Summary

体外F-肌动蛋白在早期体的聚合

Published: August 28, 2017
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Summary

早期 endosome 功能依赖于 F-肌动蛋白聚合。在这里, 我们描述了一个 microscopy-based 的体外测定, 每天的核化和聚合的 f-肌动蛋白在早期内涵膜的试管, 从而呈现这一系列复杂的反应, 可生化和遗传操作.

Abstract

许多早期的 endosome 功能, 特别是货物蛋白分选和膜变形, 依赖于内涵膜上有核的短的 f-肌动蛋白纤维的补丁。我们已经建立了一个 microscopy-based 的体外检测, 每天的核化和聚合的 f-肌动蛋白在早期内涵膜的试管, 从而呈现这一系列复杂的反应, 可遗传和生物化学操作.从表达早期内涵蛋白 GFP-RAB5 的细胞中浮选蔗糖梯度制备内涵分数。胞浆组分是由分离的细胞分批制备的。如果需要的话, 内涵和胞浆组分都可以在液氮中冷冻保存。在试验中, 内涵和胞浆组分混合, 在适当的条件下 (例如,离子强度, 还原环境) 在37° c 下孵育混合物。在所需的时间, 反应混合物是固定的, 和 f-肌动蛋白是揭示与笔。然后用荧光显微镜对肌动蛋白成核和聚合进行分析。在这里, 我们报告, 这种方法可以用来研究的作用, 涉及的因素, 在膜上的肌动蛋白成核, 或在随后的伸长, 分支, 或交联的 f-肌动蛋白丝。

Introduction

在更高的真核细胞中, 蛋白质和脂质被内化为早期的体, 在那里进行分类。一些蛋白质和脂质, 这是注定要利用, 被纳入到管状区域的早期体, 然后运到等离子膜或转移到高尔基体网络 (TGN)1,2。相比之下, 其他的蛋白质和脂质被选择性地包装到早期体的区域, multivesicular 出现。这些地区扩展, 并在脱离早期内涵膜, 最终成熟成自由内涵载体囊泡或 multivesicular 体 (ECV/MVBs), 负责货物运输对晚体1, 2

肌动蛋白在与内涵分选能力和 endosome 生物相关的膜重塑过程中起着至关重要的作用。蛋白质的分类沿着回收途径的等离子膜或 TGN 取决于 retromer 复合物和相关的蛋白质。这种分拣机械似乎是耦合到回收小管通过相互作用的 retromer 复合体, 与黄蜂和疤痕同系物 (洗涤) 复杂和分支肌动蛋白3,4,5.相反, 注定要降解的分子, 特别是活化的信号受体, 被分类成腔内囊泡 (ILVs) 的内涵分拣复合物所需的运输 (ESCRT)2,6, 7。尽管肌动蛋白在 ESCRT 依赖性分选过程中可能扮演的角色尚不清楚, 但 F-肌动蛋白在 ECV/MVBs 的生物和早期体的运输中起着重要作用。特别是, 我们发现蛋白 A2 结合胆固醇丰富地区早期 endosome, 并与 spire1, 核 F-肌动蛋白聚合。在体上观察到的分支肌动蛋白网络的形成, 需要蛋白 (ARP) 2/3 复合体的分支活性, 以及蛋白质 moesin 和肌动蛋白结合蛋白 cortactin8,9

在这里, 我们描述了一个 microscopy-based 的体外测定, 每天的核化和聚合的 f-肌动蛋白在早期内涵膜的试管。该方法已被用于研究蛋白 A2 在 f-肌动蛋白成核和 moesin 和 cortactin 形成内涵肌动蛋白网络中的作用8,9。通过这种体外协议, 在肌动蛋白聚合过程中体发生的一系列复杂反应, 可以对过程的顺序步骤进行生物化学和分子分析, 包括肌动蛋白成核、线性聚合、分枝和交联。

Protocol

1. 解决方案和准备工作 注意: 所有的缓冲区和解决方案都应在双 (dd) H 2 O 中准备。由于蔗糖的水合状态不同, 所有蔗糖溶液的最终浓度必须用折射仪来确定. 准备不含价阳离子的磷酸盐缓冲盐水 (PBS): 137 毫米盐、2.7 毫米氯化钾、1.5 mm 2 PO 4 和 6.5 mm Na 2 HPO 4 。调整 pH 值为7.4。灭菌 (1 循环在121和 #176; C 15 分钟) 和室温下?…

Representative Results

为了深入了解早期 endosome 膜上的 F 肌动蛋白补丁的形成, 我们遵循了图 2中概述的协议。简单地, 细胞被转染与 GFP-RAB5, 然后早期体是由亚单位分离制备的。这些纯化早期体的培养与胞, 以提供肌动蛋白本身以及其他因素可能涉及的反应。在潜伏期结束时, 通过固定的混合物停止反应。然后采集样品并在显微镜下沉积。最后, 笔 (图 3A</str…

Discussion

肌动蛋白在 endosome 膜动力学中起关键作用4,14。我们以前报道, 肌动蛋白成核和聚合发生在早期体, 形成小的 f-肌动蛋白补丁或网络。这些 f-肌动蛋白网络是绝对需要的膜运输超越早期体沿降解途径。干扰此成核和聚合过程的任何步骤, 防止 endosome 成熟, 从而对后期的体 andlysosomes9,11,15

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

得到瑞士国家科学基金会的支持;瑞士 Sinergia 计划;波兰-瑞士研究方案 (PSPB-094/2010);化学生物学中的 NCCR;LipidX 来自瑞士 SystemsX.ch 倡议, 由瑞士国家科学基金会 (j.g) 评估。o.m. 得到了 EMBO 长期研究金 (ALTF-516-2012) 的支持。

Materials

NaCl Sigma-Aldrich 71380
KCl Acros Organics 196770010
KH2PO4 AppliChem A1042
Na2HPO4 Acros Organics 424370025
Hepes AppliChem A3724
Magnesiun acetate tetrahydrate Fluka 63047
Dithiothreitol (DTT) AppliChem A2948
Imidazole Sigma-Aldrich 10125
NaOH Fluka 71690
Sucrose Merck Millipore 107687
Leupeptin Roche 11017101001
Pepstatin Roche 10253286001
Aprotinin Roche 10236624001
Paraformaldehide Polysciences. Inc 380
Alexa Fluor 555 phalloidin Molecular Probes A34055
Actin rhodamine Cytoskeleton. Inc APHR-A
Mowiol 4-88 Sigma-Aldrich 81381 poly(vinyl alcohol), Mw ~31 000 
DABCO Sigma-Aldrich D-2522
Tris-HCl AppliChem A1086
β-casein Sigma-Aldrich C6905
Filter 0.22um Millex  SL6V033RS
Round 10cm dishes for cell culture Thermo Fisher Scientific 150350
Plastic Pasteur pipette Assistent 569/3 40569003
15-ml polypropylen tube  TPP 91015
Hypodermic Needle 22G Black 30mm  BD Microlance 300900
Sterile Luer-slip 1ml Syringes without needle BD Plastipak 300013
Micro glass slides  Assistent 2406
18X18-mm glass coverslip Assistent 1000/1818
SW60 centrifuge tube Beckman coulter 344062
TLS-55 centrifuge tube Beckman coulter 343778
200-μl yellow tip Starlab S1111-0706
1000-μl Blue Graduated Tip Starlab S1111-6801
1.5-ml test tube Axygen MCT-175-C 311-04-051
18-mm diameter round coverslip  Assistent 1001/18
35-mm diameter round dish with a 20-mm glass bottom (0.16-0.19 mm)  In vitro Scientific D35-20-1.5-N
Refractometer Carl Zeiss 79729
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC-32G
Sorvall WX80 Ultracentrifuge Thermo Fisher Scientific 46900
Tabletop ultracentrifuge Beckman coulter TL-100
SW60 rotor Beckman coulter 335649
TLS-55 rotor Beckman coulter 346936
Confocal microscopy Carl Zeiss LSM-780
Fugene HD transfection reagent Promega E2311
Protein assay reagent A Bio-Rad 500-0113
Protein assay reagent B Bio-Rad 500-0114
Protein assay reagent S Bio-Rad 500-0115
Cell scraper Homemade Silicone rubber piece of about 2 cm, cut at a very sharp angle and attached to a metal bar or held with forceps
Refractometer Carl Zeiss
Minimum Essential Medium Eagle (MEM) Sigma-Aldrich M0643
FCS Thermo Fisher Scientific 10270-106
MEM Non-Essential Amino Acids (NEAA) Thermo Fisher Scientific 11140-035
L-Glutamine  Thermo Fisher Scientific 25030-024
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140-122
pH Meter 691 Metrohm
ImageJ software NIH, Bethesda MD

References

  1. Huotari, J., Helenius, A. Endosome maturation. EMBO J. 30 (17), 3481-3500 (2011).
  2. Scott, C. C., Vacca, F., Gruenberg, J. Endosome Maturation, Transport and Functions. Semin. Cell Dev Biol. 31, 2-10 (2014).
  3. Puthenveedu, M. A., et al. Sequence-dependent sorting of recycling proteins by actin-stabilized endosomal microdomains. Cell. 143 (5), 761-773 (2010).
  4. Seaman, M. N., Gautreau, A., Billadeau, D. D. Retromer-mediated endosomal protein sorting: all WASHed up!. Trends Cell Biol. 23 (11), 522-528 (2013).
  5. Burd, C., Cullen, P. J. Retromer: a master conductor of endosome sorting. Cold Spring Harb Perspect Biol. 6 (2), a016774 (2014).
  6. Woodman, P. G., Futter, C. E. Multivesicular bodies: co-ordinated progression to maturity. Curr Opin Cell Biol. 20 (4), 408-414 (2008).
  7. Henne, W. M., Buchkovich, N. J., Emr, S. D. The ESCRT pathway. Dev Cell. 21 (1), 77-91 (2011).
  8. Morel, E., Gruenberg, J. Annexin A2 binding to endosomes and functions in endosomal transport are regulated by tyrosine 23 phosphorylation. J Biol Chem. 284 (3), 1604-1611 (2009).
  9. Muriel, O., Tomas, A., Scott, C. C., Gruenberg, J. Moesin and cortactin control actin-dependent multivesicular endosome biogenesis. Mol Biol Cell. 27 (21), 3305-3316 (2016).
  10. Sonnichsen, B., De Renzis, S., Nielsen, E., Rietdorf, J., Zerial, M. Distinct membrane domains on endosomes in the recycling pathway visualized by multicolor imaging of Rab4, Rab5, and Rab11. J Cell Biol. 149 (4), 901-914 (2000).
  11. Morel, E., Parton, R. G., Gruenberg, J. Annexin A2-dependent polymerization of actin mediates endosome biogenesis. Dev Cell. 16 (3), 445-457 (2009).
  12. Kamentsky, L., et al. Improved structure, function and compatibility for CellProfiler: modular high-throughput image analysis software. Bioinformatics. 27 (8), 1179-1180 (2011).
  13. Meijering, E., et al. Design and validation of a tool for neurite tracing and analysis in fluorescence microscopy images. Cytometry A. 58 (2), 167-176 (2004).
  14. Granger, E., McNee, G., Allan, V., Woodman, P. The role of the cytoskeleton and molecular motors in endosomal dynamics. Semin Cell Dev Biol. 31, 20-29 (2014).
  15. Mayran, N., Parton, R. G., Gruenberg, J. Annexin II regulates multivesicular endosome biogenesis in the degradation pathway of animal cells. EMBO J. 22 (13), 3242-3253 (2003).
  16. Gorvel, J. P., Chavrier, P., Zerial, M., Gruenberg, J. rab5 controls early endosome fusion in vitro. Cell. 64 (5), 915-925 (1991).
  17. Wandinger-Ness, A., Zerial, M. Rab proteins and the compartmentalization of the endosomal system. Cold Spring Harb Perspect Biol. 6 (11), a022616 (2014).
  18. Balch, W. E., Glick, B. S., Rothman, J. E. Sequential intermediates in the pathway of intercompartmental transport in a cell-free system. Cell. 39 (3 Pt 2), 525-536 (1984).

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Citer Cet Article
Muriel, O., Scott, C. C., Larios, J., Mercier, V., Gruenberg, J. In Vitro Polymerization of F-actin on Early Endosomes. J. Vis. Exp. (126), e55829, doi:10.3791/55829 (2017).

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