A protocol for the synthesis of 1,2-azaborines and the preparation of their protein complexes with T4 lysozyme mutants is presented.
We describe a general synthesis of 1,2-azaborines using standard air-free techniques and protein complex preparation with T4 lysozyme mutants by vapor diffusion. Oxygen- and moisture-sensitive compounds are prepared and isolated under an inert atmosphere (N2) using either a vacuum gas manifold or a glove box. As an example of azaborine synthesis, we demonstrate the synthesis and purification of the volatile N-H-B-ethyl-1,2-azaborine by a five-step sequence involving distillation and column chromatography for the isolation of products. T4 lysozyme mutants L99A and L99A/M102Q are expressed with Escherichia coli RR1 strain. Standard protocols for chemical cell lysis followed by purification using carboxymethyl ion exchange column affords protein of sufficiently high purity for crystallization. Protein crystallization is performed in various concentrations of precipitant at different pH ranges using the hanging drop vapor diffusion method. Complex preparation with the small molecules is carried out by vapor diffusion method under an inert atmosphere. X-ray diffraction analysis of the crystal complex provides unambiguous structural evidence of binding interactions between the protein binding site and 1,2-azaborines.
Бором азотсодержащие гетероциклы (например , 1,2-azaborines) недавно обращено значительное внимание как изостерами аренов. Это isosterism может привести к изменению существующих структурных мотивов для расширения химического пространства 2, 3, 4. Azaborines имеют потенциальную полезность для применения в биомедицинских исследованиях , 5, 6, 7, 8, особенно в области медицинской химии , в которой химики осуществляют синтез библиотек структурно и функционально соответствующих молекул. При этом , однако, в то время как существуют многочисленные хорошо развитые путей синтеза , доступных аренов , содержащих молекулы, только ограниченное количество методов синтеза azaborines было зарегистрировано 9, 10, </sдо> 11, 12, 13. Это происходит главным образом из-за ограниченного числа вариантов источника бора и воздухо- и влаго- чувствительной природы молекулы в ранней стадии последовательности синтеза.
В первой части этой статьи мы опишем несколько грамм масштабный синтез N -TBS- B -Cl-1,2-azaborine (3) с использованием стандартных методов без доступа воздуха с. Это соединение служит универсальным промежуточного продукта, который может быть дополнительно функционализированный структурно более сложных молекул 14, 15. Начиная с 3, синтез и очистка N -H- B – этил-1,2-azaborine (5) для использования в исследованиях связывания белков будут описаны ниже. Из – за волатильности 5, его эффективная изоляция требует точного контроля температуры реакции, времени и дистусловия. вывод
Во второй части, протоколы для экспрессии белка , и выделения Т4 лизоцима мутантов (L99A и L99A / M102Q) 17, 18, 19, 20 будут представлены, с последующей кристаллизации белков и получения белок-лиганд кристаллических комплексов. T4 лизоцима мутанты L99A и L99A / M102Q были выбраны в качестве модельных систем для изучения биологических возможности водородных связей NH , содержащих молекулы azaborine 17. Использование стандартного протокола молекулярной биологии, белок экспрессируется в штамм кишечной палочки RR1 и индуцировали изопропил-β-D-1-тиогалактопиранозида (IPTG). очистки белка проводят с использованием ионообменной хроматографии на колонках. Протеин кристаллизацию проводят с высокой концентрацией очищенного раствора белка (> 95% чистоту с помощью электрофореза в геле) с использованием нависаниюпадение пара методом диффузии. Из-за чувствительности лигандов этого исследования к кислороду, белок-лиганд комплексы получают в Деаэрированная условиях.
В первой части этого протокола, мы описали модифицированный синтез 1,2-azaborines на основе ранее представленных методов 12, 13. Triallylborane 22 был использован в качестве замены для маршрутов с использованием allyltriphenyl олова или калия allyltrifluoroborate подготови…
The authors have nothing to disclose.
This research was supported by the National Institutes of Health NIGMS (R01-GM094541) and Boston College.
Tetrahydrofuran (THF), inhibitor-free, for HPLC, ≥99.9% | Sigma Aldrich | 34865 | |
Diethyl ether (Et2O), for HPLC, ≥99.9%, inhibitor-free | Sigma Aldrich | 309966 | |
Methylene chloride (CH2Cl2), (Stabilized/Certified ACS) | Fisher | D37-20 | |
Toluene | Fisher | T290-4 | |
Pentane, HPLC | Fisher | P399-4 | |
Acetonitrile | Fisher | A21-4 | |
Calcium hydride (CaH2), reagent grade, 95% | Sigma Aldrich | 208027 | Pyrophoric |
Palladium on activated carbon (Pd/C), 10 wt% Pd | Strem | 46-1900 | |
1.0 M Boron trichloride solution in hexane | Sigma Aldrich | 211249 | Highly toxic/ Pyrophoric |
Triethylamine, ≥99.5% | Sigma Aldrich | 471283 | |
Grubbs 1st generation catalyst | materia | C823 | |
Acetamide | Sigma Aldrich | A0500 | |
n-Butanol, anhydrous, 99.8% | Sigma Aldrich | 281549 | |
Ethyllithium solution, 0.5 M in benzene/cyclohexane | Sigma Aldrich | 561452 | Highly toxic/ Pyrophoric |
HCl solution, 2.0 M in Et2O | Sigma Aldrich | 455180 | |
2-Methylbutane, anhydrous, ≥99% | Sigma Aldrich | 277258 | |
Escherichia coli, (Migula) Castellani and Chalmers (ATCC® 31343™) | ATCC | 31343 | |
T4 lysozyme WT* (L99A) | Addgene | 18476 | |
T4 lysozyme mutant (S38D L99A M102Q N144D) | Addgene | 18477 | |
Ampicillin sodium salt | Sigma Aldrich | A0166 | |
isopropyl-β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | Invitrogen | AM9464 | |
Sodium phosphate monobasic anhydrous | Fisher | BP329 | |
Sodium Phosphate dibasic anhydrous | Fisher | BP332 | |
Sodium chloride | Fisher | S642212 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Fisher | BP118 | |
Magnesium chloride | Sigma Aldrich | M4880 | Corrosive |
Thermo scientific pierce DNaseI | Fisher | PI-90083 | |
GE Healthcare Sepharose Fast Flow Cation Exchange Media | Fisher | 45-002-931 | |
Tris-base | Fisher | BP152-500 | |
Sodium azide | TCI | S0489 | Highly toxic |
2-Mercaptoethanol | Fisher | ICN806443 | |
Sartorius Vivaspin 20 Centrifugal Concentrators | Fisher | 14-558-501 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma Aldrich | P5379 | |
2-Hydroxyethyl disulfide | Sigma Aldrich | 380474 | |
N-paratone | Hampton Research | HR2-643 | |
4 RC Dialysis Membrane Tubing 12,000 to 14,000 Dalton MWCO | Fisher | 08-667E | |
CryoLoop | Hampton Research | cryogenic tubing shaped into a loop | |
CryoTong | Thermo Fisher | cryogenic tong | |
Coot | Electron density images are generated from the software |