The therapeutic potential of mesenchymal stem/stromal cells (MSCs) is well-documented, however the best method of preparing the cells for patients remains controversial. Herein, we communicate protocols to efficiently generate and administer therapeutic spherical aggregates or ‘spheroids’ of MSCs primed under xeno-free conditions for experimental and clinical applications.
Mesenquimales del estroma células madre / (MSC) son una gran promesa en la bioingeniería y la medicina regenerativa. MSCs se pueden aislar a partir de múltiples tejidos adultos a través de su fuerte adherencia a plástico de cultivo tisular y luego se expandieron adicionalmente in vitro, más comúnmente usando suero bovino fetal (FBS). Desde FBS puede causar MSCs para ser inmunogénico, su presencia en los cultivos de MSC limita las aplicaciones clínicas y experimentales de las células. (XF) medios libres de xeno Por lo tanto, los estudios que emplean definidos químicamente para cultivos de MSC son extremadamente valiosos. Muchos de los efectos beneficiosos de las MSC se han atribuido a su capacidad para regular la inflamación y la inmunidad, principalmente a través de la secreción de factores inmunomoduladores tales como necrosis tumoral gen del factor estimulada 6 (TSG6) y la prostaglandina E2 (PGE2). Sin embargo, las MSC requieren activación para producir estos factores y dado que el efecto de las MSC es a menudo transitoria, un gran interés ha surgido para descubrir maneras de pre-activación de las células prior a su uso, eliminando así el tiempo de retraso para la activación in vivo. Aquí presentamos los protocolos de activar de manera eficiente o MSC principales en tres dimensiones (3D) de las culturas XF en condiciones definidas químicamente y administrar estos MSC pre-activadas in vivo. Específicamente, primero se describen los métodos para generar MSC esférica micro-tejidos o "esferoides 'en gotas colgantes usando medio XF y demostrar cómo las esferas y el medio acondicionado (CM) se pueden cosechar para diversas aplicaciones. En segundo lugar, describimos pantallas de la expresión génica y en ensayos funcionales in vitro para evaluar rápidamente el nivel de activación MSC en esferoides, haciendo hincapié en el potencial anti-inflamatorio y anti-cáncer de las células. En tercer lugar, se describe un nuevo método para inyectar esferoides MSC intactas en la cavidad peritoneal del ratón para ensayos de eficacia in vivo. En general, los protocolos en este documento superar los principales retos de la obtención de las MSC pre-activadas bajo con XF químicamente definidocondiciones y proporcionan un sistema flexible para administrar esferoides MSC para las terapias.
Mesenquimales madre / células del estroma (MSC) han mostrado un gran potencial para los diversos enfoques de medicina regenerativa. MSCs fueron aislados inicialmente como un componente del estroma de médula ósea, pero desde entonces se han obtenido a partir de numerosos otros tejidos adultos, incluyendo el tejido adiposo 1, 2, 3. Curiosamente, el método de aislamiento principal abarca la notable propiedad de MSCs se adhiera firmemente en plástico de cultivo de tejidos en presencia de suero bovino fetal (FBS). Si bien esta técnica de aislamiento tradicional permite la expansión fácil y rápida de las MSC en dos dimensiones-cultivo (2D), que también es muy artificial y no tiene en cuenta importancia del medio ambiente nativo en tres dimensiones (3D) que conduce a la pérdida potencial de importante características celular 4, 5 , 6. Por lo tanto, el estudio de las MSC en cultivos 3D, queson más fisiológica que los cultivos tradicionales en 2D, ha surgido en búsqueda de características MSC "perdidos / parcial". Por otra parte, un gran interés ha aumentado para identificar condiciones (XF) libre de xeno químicamente definido para el cultivo de MSC y activación, y de este modo hacer que las células sean más susceptibles para aplicaciones clínicas.
Muchos estudios se han publicados que demuestran la cultura 3D de MSCs tanto en biomateriales y como agregados esféricos o esferoides. MSC en biomateriales fueron diseñados inicialmente para los enfoques de ingeniería de tejidos para reemplazar tejidos dañados con andamios sembrado de células, mientras que no se observaron cultivos de esferoides de MSC como una manera de entender el comportamiento de MSC in vivo después de la administración de las células para terapias en ensayos preclínicos o clínicos 4, 5, 7. Curiosamente, MSC formar esferoides espontáneamente cuando no está permitido adherencia al plástico de cultivo de tejidos8, 9, 10. Tradicionalmente, la agregación de células fue facilitado por métodos matraz de agitación o técnicas de superposición líquidos, métodos utilizados inicialmente en la biología del cáncer en los esfuerzos para tratar de imitar el microambiente tumoral. Más recientemente, métodos adicionales han surgido que demuestran la agregación de células en placas de cultivo pre-recubierto con productos químicos específicos para evitar que la célula-a-plástico de adhesión 4, 5, 6. Uno de los métodos más simples y más económicos para generar esferoides MSC es a la cultura en gotas colgantes, una técnica que a menudo se utiliza para producir cuerpos embrioides a partir de células madre embrionarias. Con colgando técnica de cultivo gota, adherencia de las células al plástico de cultivo de tejidos se evita mediante la suspensión de las células en una gota de medio en la parte inferior de una tapa de placa de cultivo de tejido y permitiendo que la gravedad para facilitar AGGREG célulaación en el ápice de la gota. El tamaño esferoide puede ser manipulado fácilmente por el cambio de la concentración de células o el volumen de la gota, haciendo culturas gota colgante especialmente fácil de controlar.
Los primeros estudios sobre la cultura 3D de MSCs demostraron diferencias radicales en las características de las células en 3D en comparación con sus contrapartes 2D 6, 8, 9. Al mismo tiempo, los informes demostraron que los efectos beneficiosos de las MSC in vivo se basó en su capacidad de activarse por señales micro-ambientales y, en respuesta, para producir anti-inflamatorio e inmunomodulador factores de 11. Curiosamente, muchos de estos factores, tales como la prostaglandina E2 (PGE2), tumor necrosis gen del factor estimulada 6 (TSG6), y factor de crecimiento de hepatocitos (HGF) se produjeron en cantidades mucho mayores por esferoides MSC que MSCs 2D tradicionales allanando el camino para el idea deutilizando cultivos 3D para activar las células 8, 12, 13. Por otra parte, la activación de genes en cultivos 3D apareció recapitular mecanismos, al menos en parte, de la activación de células después de la inyección en ratones 12. Mediante la activación de las MSC antes de su uso en los experimentos, los efectos de las células podrían ser prolongados y más prominente como el efecto MSC tradicional in vivo a menudo se retrasa y transitorios, y puede ser descrito como "golpear y correr". Durante los últimos años, los estudios funcionales importantes utilizando esferoides MSC han demostrado que pueden suprimir las respuestas inflamatorias y modular la inmunidad in vivo al influir en las células efectoras, tales como macrófagos, células dendríticas, neutrófilos, y células T que hacen esferoides una forma atractiva de MSCs imprimados 2 , 3. Además, la producción de moléculas anti-cáncer, tales como interleukin-24 (IL-24) y la necrosis tumoral relacionado con el factor inductor de apoptosis ligando (TRAIL), se incrementan en cultivos 3D de las MSC en relación con monocapa MSCs, un fenómeno que podría ser explotado para terapias contra el cáncer dirigidas 8, 10, 14.
A medida que la cultura tradicional de MSC requiere no sólo el uso de plástico de cultivo de tejidos, sino también de FBS, otro obstáculo para hacer esferoides MSC más favorable para el uso clínico se tuvieron que superar. Para hacer frente a este obstáculo, que recientemente mostró la formación de esferoides de MSC en condiciones específicas XF definidos químicamente y estableció que los esferoides MSC resultantes se activan para producir las mismas moléculas contra el cáncer anti-inflamatorio y como los esferoides generados en condiciones con FBS al 14. En este caso, estos resultados se presentan en varios protocolos detallados que demuestran la generación de MSC pre-activadas en cultivos 3D usando XFmedios de comunicación. Además, los protocolos se presentan que describen formas eficaces para evaluar los niveles de activación de las MSCs en cuanto a sus efectos antiinflamatorios, inmunomoduladores y anti-cáncer de efectos, junto con un método práctico para entregar los esferoides intactas en ratones.
El MSC óptima para su uso en algunas aplicaciones de investigación y clínicos debe ser altamente activa para maximizar su beneficio, y preferentemente prepara en condiciones XF definidos químicamente para reducir al mínimo la entrega de antígenos potenciales a partir de los componentes del medio xenogénicos tales como FBS. En los protocolos descritos aquí, hemos demostrado a los métodos 1) activar las MSC en cultivo 3D mediante la formación de esferoides, 2) lograr la activación 3D de las MSC en condiciones X…
The authors have nothing to disclose.
This work was funded in part by grant P40RR17447 from the National Institute of Health and award RP150637 from the Cancer Prevention and Research Institute of Texas. We would like to thank Dr. Darwin J. Prockop for his support on the project.
MEM-α (minimal essential medium alpha) | ThermoFisher/Gibco | 12561049; 12561056; 12561072 | minimal essential medium for preparation of MSC growth medium (CCM) |
FBS (fetal bovine serum), premium select | Atlanta Biologicals | S11595; S11510; S11550; S11595-24 | component of complete culture media for all types of cells |
L-glutamine | ThermoFisher/Gibco | 25030081; 25030149; 25030164 | component of complete culture media for all types of cells |
Penicillin/Streptomycin | ThermoFisher/Gibco | 15070063 | component of complete culture media for all types of cells |
Sterilization Filter Units, 0.22 µm PES membrane | MilliporeSigma | SCGPU01RE; SCGPU02RE; SCGPU05RE; SCGPU10RE; SCGPU11RE | media sterilization |
150 mm cell culture dish | Nunc | D8554 SIGMA | cell culture |
Thermo Forma water-jacketed CO2 humidified incubator | Thermo Fisher | Model 3110 | incubation of cultured cells |
Early passage MCSs | Center for the preparation and Distribution of Adult Stem Cells at The Texas A&M Health Science Center College of Medicine Institute for Regenerative Medicine at Scott & White | NA | preparation of 2D and 3D cultures of MSCs |
water bath | VWR | 89501-468 | warming media to 37 °C |
Pipettes | Eppendorf | 492000904 | manual liquid handling |
Pipete-Aid | Drummond Scientific Company | 4-000-300 | handling sereological pipetes |
Costar sterile serological pipet (5, 10, 25 and 50 ml) | Corning | 4487; 4101; 4251; 4490 | liquid handling |
PBS (phosphate buffered saline), pH 7.4 | ThermoFisher/Gibco | 10010023; 10010072; 10010031; 10010049 | cell culture processing |
0.25% trypsin/EDTA solution | ThermoFisher/Gibco | 25200056; 25200072; 25200114 | lifting adherent cells and dispersing cell aggregates |
15 ml conical tube | Corning/BD Falcon | 352097 | cell centrifugation |
50 ml conical tube | Corning/BD Falcon | 352098 | cell centrifugation |
Eppendor refrigerated centrifuge | Eppendorf/Fisher Scientific | Model 5810R | cell centrifugation |
hemocytometer | Fisher Scientific | 26716 | cell counting |
trypan blue | Sigma-Aldrich | T8154 SIGMA | dead cell exclusion during cell counting in hemacytometer |
Defined xenofree MSC medium-1 (XFM-1) | ThermoFisher/Gibco | A1067501 | Xeno-free media specifically formulated for the growth and expansion of human mesenchymal stem cells |
Defined xenofree MSC medium-2 (XFM-2) | Stem Cell Technologies | 5420 | Defined, xeno-free medium for human mesenchymal stem cells |
HSA (Human serum albumin) | Gemini | 800-120 | Component of xeno-free MSC media |
rHSA (recombinant Human serum albumin) | Sigma-Aldrich | A9731 SIGMA | Component of xeno-free MSC media |
8-channel pipette, 10 – 100 µL | Eppendorf | 022453904 | preparation of hanging drops |
Total RNA isolation Mini Kit | Qiagen | 74104 | Total RNA extraction |
Qiashredder | Qiagen | 79654 | Sample homogenization prior to total RNA extraction |
RNAse-free DNase Set | Qiagen | 79254 | On-column DNA elimination during total RNA extraction |
β-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M6250 ALDRICH | inhibition of RNAses in RLT buffer |
Vortex | VWR | 97043-562 | mixing sample |
Spectrophotometer | Biorad | NA | RNA concentration and quality |
High capacity cDNA Reverse Transcription Kit | ThermoFisher/Applied Biosystems | 4368814 | transcription of total RNA into cDNA |
Gene Expression Assays | ThermoFisher/Applied Biosystems | varies | primer/probe combination for real-time PCR |
Fast Universal PCR Master Mix | ThermoFisher/Applied Biosystems | 4352042; 4364103; 4366073; 4367846 | master mix for real-time PCR reaction |
Real-time PCR system (ABI Prism 7900 HT Sequence Detection System) | ABI Prizm | NA | real-time PCR |
1.5 ml centrifuge tube | Eppendorf | 22364111 | cell centrifugation, sample collection and storage |
(-80°C) freezer | Thermo Fisher | Model Thermo Forma 8695 | sample storage |
PGE2 (Prostaglandin E2) ELISA Kit | R&D Systems | KGE004B | estimation of cytokine concentration in the sample |
DMEM (Dulbecco’s modified Eagle medium) | ThermoFisher/Gibco | 10566-016; 10566-024;10566-032 | macrophage culture media |
J774 mouse macrophages | ATCC | TIB-67 | mouse macrophage cell line |
12-well plate | Corning | 3513 | in-vitro macrophage stimulation |
LPS (lipopolysaccharide) | Sigma-aldrich | L4130 | in vitro macrophage stimulation |
Mouse TNF-a ELISA kit | R&D Systems | MTA00B | estimation of cytokine concentration in the sample |
Mouse IL-10 (interleukin 10) ELISA kit | R&D Systems | M1000B | estimation of cytokine concentration in the sample |
RPMI-1640 medium | ThermoFisher/Gibco | 11875-085 | splenocyte culture media |
BALB/c mice | The Jackson Laboratory | 651 | in vivo spheroid delivery; splenocyte preparation |
Anti-Mouse CD3e Functional Grade Purified | eBioscience | 145-2C11 | In vitro splenocyte stimulation |
70 μm strainer | Corning | 352350 | Splenocyte preparation |
Red blood cell lysis solution (1x) | Affymetrix eBioscience | 00-4333 | removal of red blood cells during splenocyte isolation |
Mouse IFN-y (interferon gamma) ELISA kit | R&D Systems | MIF 00 | estimation of cytokine concentration in the sample |
LNCaP prostate cancer cells | ATCC | CRL-1740 | study the effect of 3D MSCs on cancer cell lines in vitro |
DNA-based cell proliferation assay kit | ThermoFisher | C7026 | cell number measurement based on DNA content |
NaCl | Sigma-Aldrich | S5150 | component of lysis reagent |
EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) | ThermoFisher | FERR1021 | calcium chelator, component of lysis reagent |
Rnase A | Qiagen | 19101 | RNA degradation for measurement of DNA |
Filter-based multi-mode microplate reader | BMG Technology | NA | Microplate assays (ELISA, cell quantification, e.t.c.) |
HBSS (Hanks balanced salt solution), no calcium, no magnesium, no phenol red | ThermoFisher/Gibco | 14175079 | resupsension of MSC spheroids prior to in vivo injections |
Isoflurane | MWI Vet Supply | 502017 | Anesthesia for in vivo injections |
Oxygen, compressed gas | Praxair | NA | For use with isoflurane |
Thermo Forma BSL-2 cabinet | Thermo Fisher | Model 1385 | Sterile cell culture |
Safety I.V. catheter/needle stiletto, 20G, 1 inch | Terumo | SR*FNP2025 | Delivery of shperoids into peritoneal cavity |
Sterile micropipette tips | Eppendorf | varies | liquid/cells handling |