Fabrication of Extracellular Matrix-derived Foams and Microcarriers as Tissue-specific Cell Culture and Delivery Platforms

Anna Kornmuller; Cody F.C. Brown; Claire Yu; Lauren E. Flynn

doi:10.3791/55436

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Bio-ingénierie

Fabbricazione di Schiume matrice extracellulare-derivati e microcarriers come tessuto-specifica delle cellule, Cultura e piattaforme di distribuzione

Published: April 11, 2017

doi:

10.3791/55436

Anna Kornmuller¹, Cody F.C. Brown², Claire Yu³, Lauren E. Flynn^2,4

¹Biomedical Engineering Graduate Program,The University of Western Ontario, ²Department of Anatomy & Cell Biology, Schulich School of Medicine & Dentistry,The University of Western Ontario, ³Department of Chemical Engineering,Queen’s University, ⁴Department of Chemical & Biochemical Engineering, Faculty of Engineering,The University of Western Ontario

Summary

La matrice extracellulare tessuto-specifico (ECM) è un mediatore chiave della funzione delle cellule. Questo articolo descrive metodi per sintetizzare schiume e microcarriers che sono stabili in coltura senza la necessità di reticolazione chimica per applicazioni in 3D avanzata de colture di cellule in vitro o come bioscaffolds pro-rigenerativi ECM-derivato puri.

Abstract

funzione delle cellule è mediata da interazioni con la matrice extracellulare (ECM), che ha complessa composizione ed architettura tessuto-specifica. Il focus di questo articolo è sui metodi per fabbricare schiume e microcarriers porosi ECM-derivato per l'uso come substrati biologicamente rilevanti nei 3D avanzata de modelli di colture cellulari in vitro o come impalcature pro-rigenerativo e sistemi di consegna delle cellule per l'ingegneria tissutale e la medicina rigenerativa. Utilizzando tessuti decellularizzati o collagene insolubili purificato come materiale di partenza, le tecniche possono essere applicate per sintetizzare una vasta gamma di bioscaffolds tessuto-specifiche con geometrie personalizzabili. L'approccio comporta lavorazioni meccaniche e mite digestione enzimatica per fornire una sospensione ECM che viene utilizzato per fabbricare le schiume tridimensionali o microcarriers attraverso procedure di congelamento e liofilizzazione controllati. Questi puri impalcature ECM-derivati sono altamente porosa, ma stabile senza la necessità di chemicAl agenti o altri additivi che possono influenzare negativamente la funzione delle cellule reticolazione. Le proprietà impalcatura possono essere sintonizzati in parte da fattori variabili quali la concentrazione ECM sospensione, metodi di lavorazione meccanica, o condizioni di sintesi. In generale, i ponteggi sono robusti e facili da maneggiare, e possono essere trattati come tessuti per la maggior parte saggi biologici standard, fornendo una piattaforma coltura cellulare 3D versatile e di facile utilizzo che riproduce la composizione ECM nativa. Nel complesso, questi metodi semplici per fabbricare schiume e microcarriers ECM-derivato personalizzate possono essere di interesse per entrambe biologi ed ingegneri biomedici come piattaforme cellule istruttivo tessuto-specifici per in vitro e in vivo applicazioni.

Introduction

La matrice extracellulare (ECM) è composto da una complessa rete 3D di proteine, glicoproteine e polisaccaridi ^1. Una volta considerato come un quadro prevalentemente strutturale, è ormai ampiamente riconosciuto che l'ECM incorpora una gamma diversificata di molecole bioattive con importanti ruoli funzionali ^2. Interazioni cellula-ECM possono dirigere la sopravvivenza cellulare, adesione, la migrazione, la proliferazione e la differenziazione ^3. Mentre le principali classi di macromolecole ECM sono generalmente ben conservate di tutti i tessuti e specie, ogni tessuto ha una composizione di matrice unica e l'architettura ^4. Nel complesso, l'ECM tessuto-specifica fornisce un microambiente istruttivo che media funzione dal subcellulare alla scala tessuti / organi ^5.

A causa del ruolo critico della ECM nel mediare la funzione cellulare, c'è stato un crescente interesse per la deluppo di bioscaffolds ECM di derivazione per applicazioni in ingegneria dei tessuti e della medicina rigenerativa. In particolare, il metodo di decellularization è stata ampiamente studiata come un mezzo per ottenere ECM da una vasta gamma di tessuti da utilizzare come materiale per ponteggi rigenerazione dei tessuti e la consegna cellule ^{^5,} ^{^6,} ^7. Decellularization genere comporta una serie di, chimiche, meccaniche e modulazione / o biologici trattamento mirato a rimuovere cellule e componenti cellulari, pur determinando ideale alterazioni minime alla struttura 3D e la composizione della ECM ^8. Attraverso rilevamento letteratura, vari protocolli decellularizzazione possono essere identificati per virtualmente ogni tessuto del corpo ^7.

Mentre i tessuti decellularizzati possono essere usate direttamente come supporti impiantabili o substrati di coltura cellulare 3D, infiltrazione cellulare puòessere limitato nei tessuti con una struttura densa ECM ^9. Inoltre, l'eterogeneità naturale nella ECM può causare variabilità nella adesione cellulare e la distribuzione all'interno delle matrici decellularizzati, che potrebbero influire sul risposta cellulare ^10. Nel complesso, mentre promettente per alcune applicazioni, applicando tessuti decellularizzati nella loro forma intatta offre scarsa versatilità in termini di proprietà di sintonizzazione ponteggio compresa la forma, porosità e rigidità, nonché le modalità di consegna per applicazioni in vivo.

Per aggirare queste limitazioni, numerosi gruppi di ricerca stanno applicando ulteriori metodi di elaborazione per generare formati ponteggio personalizzati utilizzando tessuti decellularizzati come materiale di base. Nella forma più semplice, ciò può comportare cryomilling tessuti decellularizzati per generare particelle ECM tessuto-specifici iniettabili ^11. Queste particelle ECM possono essere incorporati come una cellula-instrucomponente ctive in scaffold compositi con altri biomateriali, come in situ reticolazione idrogel ^{^12,} ^{^13,} ^14. Oltre alle lavorazioni meccaniche, tessuti decellularizzato possono anche essere sottoposti a digestione enzimatica con proteolitica e / o enzimi glicolitici per fabbricare idrogel ECM-derivati, schiume, microcarriers e rivestimenti ^{^15,} ^{^16,} ^17, nonché per sintetizzare bioinks per stampa 3D ^18.

Oltre alle applicazioni di ingegneria tissutale, bioscaffolds ECM-derivati tengono un grande potenziale per la generazione di una maggiore fedeltà modelli in vitro per la ricerca biologica. C'è un forte bisogno di sviluppare sistemi di coltura cellulare 3D che meglio ricapitolano il microambiente cellulare nativo ^19. La maggior parte in vitro cell cultura studi fino ad oggi sono condotti in coltura tissutale polistirene (TCPS), che ha scarsa correlazione con l'ambiente cellulare biologicamente complesso e dinamico trovati nei tessuti viventi ^20. Mentre conveniente per studiare le interazioni cellulari all'interno di un ambiente controllato, coltivando cellule su questi substrati rigidi 2D semplificate altera l'adesione cellulare e la morfologia, così come sia cellula-cellula e cellula-ECM INTERAZIONI ^{^21,} ^22. Gli adattamenti cellulari osservati in 2D TCPS possono influire segnali intracellulari che regolano le funzioni cellulari diversi, tra cui la sopravvivenza, proliferazione, migrazione e differenziazione, sollevano questioni di pertinenza di studi 2D nella modellazione sistemi in vivo ^23. C'è stato un crescente riconoscimento che il comportamento cellulare può variare notevolmente in 2D rispetto ai sistemi 3D ^24, e che la biochimica e bisegnalazione omechanical con l'ECM sono mediatori chiave di funzione delle cellule ^25. Molti gruppi hanno tentato di superare i limiti dei sistemi 2D stabiliti mediante rivestimento TCPS con componenti ECM come il collagene, laminina, fibronectina e. Mentre queste strategie in grado di migliorare l'adesione delle cellule e possono alterare le risposte cellulari, questi modelli rimangono limitati dalla loro configurazione 2D che non imitano la complessa organizzazione spaziale o la biochimica del ECM nativa ^{^26,} ^27.

Il nostro laboratorio di bioingegneria si è interessata allo sviluppo di bioscaffolds ECM-derivati come substrati per applicazioni di coltura cellulare e ingegneria tessutale 3-D. In particolare, abbiamo sperimentato l'uso di tessuto adiposo decellularizzato (DAT) come tavola per ponteggio per la rigenerazione adiposo ^28. Inoltre, abbiamo stabilito metodi per sintetizzare microcarriers 3D e schiume porose usando DAT digeriti con pepsina enzima proteolitico o enzima glicolitico α-amilasi ^{^29,} ^{^30,} ^31. In particolare, abbiamo dimostrato in tutti questi formati scaffold che l'ECM adiposo derivata fornisce un microambiente induttivo per la differenziazione adipogenica di cellule umane derivate da tessuto adiposo gambo / stromali (CSA) in coltura. Più recentemente, abbiamo deciso di metodi di fabbricazione per produrre schiume 3D porosi suina α-amilasi digeriti decellularizzato ventricolo sinistro (DLV) (metodi decellularizzazione adattati da Wainwright et al. ^32), e dimostrato che prevedono la piattaforma di supporto per indurre cardiomyogenic presto espressione marcatore in pericardio umani ASC grassi di derivazione ^31.

Questo articolo descrive in dettaglio i metodi per la sintesi non chimicamente reticolate schiume porose 3D microcarriers derivati puramenteda ECM α-amilasi digeriti per uso come 3D biologicamente complesso de substrati di coltura cellulare in vitro e come biomateriali per la rigenerazione tissutale. In teoria, qualsiasi sorgente ECM contenente collagene alto peso molecolare può essere usato come materiale di partenza per queste tecniche. Per dimostrare la flessibilità di questo approccio, i metodi sono stati applicati per generare bioscaffolds tessuto-specifici utilizzando DAT umana, porcina decellularizzato tessuto dermico (DDT) ^8, e porcina DLV come esempi rappresentativi. Figura 1 fornisce una visione d'insieme del processo di fabbricazione per le schiume e microcarriers ECM-derivato.

Figura 1. Descrizione del metodo per la produzione di schiume e microcarriers ECM-derivato tessuto-specifici. Decelerazione 1. tessuti decellularizzato, preparato seguendo stabilitaprotocolli lularization, possono essere utilizzati per tessuto-specifica ECM derivato bioscaffold fabbricazione. Immagini macroscopiche sono mostrati di idrato DAT umana (preparato come descritto Flynn 2010 ^28), DDT porcina (preparato come descritto Reing, JE, et al. 2010 ^8), e suini DLV (preparati come descritto in Wainwright et al. 2010 ³² ), come esempi rappresentativi di fonti ECM che possono essere utilizzati come materiali di partenza. Barre di scala rappresentano 3 cm. 2. I tessuti decellularizzati vengono liofilizzati, e quindi macinate 3. meccanicamente. Barre di scala rappresentano 1 cm. 4. L'ECM macinate può quindi essere cryomilled, che è opzionale per la schiuma fabbricazione, ma necessaria per la sintesi microsupporto. bar scala rappresenta 3 mm. 5. L'ECM macinate o cryomilled viene poi digerito con α-amilasi e omogeneizzata per creare una sospensione omogenea ECM. bar scala rappresenta 1 cm. <strong> 6a) Per schiuma realizzazione, la sospensione ECM viene trasferita in un definito dall'utente stampo, congelato e liofilizzato per generare uno scaffold 3D poroso con una geometria ben definita. bar scala rappresenta 1 cm. 6b) Per la realizzazione microcarrier, la sospensione ECM cryomilled è electrosprayed per generare microcarriers sferiche discreti. bar scala rappresenta 2 mm. 7. Le schiume e microcarriers possono poi essere gradualmente reidratati e seminato con cellule. Immagini rappresentative sono mostrati di ASC umane (cellule vitali = verde) seminate su una schiuma DAT (a sinistra) e DAT microsupporto (a destra). Barre di scala rappresentano 100 um. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Protocol

1. Elaborazione tessuto decellularizzato Decellularization e liofilizzazione tessuto Decellularize (s) di interesse a seguito di un protocollo stabilito. NOTA: Ponteggi in questo studio sono stati preparati seguendo protocolli decellularizzazione pubblicati per DAT umano 28, DDT porcina 8, e suina DLV 32. Disponibile in commercio, collagene insolubile può anche essere usato per fabbricare schiume e microcarriers, come il collagene provenienti da tendine bovino, che è stato usato con successo su un intervallo di concentrazione di 10 – 50 mg / mL. Altre fonti di collagene insolubili possono essere utilizzati, ma possono richiedere ottimizzazione per individuare l'intervallo di concentrazione che produrrà impalcature stabili. Trasferire il tessuto decellularizzato idrato o collagene purificato in una provetta da centrifuga 50 con una pinza e aggiungere sufficiente acqua distillata doppia (DDH 2 O) immergere il tessuto, toa volume massimo totale di 35 ml. Congelare il campione una notte a -80 ° C, con la provetta in posizione orizzontale durante il congelamento per massimizzare l'area di superficie per sublimazione durante la successiva liofilizzazione. Rimuovere il tappo dalla provetta e trasferire il campione congelato in un vaso liofilizzazione. Lyophilize campione utilizzando un laboratorio liofilizzatore per 48 – 72 ore o fino a quando completamente asciugato. NOTA: Il tempo di asciugatura può variare per diversi liofilizzatori e tessuti decellularizzato. Finemente tritare l'ECM liofilizzata in piccoli pezzi (~ 1 – 2 mm 3) usando forbici chirurgiche affilate. Conservare l'ECM tritata in un essiccatore fino al momento per ulteriori elaborazioni. NOTA: Si raccomanda che l'ECM tritato essere utilizzato immediatamente per evitare l'assorbimento di umidità dall'ambiente. Cryomilling (facoltativo per schiuma fabbricazione) Riempire un acciaio inossidabile camera di macinazione 25 mL di laboratoSistema ry ball mulino con ECM liofilizzato macinate e aggiungere due sfere in acciaio inox fresatura 10 mm. Chiudere e completamente immergere la camera di macinazione caricata in azoto liquido per 3 min. Mill il campione congelato per 3 minuti a 30 Hz (1.800 rpm). Ripetere i punti 1.2.2 e 1.2.3 finché l'ECM è macinato in una polvere fine. NOTA: Il numero di volte in cui questi passaggi devono essere ripetuti può variare tra le sorgenti ECM. Ad esempio, DAT genere richiede 3 cicli di fresatura per generare una polvere fine. Trasferire la polvere utilizzando uno scoopula in una fiala di vetro, sigillare ermeticamente, e memorizzare in un essiccatore. Preparazione ECM Sospensione Pesare 250 mg di ciascuna macinata (per schiume) o cryomilled (per schiume o microcarriers) ECM e trasferirlo in una provetta da centrifuga 15. Fare riferimento al punto 1.1.6 e 1.2 per la preparazione di ECM macinate e ECM cryomilled, rispettivamente. NOTA: Questo protocollo è progettato per preparare 50 mg / mL ECM suspenSion, che è raccomandato per DAT umana, DDT suina e suina DLV. A seconda della fonte ECM specifico, sospensioni uniformi possono essere generati a concentrazioni iniziali superiori o inferiori. Aggiungere 5 ml di 0,22 M NaH 2 PO 4 (pH 5.4) tampone nella provetta da centrifuga e segnare il livello del liquido sul tubo. Preparare una soluzione madre α-amilasi aggiungendo 7,5 mg di α-amilasi di 1 mL 0,22 M NaH 2 PO 4 (pH 5,4) tampone. Aggiungere 100 ml di soluzione madre α-amilasi (0,75 mg di α-amilasi; 0.3% w / w di tessuto secco) al campione. Aggiungere 0,22 M NaH 2 PO 4 per ottenere un volume finale di 10 ml. Agitare la sospensione continuo a 300 rpm per 72 ore a temperatura ambiente. Centrifugare la sospensione a 1.500 xg per 10 min. Raccogliere accuratamente e scartare il surnatante senza disturbare il pellet ECM digerito. Risospendere il materiale pellettato in 10 mL di NaCl al 5% diluito in DDH 2 O. Ripetere passaggio 1.3.5 per un totale di due risciacqui con 5% di NaCl in DDH 2 O. Eliminare il supernatante e risospendere il materiale pellettato in 10 ml di DDH 2 O. Agitare la sospensione continuamente a 300 rpm per 10 minuti a temperatura ambiente. Centrifugare la sospensione a 1.500 xg per 10 min. Raccogliere accuratamente e scartare il surnatante senza disturbare il pellet ECM digerito. Aggiungere 0,2 M di acido acetico fino alla tacca 5 ml praticato al punto 1.3.2. Agitare la sospensione continuo a 120 rpm O / N a 37 ° C. Omogeneizzare la sospensione ECM a temperatura ambiente in intervalli di dieci secondi usando un omogeneizzatore portatile dotato di un dente di sega sonda larghezza 10 millimetri finché nessun frammenti visibili rimangono. Posizionare la sospensione in un bicchiere di acqua fredda tra gli intervalli di omogeneizzazione per evitare il surriscaldamento. NOTA: A seconda della sorgente ECM, ulteriore diluizione in 0,2 M di acido acetico può essere richiesto per ottenere una sospensione omogenea. Eraffreddamento xcessive della sospensione ECM può comportare un aumento della viscosità che può interferire con omogeneizzazione efficiente. Se viene rilevato un aumento della viscosità, il campione può essere rewarmed a 37 ° C e sottoposto a ulteriore lavorazione. Conservare a 4 ° C per un massimo di un mese prima della schiuma o microsupporto fabbricazione. 2. Fabrication Schiuma ECM-derivato Incubare la sospensione ECM dal passaggio 1.3.13 (macinate o cryomilled) a 37 ° C con agitazione a 120 rpm continua fino a quando la sospensione è caldo. Diluire la sospensione ECM in 0,2 M acido acetico alla concentrazione desiderata. NOTA: A seconda della sorgente ECM, schiume stabili può essere preparato nel range di 10 – 100 mg / ml, con il 15 – 50 mg / ml come nei limiti indicati per DAT, DDT e DLV. Tipicamente, schiume fabbricate a concentrazioni più elevate saranno leggermente meno porosa ma più stabile in coltura e maneggevole. Usando una siringa da 3 ml won un ago da 18 G per evitare la formazione di bolle nella sospensione ECM, riempire lo stampo desiderata con la sospensione ECM. Per fabbricare il DAT, DDT, e schiume DLV, dispensare 400 ml di 35 mg / mL di sospensione ECM in una piastra di coltura trattata cellulare a 48 pozzetti. NOTA: La forma dello stampo selezionato e il volume della sospensione ECM determineranno la geometria della schiuma risultante. Coprire e congelare gli stampi durante la notte mettendoli in una -20 ° C o -80 ° C freezer. NOTA: La temperatura di congelamento può influenzare la porosità delle schiume. Pori più grandi sono attesi quando i campioni vengono congelati a -20 ° C rispetto ai -80 ° C a causa della formazione di cristalli di ghiaccio più grandi 33. Per fabbricare schiume con una struttura porosa uniforme, assicurarsi che lo stampo non è in contatto con una superficie conduttiva per evitare il raffreddamento direzionale. Posizionare gli stampi contenenti i campioni congelati in un pallone liofilizzatore. Collegare il pallone liofilizzatore alla laboratORY blocco del sistema asciugatrice e asciugare per 24 ore. NOTA: E 'importante che il campione rimane congelato prima della liofilizzazione. Conservare le schiume liofilizzati in un essiccatore fino al momento dell'uso. 3. Fabrication microcarrier ECM-derivata tramite Electrospraying NOTA: Una panoramica del electrospraying set è mostrato in Figura 2. Incubare la sospensione ECM cryomilled dal punto 1.3.13 a 37 ° C con agitazione continua a 100 rpm O / N. NOTA: Cryomilled ECM viene utilizzato per fabbricare i microcarriers ECM-derivati per garantire una maggiore uniformità nella sospensione e prevenire intasamento durante electrospraying. Carico 3 mL di sospensione ECM in una serratura mL Luer della siringa 3 allegando infusione alato impostare sul foro della siringa. NOTA: Una serie di misuratori dell'ago può essere utilizzato, riconoscendo che la selezione può influenzare la dimensione e la forma dei microcarriers risultanti. per fabricate le microcarriers DAT, DDT, e DLV, utilizzare un ago G 25. Fissare la siringa all'interno della pompa a siringa. Fissare l'ago a un supporto storta e posizionare la punta dell'ago verticalmente ad una distanza di 4 – 6 cm dal bordo superiore di un vaso dewar basso modulo (250 – 500 Campo dimensione mL negativa). Collegare un elettrodo coccodrillo per la punta dell'ago e collegarlo al terminale positivo di alimentazione ad alta tensione. Piegare una striscia di lamina di alluminio (12 x 5 cm) oltre il bordo del contenitore termico. Collegare un secondo elettrodo coccodrillo al bordo esterno del foglio e collegarlo al terminale di sorgente massa dell'alimentatore. Riempire il vaso dewar con azoto liquido per circa 1 cm dalla parte superiore, in modo che ¾ della lamina è sommerso. NOTA: E 'importante mantenere il vaso dewar riempito con azoto liquido. La superficie dell'azoto liquido deve essere inferiore a 2 cm dalla parte superiore del pallone nel procedimento di electrosprayingS. rabbocco continuo dell'azoto liquido è richiesto per mantenere un livello costante durante electrospraying. Impostare la pompa a siringa ad una velocità di infusione di 30 ml / h. NOTA: Variando la velocità di infusione può alterare la forma microsupporto e il diametro, ma l'intervallo consigliato è 25 – 35 ml / h. Mentre è fortemente dipendente dalla viscosità della sospensione, le portate inferiori a 25 ml / h può comportare la generazione di microcarriers grandi. A portate molto basse, la dimensione e la forma dei microcarriers possono diventare meno omogenea. Alla velocità di infusione sopra i 35 ml / h, l'uniformità delle goccioline generate tramite electrospraying può essere interrotto, con conseguente microcarriers non sferiche con una distribuzione di dimensione più ampia 34. Applicare una tensione di 20 kV e accendere la pompa a siringa per avviare electrospraying. NOTA: La tensione può essere variata per regolare le dimensioni delle microcarriers e tende ad avere un maggiore impatto sul diametro che l'infusioTasso n. L'intervallo di tensione raccomandato è 15 – 25 kV. Una diminuzione del diametro microsupporto è previsto con un aumento della tensione 35. Dopo il completamento dell'infusione, accuratamente travasare azoto liquido in eccesso dal Dewar, lasciando le microcarriers sospese in ~ 25 mL di azoto liquido per garantirne la congelati. trasferire immediatamente i microcarriers con l'azoto liquido in un tubo da 50 ml centrifuga versando in un movimento uniforme. Raccogliere eventuali microcarriers congelati rimasti nella Dewar con uno scoopula e aggiungerli alla provetta. NOTA: A seconda della dimensione del Dewar, le microcarriers in azoto liquido può essere inizialmente versata in un recipiente di medie dimensioni, e quindi trasferito immediatamente nel tubo da 50 ml per centrifuga. Coprire provetta contenente le microcarriers in azoto liquido con un foglio di alluminio perforato con piccoli fori in preparazione per liofilizzazione. Posizionare la centrifuga copertotubi in un pallone liofilizzatore. collegare immediatamente il pallone liofilizzatore e asciugare i campioni O / N. NOTA: E 'molto importante mantenere i microcarriers sospese in azoto liquido per garantire che non scongelare prima di questa fase, come scongelamento può provocare il collasso e / o aggregazione. DAT, DDT e DLV microcarriers fabbricate ad una concentrazione di 35 mg / ml usando le condizioni electrospraying sopra descritte hanno tipicamente un diametro idratato compresa fra i 350 – 500 um di dimensione. La distribuzione delle dimensioni possono variare a seconda della fonte ECM. Conservare le microcarriers liofilizzati in un essiccatore fino al momento dell'uso. Figura 2. Descrizione generale del Apparato Electrospraying utilizzato in microcarrier Fabrication. A: Immagine che mostra la disposizione delle apparecchiature electrospraying chiave tra cui la pompa a siringae alimentatore ad alta tensione, nonché il posizionamento dell'ago rispetto alla Dewar di azoto liquido. B: Electrospraying schematica, compresi gli intervalli consigliati per la tensione, velocità di infusione, e la distanza. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura. 4. Schiume Preparazione e microcarriers per colture cellulari reidratazione Trasferire le schiume liofilizzati con pinza in un tubo da 50 ml centrifuga contenente eccesso di etanolo assoluto (~ 99.9%) (~ 5: 1 rapporto di etanolo per schiume). Analogamente, risospendere le microcarriers liofilizzati in eccesso di etanolo assoluto all'interno della provetta originale utilizzato per la raccolta. Usando una pipetta sierologica, filtrare le microcarriers attraverso un acciaio setaccio a maglie di dimensione definita in un nuovo tubo 50 ml centrifuga per eliminare eventuali aggregati e selezionare per intervalli di dimensioni desiderate. NOTA: Se le schiume sono fabbricati all'interno piastre TCP, possono essere reidratati direttamente all'interno di questi vasi. Incubare a 4 ° C per 4 ore o fino a quando le schiume o microcarriers hanno gravità depositata sul fondo della provetta. Eseguire tutte le fasi successive in una cappa a flusso laminare sterile utilizzano reagenti e la corretta tecnica asettica. Rimuovere l'etanolo assoluto con una pipetta sierologica e aggiungere eccesso (rapporto 5: 1) 95% di etanolo diluito con soluzione salina fosfato sterile tamponata (PBS) per i ponteggi. Incubare a 4 ° C per 4 ore o fino a quando le impalcature ECM-derivati hanno toccato il fondo del recipiente reidratazione. Gradualmente reidratare i ponteggi attraverso una serie di etanolo (90, 85, 80, 75, 70, 50, 25 e 0%, diluita con PBS sterile). Ad ogni passo, incubare a 4 ° C fino a quando i ponteggi hanno toccato il fondo del recipiente prima di cambiare la soluzione. Degassare i ponteggi sotto vuoto luce se la formazione di bolle all'interno dei ponteggi è observed. Sostituire la PBS sterile per ulteriori due risciacqui per eliminare l'etanolo residuo. Conservare in 100% sterile PBS a 4 ° C fino al momento coltura cellulare. Utilizzare i ponteggi all'interno di 1 – 2 settimane dopo la reidratazione. Preparazione per Cell semina Il giorno prima della semina, trasferire le schiume con pinze in coltura cellulare trattato bene piastre o inserti transwell e aggiungere terreno di coltura cellulare sufficiente (selezionato in base al tipo di cellula di interesse) per immergere completamente le impalcature (ad esempio, 2,5 mL / scaffold in una piastra 12 pozzetti). Analogamente, consentono ai microcarriers alla gravità depositano all'interno della provetta da centrifuga, attentamente rimuovere il PBS usando una pipetta sierologica senza disturbare i microcarriers, e aggiungere terreno di coltura per ottenere un rapporto 5: 1 di mezzo ai microcarriers. NOTA: per la semina ASC umani, utilizzare mezzo di Eagle modificato da Dulbecco (DMEM): miscela di nutrienti F12 di Ham integrato consiero 10% bovino fetale (FBS) e 1% di penicillina-streptomicina. Sostituire il terreno di coltura cellulare per un totale di un risciacquo. Equilibrare la notte ponteggi nel terreno di coltura a 37 ° C. I ponteggi saranno pronti per la semina delle cellule il giorno successivo. NOTA: Le schiume possono essere seminati in staticamente inserti colture cellulari o coltura tissutale piastre a pozzetti 29, o seminate dinamicamente utilizzando un agitatore da laboratorio 36. A seconda della fonte ECM, metodi di lavorazione e la concentrazione della sospensione, semina dinamica può migliorare l'adesione cellulare iniziale, la proliferazione e l'infiltrazione. I microcarriers possono essere seminati dinamicamente utilizzando un sistema di coltura filatore 11.

Representative Results

In questo studio, abbiamo fabbricato schiume e microcarriers ECM derivato utilizzando DAT umano, DDT porcina e porcina DLV come esempi rappresentativi dimostrano che le tecniche possono essere applicate per generare bioscaffolds tessuto-specifici utilizzando una varietà di tessuti decellularizzati come fonti ECM ( figura 1). Sia per schiuma e microcarrier fabbricazione, la tecnica Nishihara di collagene solubilizzazione con l'enzima glicolitico α-amilasi 37 è atto a generare una sospensione ECM viscoso dal tessuto materiali di partenza decellularizzati, che viene utilizzato per sintetizzare le bioscaffolds attraverso procedure di congelamento e liofilizzazione controllati. Per fabbricare le schiume, tessuti decellularizzati possono essere elaborati attraverso sia macinazione meccanica o cryomilling per aumentare la superficie prima della digestione enzimatica. A seguire45; amilasi trattamento e omogeneizzazione, la sospensione risultante viene erogato ECM in uno stampo definito dall'utente, che viene poi congelato e liofilizzato. I ponteggi possono essere memorizzati stabilmente allo stato secco per un periodo prolungato di tempo. Prima dell'uso in studi su colture cellulari, i ponteggi liofilizzati devono essere sottoposti ad un processo di reidratazione controllato che produce schiume omogenei porosi e altamente idratati derivate da ECM puro (Figura 3A). Se gli espansi sono reidratati troppo rapidamente, rapido gonfiore può danneggiare delicate caratteristiche strutturali, con conseguente perdita di integrità e collasso strutturale. In generale, gli espansi manterranno la forma definita dallo stampo seguente reidratazione originale e sono stabili senza necessità di reticolazione chimica. Figura 3B mostra rappresentante microscopio elettronico a scansione (SEM) immagini del DAT, DDT, e DLV schiume fabbricato con ECM cryomilled ad una concentrazione di 35 mg / mL e una temperatura di congelamento di -80 & #176; C. Figura 3. rappresentativi Immagini della DAT, DDT, e DLV Schiume fabbricato con Cryomilled ECM Sospensioni ad una concentrazione di 35 mg / mL e congelato a -80 ° C. A: vista macroscopico del DAT, DDT, e DLV schiume sintetizzati in 48 pozzetti stampo piastra di coltura tissutale conseguente reidratazione fresato. Barre di scala rappresentano 1 cm. B: immagini SEM delle schiume DAT, DDT, e DLV mostrando un ultrastruttura porosa omogenea. Barre di scala rappresentano 100 um. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura. Le sospensioni ECM cryomilled possono anche essere utilizzati per generare microcarriers ECM-derivato puri attraverso tecniche electrospraying (Figura 2 </strong>). Per ciascuna sorgente ECM, la concentrazione della sospensione, gauge, velocità di infusione, e la tensione può essere sintonizzato per generare microcarriers sferiche discreti da 350 – 500 um di diametro seguente reidratazione controllata (Figura 4A). Mentre le microcarriers possono essere memorizzati in uno stato liofilizzato, è raccomandato per facilità di trattamento che sono erogate o setacciati per un intervallo di dimensioni desiderato seguendo risospensione in etanolo. Immagini SEM suggerisce che l'ultrastruttura microsupporto può variare a seconda della fonte di tessuto decellularizzato (Figura 4B). Figura 4. rappresentativi Immagini della DAT, DDT, e DLV microcarriers fabbricato con Cryomilled ECM Sospensioni ad una concentrazione di 35 mg / mL, una velocità di infusione di 0,5 mL / min, ed una tensione applicata di 20 kV. A: macroscopica vista of gli idrati microcarriers DAT, DDT, e DLV. Barre di scala rappresentano 4 mm. B: immagini SEM delle microcarriers DAT, DDT, e DLV mostrano che l'ultrastruttura e le dimensioni possono variare a seconda della fonte ECM. Barre di scala rappresentano 100 um. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura. Le proprietà meccaniche dei ponteggi dipendono dalla sorgente ECM, il metodo di lavorazione applicato (cioè macinazione contro cryomilling), la concentrazione della sospensione ECM, e la temperatura di congelamento. In generale, i ponteggi sono morbidi e conformi con moduli di Young nell'intervallo di 1 – 5 kPa riportata per la DAT (50 e 100 mg / mL) 29 e schiume DLV (20 – 50 mg / mL) 31, e <1 kpa per i microcarriers. le schiume cryomilled sono tipicamente più morbidi thuno tritate a causa della loro natura interrotto. sistemi di prova meccanici specializzati muniti celle carico altamente sensibili necessari un'accurata caratterizzazione delle proprietà compressione. tipicamente, e microcarriers avrebbero moduli inferiore ai tessuti nativi decellularizzati dovute alle ulteriori fasi lavorazione coinvolte nella fabbricazione compresi digestione enzimatica omogeneizzazione, nonché la non covalente reticolato dei ponteggi. tuttavia, questo può variare seconda del tessuto interesse. ad esempio, nel lavoro precedente, abbiamo scoperto che macinate dat fabbricata concentrazioni alte ecm (100 mg >

Discussion

In generale, bioscaffolds derivati da tessuti decellularizzati possono più strettamente approssimare la composizione 3D complessa e struttura della ECM nel microambiente cellulare nativo rispetto agli scaffold sintetici o modelli di coltura standard basati su 2D TCPS. Come discusso in precedenza, le interazioni cellula-ECM sono criticamente importanti nel mediare comportamento cellulare sia nella cultura e nel corpo ^1. Riconoscendo che le proprietà biochimiche, biofisiche, e biomeccaniche del ECM sono unici per ogni tessuto, è sempre più evidente per sostenere le ragioni per l'applicazione di approcci tessuto-specifiche nella progettazione di biomateriali per l'ingegneria dei tessuti, così come nello sviluppo di più fisiologicamente modelli di coltura rilevanti per esperimenti in vitro ^20. Utilizzando tessuti decellularizzati come materiale di partenza, i nostri metodi possono incorporare la complessa composizione della ECM specifico tessuto entro più custFormati ponteggi omizable. Mentre le operazioni meccaniche ed enzimatiche di elaborazione si tradurrà in una perdita della ultrastruttura ECM nativa, studi precedenti con DAT hanno dimostrato che gli effetti istruttivi della ECM derivate da tessuto adiposo sono conservati in questi formati impalcatura, suggerendo che la composizione bioscaffold è un mediatore chiave della funzione delle cellule ^{^11,} ^29. Un significativo vantaggio di utilizzare schiume ECM-derivato e microcarriers come substrati di coltura cellulare rispetto ai tessuti intatti decellularizzati è che sono più omogenea, che può migliorare l'uniformità di distribuzione delle celle e le interazioni cellula-cellula / cellula-ECM.

I metodi qui descritti possono essere utilizzati per generare una vasta gamma di bioscaffolds tessuto-specifici per l'uso in applicazioni di coltura cellulare e ingegneria tessutale. Ad esempio, oltre al DAT, DDT, e DLV, il nostro laboratorio ha applicato con successo queste tecniche per generare por 3Dschiume OU utilizzando osso decellularizzato, cartilagine, nucleo polposo, e fibroso, così come disponibile in commercio, collagene insolubile derivato da tendine bovino. Da una prospettiva in vitro, questi bioscaffolds potrebbero essere utilizzati come base per modelli di coltura fedeltà superiore 3D per indagare biologia cellulare, fisiologia o malattia patologia ^38, come substrati bioattivi in alto throughput piattaforme di screening farmaco ^39, o matrici come istruttivi per stelo differenziazione cellulare ^{^40,} ^41. DAT, DDT e DLV schiume fabbricate a concentrazioni di 25 – 50 mg / ml sono stabili a lungo termine de coltura in vitro (testato fino a 28 giorni). Inoltre, tutti i tre tipi di microcarriers possono supportare l'adesione cellulare e la proliferazione in condizioni dinamiche in un sistema di coltura filatore bassa potenza di taglio (10 – 15 rpm) per almeno 2 settimane. Per le applicazioni in vivo, il biocompatibile e biodegradable schiume e microcarriers ECM-derivato promettenti come prodotti off the shelf per stimolare rimodellamento tissutale costruttivo e rigenerazione ^{^11,} ^29. Inoltre, i ponteggi cellule adesive potrebbero essere utilizzati come sistemi di somministrazione di terapia cellulare ^{^42,} ^43. Come esempio, le schiume DAT hanno mostrato di promuovere l'angiogenesi e adipogenesis quando seminato con ASC allogenici e impiantato per via sottocutanea in un modello di ratto immunocompetente ^29. Rispetto al DAT intatto, DAT più elaborato schiume degradata molto più rapidamente, con una riduzione del 50% in volume osservato a 3 settimane come vennero integrati con i tessuti dell'ospite, e quasi totale riassorbimento di 12 settimane. Tuttavia, gli espansi anche indotto una risposta angiogenica più potente, suggerendo che l'ECM enzima digerita avuto effetti unici pro-rigenerative. Analogamente, i microcarriers ECM-derivati possono essere usati come in vitro </ em> substrati di coltura cellulare nei sistemi di coltura dinamici e veicoli di consegna cella come iniettabili ^{^11,} ^{^30,} ^44. Più specificamente, il piccolo diametro e ampia area superficiale delle microcarriers potrebbe consentire l'erogazione di una grande quantità di cellule in un piccolo volume, pur fornendo una matrice che può aiutare a sostenere la vitalità delle cellule e aumentare la ritenzione delle cellule nel sito di iniezione ^30. Prima di utilizzare in qualsiasi sistema vivente, è fondamentale garantire che l'ECM sorgente è sostanzialmente privo di componenti cellulari antigenici e / o reagenti decellularizzazione potenzialmente citotossici che potrebbero innescare una risposta dell'ospite ⁷ negativo.

Pepsina enzima proteolitico è comunemente usato nella preparazione di idrogel ECM-derivato ^15. Pepsina è una proteasi non specifico che digerire collagene ed altre proteine ECM into piccoli frammenti ^45. Mentre idrogel fabbricati con ECM pepsina-digerito sono stati segnalati per avere effetti di cellule-istruttivo, una limitazione è che questi materiali tendono ad essere estremamente meccanicamente deboli ^46. Nel nostro sviluppo iniziale delle microcarriers DAT, abbiamo utilizzato un approccio composito in cui pepsina-digerito DAT è stato combinato con alginato e aggiunta goccia a goccia in CaCl ₂ per formare perle sferiche ^30. Le perle sono state successivamente foto-reticolato e l'alginato è stato estratto usando il citrato di sodio. Oltre alla necessità di reticolazione chimica, una limitazione chiave era che le microcarriers fabbricati con questo approccio ha avuto scarsa stabilità di sotto di una gamma di dimensioni 900 – 950 um ^30. Al posto di pepsina, i metodi qui presentati utilizzano una digestione più lieve della ECM con l'enzima glicolitico α-amilasi, che viene postulato di scindere gruppi carboidrati dalla teloperegioni ptide di collagene, aumentando così la solubilità in acido acetico ^37. Questo approccio consente l'isolamento di collagene altamente polimerizzata che può essere utilizzato per generare schiume e microcarriers ECM-derivato puri senza la necessità di reticolazione chimica o altri additivi. Questi bioscaffolds sono stabilizzate mediante interazioni fisiche e legami idrogeno tra fibrille di collagene ben conservati, simile al collagene nel microambiente ECM nativa.

Le schiume sono una piattaforma altamente flessibile che può essere fabbricato in un'ampia gamma di geometrie seconda stampo specifico selezionato. Per gli studi di coltura cellulare, gli espansi possono essere colate direttamente TCPs piastre a pozzetti, per formare rivestimenti o ponteggi 3D di vario spessore. Per fabbricare schiume 3D con superfici molto uniformi, si raccomanda che uno stampo personalizzato è progettato che può essere sigillato su entrambi i lati con vetrini plastica o vetro. Sia ECM tritati o cryomilled può essere utilizzato per sintetizzarele schiume. In generale, abbiamo trovato che le schiume cryomilled tendono ad essere macroscopicamente più morbida ed avere un ultrastruttura più perturbato a concentrazioni inferiori ^{^31,} ^36. A seconda della fonte di tessuto, le fasi di lavorazione meccaniche aggiuntive possono provocare alterazioni della composizione ECM che potrebbe influenzare la funzione delle cellule. Ad esempio, nel nostro lavoro precedente, laminina è stato rilevato in schiume DLV tritate, ma non cryomilled DLV schiume ^31. Al contrario, collagene I, collagene IV, laminina, fibronectina e sono stati rilevati sia macinate e cryomilled DAT schiume ^36. In aggiunta alle fasi di lavorazione meccanica, la dimensione dei pori e la porosità degli espansi può essere sintonizzata in una certa misura, variando la concentrazione della sospensione ECM e la temperatura di congelamento ^47. In generale, schiume concentrazione inferiori (~ 10 – 15 mg / mL) sono qualitativamente più porosa, ma possono contrarsi rapidamente e hanno scarsastabilità a lungo termine cultura ^{^31,} ^36. Analogamente, un tasso di congelamento lento, tipicamente raggiunti da una temperatura di congelazione superiore, può portare a pori più grandi nelle schiume a causa delle dimensioni dei cristalli di ghiaccio che si formano durante la fabbricazione ^29. Tutti questi parametri possono influenzare le interazioni delle cellule con i materiali, tra cui l'attaccamento, l'infiltrazione, e il rimodellamento. Ad esempio, la crescita cellulare in schiume che sono fabbricati con concentrazioni ECM superiori può essere limitata alle zone superficiali, in particolare con sorgenti ECM macinate e in condizioni di coltura statiche ^36.

Ai microcarriers, i parametri chiave che possono essere regolati sono la concentrazione della sospensione ECM, gauge, e la tensione applicata, con concentrazioni superiori tipicamente cedevole microcarriers che sono più stabili in coltura dinamica a lungo termine. Dopo l'apertura del electrospraying, i suspens ECMgoccioline ioni dovrebbero rientrare rapidamente nel centro del pallone, verso la direzione del collettore foglio di alluminio. Per prevenire l'aggregazione, è importante che le perline contatto con l'azoto liquido prima lamina. La distanza tra l'ago e la superficie del azoto liquido può essere regolata per soddisfare tali requisiti. È importante notare che l'ottimizzazione può essere richiesta a seconda delle caratteristiche delle sorgenti ECM specifico, in particolare nel selezionare un intervallo di concentrazione che genererà bioscaffolds stabili. Un altro fattore chiave è il protocollo decellularization che viene utilizzato per generare i materiali di partenza, come metodi di decellularizzazione che degradano l'ECM o la presenza di reagenti residui (per esempio, tensioattivi) possono avere un impatto negativo sulla stabilità delle schiume risultanti e microcarriers. Se si incontrano problemi con la stabilità bioscaffold, opzioni che possono essere studiati includono l'utilizzo di un processo di reidratazione più graduale, aumentando la sosp ECMconcentrazione ensione, ed esplorare tritata contro ECM cryomilled. Qualora tutte queste opzioni non riescono a risolvere il problema, può essere necessario per esplorare i protocolli di decellularizzazione o fonti alternative ECM.

Per garantire la riproducibilità durante la produzione scaffold, particolare attenzione deve essere presa in determinate fasi del protocollo. Quando cryomilling i tessuti decellularizzati, si raccomanda di fresatura essere effettuata immediatamente dopo liofilizzazione in un ambiente secco per ridurre la probabilità di aggregazione delle particelle dovuta all'assorbimento di umidità dall'ambiente. Durante la fabbricazione microcarrier, si suggerisce che la sospensione è electrosprayed in piccoli lotti, con un volume massimo di 3 mL, per evitare problemi con raffreddamento di esempio che possono provocare l'ostruzione dell'ago. Inoltre, è essenziale che i microcarriers non sono autorizzati a scongelare dopo il processo di electrospraying. Per mantenere la loro geometria sferica e stabilità meccanica, il microcarritori devono essere raccolti e azoto liquido, trasportato in un contenitore di liquido riempito di azoto, e subito liofilizzate. Infine, sia per le schiume e microcarriers, è fondamentale che le fasi di reidratazione vengono eseguiti lentamente in un periodo di diversi giorni. reidratazione rapida può provocare collasso strutturale sulla macro e / o micro-scala. Inoltre, reidratazione deve avvenire lentamente per evitare la formazione di piccole bolle d'aria all'interno del ponteggio, che possono richiedere una notevole quantità di tempo degassare sotto vuoto luce.

In conclusione, i metodi presentati in questo documento possono essere usati per fabbricare una gamma diversificata di schiume tessuto-specifici e microcarriers compresi pura, ECM non chimicamente reticolato. Un vantaggio per i ricercatori biologici è che i bioscaffolds sono facili da maneggiare e possono essere elaborati in modo simile ai tessuti durante l'esecuzione di analisi con tecniche quali saggi istologia, immunoistochimica, o genica e proteica.Inoltre, i ponteggi ECM derivate possono essere enzimaticamente degradata estrarre popolazioni di cellule seminate o possono essere usati direttamente come veicoli di consegna cellule biodegradabili e biocompatibili. Nel complesso, questa tecnologia piattaforma flessibile detiene grande utilità per numerose applicazioni, tra cui per studi su colture cellulari in 3D che indagano la funzione delle cellule, come substrati di espansione delle cellule, e bioscaffolds come pro-rigenerative.

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The Natural Sciences and Engineering Research Council (NSERC) of Canada and the Canadian Institutes of Health Research (CIHR) have provided funding for this work. The authors would like to acknowledge Dr. Amin Rizkalla for the use of his electrospraying system, the Nanofabrication Facility at Western University for use of SEM imaging equipment, the Mount Brydges Abattoir for the provision of porcine tissue samples, and Drs. Aaron Grant, Brian Evans, and Robert Richards for their clinical collaborations in support of this research.

Materials

Acetic acid, glacial	BioShop	ACE222.500
Alligator clip leads	VWR	470149-728
Aluminium foil	Fisher Scientific	01-213-101
a-amylase	Sigma	101074694	from Aspergillus aryzae
Analytical balance	Sartorius	CPA225D
Centrifuge	Thermo Scientific	75004251	With swinging bucket rotor for 15 and 50 mL centrifuge tubes
Centrifuge tubes (15 mL)	Sarstedt	62.554.205
Centrifuge tubes (50 mL)	Sarstedt	62.547.205
Collagen from bovine achilles tendon (insoluble)	Sigma	C9879	Or similar insoluble collagen source; Can be used as an alternative to decellularized tissues to fabricate the foams and microcarriers
Cryomilling system	Retsch	20.745.0001	MM 400
Dessicator	Fisher Scientific	8624426	For lyophilized ECM and bioscaffold storage
DMEM: F12 Hams	Sigma	D6421	Used for proliferation media
Dewar flask	Fisher Scientific	10-196-6	Low form; volume range of 250 – 500 mL
Double distilled water			From Barnstead GenPure xCAD Water Purification System
D-PBS	Wisent	311425125
ECM			Isolated from human adipose tissue, porcine dermis or porcine myocardium, as described in Flynn et al. 2010, Reing et al. 2010, and Wainwright et al. 2010 (ref # 28, 8, 32)
Ethanol	Greenfield Specialty Alcohols Inc.	P016EAAN	Absolute
Fetal bovine serum	Wisent	80150	Used for proliferation media
Forceps	VWR	37-501-32	For transferring the foams
Freezer (-20 °C)	VWR	97043-346
Freezer ( -80 °C)	Thermo Scientific	EXF40086A
Glass vials	Fisher Scientific	03-339-26D	To store lyophilized cryomilled ECM
Hand held homogenizer	Fisher Scientific	14-359-251	Speed: 8000 – 30,000 RPM
Homogenizer accessories: saw tooth bottom generator probes	Fisher Scientific	14-261-17	10 X 95 mm
Liquid nitrogen			For electrospraying
Lyophilizer	Labconco	7750021	FreeZone4.5
Milling chamber	Retsch	02.462.0213	25 mL volume recommended
Milling balls	VWR	16003-606	10 mm diameter, stainless steel recommended
18G needle	VWR	C ABD305185	For dispensing ECM suspension into moulds
Orbital incubator shaker	SciLogex	832010089999	Temperature controlled (37 °C)
Penicillin-streptomycin	Life Technologies	15140-122	Used for proliferation media
Pipet-Aid XP	Mandel Scientific	DRU-4-000-101
Retort stand	VWR	470019-526
Retort stand clamp	VWR	21573-606
Safety-Lok Syringe	BD	309606	3 mL luer lock syringe for microcarrier fabrication and dispensing ECM suspension
Serological pipettes (10 mL )	Sarstedt	86.1254.001
Serological pipettes (25 mL)	Sarstedt	86.1685.001
Sodium chloride	BioShop	7647-14-5
Sodium phosphate monobasic	BioShop	10049-21-5
Scoopula	VWR	89259-968	For collecting microcarriers
Surgical scissors	VWR	82027-590
Syringe pump	VWR	10117-490	Microprocessor controlled
High voltage power supply	Gamma High Voltage Research	ES30P-5W/DDPM	Capable of recommended 15 – 25 kV voltage range
12-well plates	Fisher Scientific	12565321	For use as molds during foam fabrication; Other sizes or user-defined molds can also be selected
Winged infusion set	Terumo	22258092	30 cm tubing length, 25 G 3/4 " recommended; Other needle gauges can be used and may influence microcarrier diameter

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Citer Cet Article

Kornmuller, A., Brown, C. F., Yu, C., Flynn, L. E. Fabrication of Extracellular Matrix-derived Foams and Microcarriers as Tissue-specific Cell Culture and Delivery Platforms. J. Vis. Exp. (122), e55436, doi:10.3791/55436 (2017).