Здесь мы покажем подход ферментативной для выделения первичных гепатоцитов от взрослых мышей, и мы опишем количественную оценку воспалительного ответа с использованием ELISA и ПЦР в реальном времени.
Печень играет решающую роль в регуляции системного воспаления. При хроническом заболевании почек, в частности, печень реагирует в ответ на уремический среды, окислительный стресс, эндотоксемии и уменьшением клиренса циркулирующих провоспалительных цитокинов, производя большое количество острой фазы реагентов. Экспериментальные инструменты для изучения воспаления и основная роль гепатоциты имеют решающее значение для понимания регулирования и вклад печеночных цитокинов в системной ответной реакции острой фазы и пролонгированное провоспалительных сценарий, особенно в сложной обстановке, таких как хроническое заболевание почек. Поскольку исследования сложных механизмов воспаления в естественных условиях остается сложной, ресурсоемкой и обычно требует использования трансгенных животных, первичные изолированные гепатоциты обеспечивают надежный инструмент , чтобы получить механистические идеи в печеночную реакции острой фазы. Так как этот метод в пробирке особенности умеренные затраты, высокая повторнои общие продуктивность технических знаний, первичные изолированных гепатоцитах также могут быть легко использованы в качестве скринингового подхода. Здесь мы опишем метод ферментативного основе для выделения первичных гепатоцитов мышиными, и мы описываем оценку воспалительного ответа в этих клетках с помощью ELISA и количественный ПЦР в реальном времени.
Хроническая болезнь почек (ХБП) может быть определена как состояние острого и хронического воспаления 1. У больных с ХПН, уровни сывороточной phosphaturic фактора роста фибробластов 23 гормона (FGF23) постепенно повышаться с целью поддержания гомеостаза сывороточного фосфата 2. Повышенные уровни сыворотки FGF23 независимо друг от друга связаны с сердечно – сосудистой заболеваемости и смертности среди пациентов , которые начинают лечение гемодиализом 3, 4. Кроме того, некоторые клинические исследования показали сильную корреляцию между повышенными уровнями FGF23 и сывороточные уровни С-реактивного белка (CRP), интерлейкин-6 (IL-6) и фактор некроза опухоли альфа (ФНО) 5, 6. Кроме того, в экспериментальном исследовании, недавно мы показали, что FGF23 может нацелены непосредственно на гепатоциты и вызывают воспалительную реакцию путем увеличения CRP и IL-6 рroduction в печени 7. Следовательно, FGF23 может выступать в качестве циркулирующего фактора, который вносит свой вклад в системное воспаление в CKD.
В начале 70 -х годов, первичные гепатоциты были выделены и изучены впервые 8. С тех пор первичные культивируемые клетки печени широко используются для изучения обмена веществ обработки, гормональной функции, метаболизм лекарств, токсичность, а также иммунитета и воспалительных реакций 9, 10. Предыдущие протоколы основном описывали ферментативную выделение первичных гепатоцитов из ткани печени человека 11, 12. В то время как отличной модели, это оставляет вне возможность изучить, как генетические манипуляции затрагивает сложные механизмы печеночная сигнализации, а также функциональные последствия при различных типах стимулов. Далее мы опишем выделение мышиных первичных гепатоцитов, Следует отметить, что эффект нескольких медиаторов печеночной реакции острой фазы, такие как липополисахарида (LPS), IL-6 и FGF23 могут быть проанализированы в легкой, быстрой и воспроизводимым способом 13.
В данном случае мы приводим протокол для ферментативной изоляции гепатоцитов от взрослых мышей, и показано, что установленные индукторов воспалений, такие как LPS и IL-6, а также к новым медиаторов воспаления, таких как FGF23, может непосредственно стимулировать экспрессию и секрецию воспалительные цитокины, такие как CRP и IL-6 в культуре гепатоцитов.
Разделительный первичных гепатоцитов у мышей является быстрым, недорогим и надежным инструментом для изучения воспалительных реакций бывших естественных условиях. Если выполнены правильно, результаты могут быть легко сгенерирована и воспроизведена в своевременной и экономиче…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана NIH (R01HL128714 к CF) и (F31DK10236101 к КС) и Американской ассоциации сердца (CF и AG).
Consumables | |||
Cell Strainer 70 μm Nylon cell strainer | Falcon | 352350 | |
BD Insyte Autoguard | BD | 381412 | |
50 mL Polypropylene Conical Tube | Falcon | 352098 | |
100 6-inch Cotton Tipped Applicators | Puritan | 806-WC | |
1cc U-100 Insulin Syringe 28 G 1/2 | Becton Dickinson | 329420 | |
Tissue Culture Dish 100 x 20 mm Style | Corning | 353003 | |
6 well Cell Culture Cluster | Costar | 3516 | |
5/0 Black Braided Surgical Silk (100 yards) | LOOK | SP115 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipment | |||
Minipuls 3 Perfusion Pump | Gilson | F155007 | |
Hemacytometer Kits, Propper | VWR | 48300-474 | |
Hemacytometer Cover Glasses, Propper | VWR | 48300-470 | |
Surgical Scissers – Sharp/Blunt | F.S.T. | 14001-12 | |
Iris Scissors-ToughCut Straight | F.S.T. | 14058-11 | |
Dumont SS-45 Forceps | F.S.T. | 11203-25 | |
Student Tissue Forceps | F.S.T. | 991121-12 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reagents | |||
Acetic acid solution, 2.0 N | Sigma | A8976-100ML | |
Isoflurane, USP 250 mL | Piramal Healthcare | 66794-013-25 | |
KetaVed 1000mg/10mL (100mg/mL) | VEDCO | 50989-161-06 | |
Xylazine 100 mg/mL | AnaSed Injection | 139-236 | |
Willams' Medium E (1x) | gibco | 12551-032 | |
Liver Perfusion Medium (1x) | gibco | 17701-038 | |
Liver Digest Medium (1x) | Life Technologies | 17703034 | |
Primary Hepatocyte Thawing and Plating Supplements | Life Technologies | CM3000 | |
Primary Hepatocyte Maintenance Supplements | Life Technologies | CM4000 | |
Phosphate Buffer Saline (PBS) pH 7.4 | ThermoFisher scientific | 10010031 | |
Collagen Type 1 | Corning | 354236 | |
Trypan Blue Solution | VWR | 45000-717 |