susceptíveis de beneficiar o técnicas aqui apresentadas. 16 diminuição eritrócitos deformabilidade também tem sido correlacionada com doença microvascular em diabetes. 17 estudos recentes vinculando hiperglicemia, concentrações de ascorbato de eritrócitos e fragilidade osmótica sugerem que estes fatores podem ser importantes no desenvolvimento da doença microvascular. 18 Ektacytometry estudos estão em andamento para investigar esta hipótese (Parrow e Levine, dados não publicados). Infecção da malária do sangue palco é outro interessante Avenida das investigações de deformabilidade eritrócitos. Deformabilidade celular de Plasmodium falciparum infectados células vermelhas do sangue diminui drasticamente durante as 48 horas de maturação intracelular do parasita de palco anel palco schizont. Evidências indicam que esta diminuição da deformabilidade é revertida após a maturação do parasita. A reversão coincide com o lançamento de eritrócitos infectados na circulação. Diminuição da deformabilidade é pensada para ser mediado por proteínas de Plasmodium que promovem o sequestro da célula vermelha. 19 estes estudos representam uma pequena amostra das condições clinicamente importantes, onde a medição deformabilidade eritrocitária e parâmetros de gradientes osmóticos são relevantes. Existem várias áreas adicionais de estudo.

Técnicas alternativas para medir deformabilidade eritrócitos incluem Pinça óptica (também conhecida como armadilhas do laser), que utilizam as propriedades físicas dos fótons para esticar as células vermelhas do única em uma ou mais direções. 20 esta técnica tem a vantagem de medir a deformabilidade dos eritrócitos único, mas alguma incerteza na calibração de força produziu considerável variabilidade através de de estudos 21 e análise de dados pode ser trabalhosa a menos automatizado. 22 aspiração micropipeta, que utiliza pressão negativa para aspirar um eritrócito para uma micropipeta, também tem sido usada para medir a deformabilidade das células vermelhas. 7 , 23 medições múltiplas, tais como a pressão necessária para aspirar os eritrócitos, são possíveis com cada medida definem características diferentes da célula vermelha. 23 , microscopia de força atômica é uma técnica de alta resolução que mede a rigidez da membrana através da quantificação de deflexão de feixe de laser como um indicador da deflexão do cantilever, ao longo da superfície de uma célula vermelha. 24 estas técnicas fornecem informações sobre eritrócitos individuais, não são facilmente adaptados para medir mudanças nas populações de células vermelhas do sangue e, em geral, exigem conhecimentos técnicos consideráveis.

O desejo de experimentar tanto individual e populações de células simultaneamente tem levado a avanços na automação e o desenvolvimento de microfluídica e métodos baseados em matriz. Como ektacytometry, rheoscopy medidas de deformabilidade em função da tensão de cisalhamento, mas imagens são adquiridas diretamente através do microscópio. 25 para maiores Coloque-através de análises, imagem latente da pilha automatizado foi empregado para produzir distribuições de deformabilidade usando o rheoscope. 26 heterogeneidade celular pode ser quantificada por esse método se estiverem disponíveis dados de um assunto de controle saudável. 27 técnicas de microfluídica também permitem altas Coloque-através de análises de células únicas; vários projetos utilizando adaptações de filtração, analisadores de trânsito de célula28 ,29 , que mede o tempo necessário para um fluxo de eritrócitos através um micropore e alternativas que medem a pressão necessária para o trânsito de eritrócitos bastante que tempo 30 foram desenvolvidos. Outra plataforma para alta Coloque-através de análise de células individuais é o chip de matriz única célula microchamber, que tem a vantagem adicional de permitir para jusante caracterização baseada em fluorescência das células. 31 embora cada uma dessas técnicas é potencialmente útil e pode ser superior para aplicações específicas, as vantagens comparativas de ektacytometry inclui sensibilidade, facilidade de uso e precisão. 32 a última geração de ektacytometers comercialmente disponível também possuem versatilidade considerável no número de ensaios que podem ser executadas.

Protocol

Todas as disciplinas neste estudo deram consentimento escrito em conformidade com a declaração de Helsínquia e os protocolos nacionais institutos de saúde institucional Review Board aprovado. 1. ligar o ektacytometer Conecte o tubo de solução de limpeza para as soluções de polivinilpirrolidona (PVP) de baixa e alta osmolar. Tenha cuidado para conectar-se a 0 osmolar à baixa osmolar solução a 500 osmolar tubo e para a solução de alta osmolar.Nota: A s…

Representative Results

Os resultados do ektacytometry descritos neste manuscrito podem ser usados para medir a deformabilidade eritrócitos em qualquer condição. Um diagrama esquemático do conjunto geral acima de um ektacytometer é mostrado na Figura 1. Populações homogêneas de eritrócitos irão produzir um padrão de difração elíptica em resposta ao aumento da tensão de cisalhamento que pode ser usado para calcular o índice de alongamento, como mostrado na <strong cla…

Discussion

As ektacytometry técnicas descritas são simples e bem automatizado, garantindo resultados válidos e reproduzíveis. No entanto, existem algumas etapas críticas. Controle de temperatura adequada do sangue é importante. Armazenamento em temperatura ambiente por mais de oito horas pode afetar SS ½ valores. 34 garantir que a temperatura da máquina é estável a 37 ° C também é importante, como a viscosidade do meio de suspensão é dependente de temperatura. Sangue deve ser totalmente oxigen…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo programa de pesquisa Intramural dos institutos nacionais de Diabetes, digestivo e doenças renais e nacional do coração, pulmão e sangue Instituto do institutos nacionais da saúde. As opiniões aqui expressadas são da exclusiva responsabilidade dos autores e não representam necessariamente as opiniões oficiais dos institutos nacionais de saúde.

Materials

LoRRca MaxSis standard version Mechatronics LORC109000
LoRRca MaxSis Osmoscan Mechatronics LORC109001
Polyvinylpyrrolidone solution (PVP) 0mOsm Mechatronics QRR030910
Polyvinylpyrrolidone solution (PVP) 500mOsm Mechatronics QRR030930
Polyvinylpyrrolidone solution (PVP) 5mL vials Mechatronics QRR030901
X clean Mechatronics QRR010946
P1000  MilliporeSigma Z646555
P200 MilliporeSigma Z646547
P200 filter tips MidSci AV200-H
P1250 filter tips MidSci AV1250-H
Kimwipes MidSci 8091
1.5 mL eppendorf tubes MidSci AVSS1700
15 mL conical vial MidSci C15R

References

  1. Bessis, M., Mohandas, N., Feo, C. Automated ektacytometry: a new method of measuring red cell deformability and red cell indices. Blood Cells. 6 (3), 315-327 (1980).
  2. Clark, M. R., Mohandas, N., Shohet, S. B. Osmotic gradient ektacytometry: comprehensive characterization of red cell volume and surface maintenance. Blood. 61 (5), 899-910 (1983).
  3. Da Costa, L., et al. Diagnostic tool for red blood cell membrane disorders: Assessment of a new generation ektacytometer. Blood Cells Mol Dis. 56 (1), 9-22 (2016).
  4. Clark, M. R., Mohandas, N., Shohet, S. B. Deformability of oxygenated irreversibly sickled cells. J Clin Invest. 65 (1), 189-196 (1980).
  5. Rabai, M., et al. Deformability analysis of sickle blood using ektacytometry. Biorheology. 51 (2-3), 159-170 (2014).
  6. Bessis, M., Mohandas, N. Laser Diffraction Patterns of Sickle Cells in Fluid Shear Fields. Blood Cells. 3, 229-239 (1977).
  7. Kim, Y., Kim, K., Park, Y., Moschandreou, T. E. . Blood Cell – An Overview of Studies in Hematology. , (2012).
  8. Streekstra, G. J., Dobbe, J. G., Hoekstra, A. G. Quantification of the fraction poorly deformable red blood cells using ektacytometry. Opt Express. 18 (13), 14173-14182 (2010).
  9. Renoux, C., et al. Importance of methodological standardization for the ektacytometric measures of red blood cell deformability in sickle cell anemia. Clin Hemorheol Microcirc. 62 (2), 173-179 (2016).
  10. Parrow, N. L., et al. Measurements of red cell deformability and hydration reflect HbF and HbA2 in blood from patients with sickle cell anemia. Blood Cells Mol Dis. 65, 41-50 (2017).
  11. Ballas, S. K., Smith, E. D. Red blood cell changes during the evolution of the sickle cell painful crisis. Blood. 79 (8), 2154-2163 (1992).
  12. Johnson, R. M., Ravindranath, Y. Osmotic scan ektacytometry in clinical diagnosis. J Pediatr Hematol Oncol. 18 (2), 122-129 (1996).
  13. Mohandas, N., Clark, M. R., Jacobs, M. S., Shohet, S. B. Analysis of factors regulating erythrocyte deformability. J Clin Invest. 66 (3), 563-573 (1980).
  14. Lazarova, E., Gulbis, B., Oirschot, B. V., van Wijk, R. Next-generation osmotic gradient ektacytometry for the diagnosis of hereditary spherocytosis: interlaboratory method validation and experience. Clin Chem Lab Med. 55 (3), 394-402 (2017).
  15. Anderson, C., Aronson, I., Jacobs, P. Erythrocyte Deformability is Reduced and Fragility increased by Iron Deficiency. Hematology. 4 (5), 457-460 (1999).
  16. Reinhart, W. H., et al. Washing stored red blood cells in an albumin solution improves their morphologic and hemorheologic properties. Transfusion. 55 (8), 1872-1881 (2015).
  17. Shin, S., et al. Progressive impairment of erythrocyte deformability as indicator of microangiopathy in type 2 diabetes mellitus. Clin Hemorheol Microcirc. 36 (3), 253-261 (2007).
  18. Tu, H., et al. Low Red Blood Cell Vitamin C Concentrations Induce Red Blood Cell Fragility: A Link to Diabetes Via Glucose, Glucose Transporters, and Dehydroascorbic Acid. EBioMedicine. 2 (11), 1735-1750 (2015).
  19. Tiburcio, M., et al. A switch in infected erythrocyte deformability at the maturation and blood circulation of Plasmodium falciparum transmission stages. Blood. 119 (24), e172-e180 (2012).
  20. Henon, S., Lenormand, G., Richert, A., Gallet, F. A new determination of the shear modulus of the human erythrocyte membrane using optical tweezers. Biophys J. 76 (2), 1145-1151 (1999).
  21. Mills, J. P., Qie, L., Dao, M., Lim, C. T., Suresh, S. Nonlinear elastic and viscoelastic deformation of the human red blood cell with optical tweezers. Mech Chem Biosyst. 1 (3), 169-180 (2004).
  22. Moura, D. S., et al. Automatic real time evaluation of red blood cell elasticity by optical tweezers. Rev Sci Instrum. 86 (5), 053702 (2015).
  23. Evans, E. A. New membrane concept applied to the analysis of fluid shear- and micropipette-deformed red blood cells. Biophys J. 13 (9), 941-954 (1973).
  24. Chen, X., Feng, L., Jin, H., Feng, S., Yu, Y. Quantification of the erythrocyte deformability using atomic force microscopy: correlation study of the erythrocyte deformability with atomic force microscopy and hemorheology. Clin Hemorheol Microcirc. 43 (3), 243-251 (2009).
  25. Musielak, M. Red blood cell-deformability measurement: review of techniques. Clin Hemorheol Microcirc. 42 (1), 47-64 (2009).
  26. Dobbe, J. G., Streekstra, G. J., Hardeman, M. R., Ince, C., Grimbergen, C. A. Measurement of the distribution of red blood cell deformability using an automated rheoscope. Cytometry. 50 (6), 313-325 (2002).
  27. Dobbe, J. G., et al. Analyzing red blood cell-deformability distributions. Blood Cells Mol Dis. 28 (3), 373-384 (2002).
  28. Kikuchi, Y., Arai, T., Koyama, T. Improved filtration method for red cell deformability measurement. Med Biol Eng Comput. 21 (3), 270-276 (1983).
  29. Moessmer, G., Meiselman, H. J. A new micropore filtration approach to the analysis of white cell rheology. Biorheology. 27 (6), 829-848 (1990).
  30. Guo, Q., et al. Microfluidic analysis of red blood cell deformability. J Biomech. 47 (8), 1767-1776 (2014).
  31. Doh, I., Lee, W. C., Cho, Y. H., Pisano, A. P., Kuypers, F. A. Deformation measurement of individual cells in large populations using a single-cell microchamber array chip. Appl Phys Lett. 100 (17), 173702-173703 (2012).
  32. Baskurt, O. K., et al. Comparison of three commercially available ektacytometers with different shearing geometries. Biorheology. 46 (3), 251-264 (2009).
  33. Baskurt, O. K., et al. New guidelines for hemorheological laboratory techniques. Clin Hemorheol Microcirc. 42 (2), 75-97 (2009).
  34. Uyuklu, M., et al. Effects of storage duration and temperature of human blood on red cell deformability and aggregation. Clin Hemorheol Microcirc. 41 (4), 269-278 (2009).
  35. Uyuklu, M., Meiselman, H. J., Baskurt, O. K. Effect of hemoglobin oxygenation level on red blood cell deformability and aggregation parameters. Clin Hemorheol Microcirc. 41 (3), 179-188 (2009).
  36. Embury, S. H., Clark, M. R., Monroy, G., Mohandas, N. Concurrent sickle cell anemia and alpha-thalassemia. Effect on pathological properties of sickle erythrocytes. J Clin Invest. 73 (1), 116-123 (1984).
  37. von Tempelhoff, G. F., et al. Correlation between blood rheological properties and red blood cell indices(MCH, MCV, MCHC) in healthy women. Clin Hemorheol Microcirc. 62 (1), 45-54 (2016).
  38. Da Costa, L., Galimand, J., Fenneteau, O., Mohandas, N. Hereditary spherocytosis, elliptocytosis, and other red cell membrane disorders. Blood Rev. 27 (4), 167-178 (2013).

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Citer Cet Article
Parrow, N. L., Violet, P., Tu, H., Nichols, J., Pittman, C. A., Fitzhugh, C., Fleming, R. E., Mohandas, N., Tisdale, J. F., Levine, M. Measuring Deformability and Red Cell Heterogeneity in Blood by Ektacytometry. J. Vis. Exp. (131), e56910, doi:10.3791/56910 (2018).

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