Fosfolipid yağ asitleri toprak mikrobiyal toplulukların yapısı hakkında bilgi vermek. Bu tek fazlı kloroform karışımı, bir katı faz ekstraksiyon kolonları kullanılarak ekstre lipidlerin fraksiyonasyonu ve kılcal gaz kromatografisi ile analiz edilir yağlı asit metil esterlerinin üretilmesi için metanoliz toprak örneklerinden çıkarılması için yöntemler sunmak.
Fosfolipid yağ asitleri (PLFAs) mikrobiyal hücre zarlarının önemli bileşenleridir. topraktan çıkarılır PLFAs analizi karasal mikrobiyal toplulukların genel yapısı hakkında bilgi verebilir. PLFA profil yoğun genel toprak kalitesi, bir biyolojik endeksi olarak ekosistemlerin aralığında kullanılmaktadır ve toprak tepki kantitatif göstergesi olarak yönetim ve diğer çevresel stres toprak.
Tek fazlı bir kloroform karışımı ile toprak örneklerinden 1. lipid ekstraksiyonu, 2. fraksiyonasyon çıkarılan diğer lipidler fosfolipidleri izole etmek için bir katı faz ekstraksiyon kolonları kullanılarak, yağ asidi üretmek üzere fosfolipitlerin 3. metanolizi: Burada sunulan bir standart yöntem, dört adım sıralanmış metil esterleri (FAME), ve bir alev iyonizasyon detektörü (GC-FID) kullanılarak kılcal gaz kromatografisi ile 4. FAME analizi. 1,2-dinonadecanoyl- sn -glisero-3-fosfokolin (PC (19 dahil kullanılan iki standartları:0/19: 0)) çıkarma yönteminin genel kurtarma değerlendirmek ve metil dekanoat (MeC10: 0) GC analizi için dahili bir standart (ISTD) elde edilir.
Fosfolipid yağ asitleri (PLFAs) etki Bakteri ve ökaryotlarının mikrobiyal hücre membranlarının bir parçasıdır. Mikroorganizmalar acil çevre koşullarına karşılık olarak hücre zarı bütünlüğünün ve hücresel fonksiyon için bir araç olarak farklı zincir uzunlukları ve bileşimin PLFAs üretir; dolayısıyla benzer toprak şartlarına coğrafi olarak ayrılmış ancak tabi mikrobiyal topluluklar benzer PLFAs ifade edeceği söylenebilir. 14 ve 20 ° C atomları arasında bir zincir uzunluğuna sahip toprak PLFAs tipik haliyle esas olarak bakteri ve mantar kaynaklı 1 olduğu kabul edilmektedir. Karışık kültürler olarak, PLFA, analiz tek tek mikrop türleri tanımlamak için kullanılabilir, ancak bu toprakta bulunan mikrobik topluluk genel parmak izi sağlayabilir. PLFAs hızlı hücre ölümü üzerinde parçalanırlar İlave olarak, bu canlı toprağın mikrobiyal eden 2 temsilcisi olarak düşünülebilir. bu technique yoğun 5-6 bozkırlarında Ormanların 3-4 arasında değişen ortamlarda geniş bir yelpazede bulunan mikrobiyal topluluklar ve tarım alanlarının 7 yapısal bileşimi karakterize etmek için kullanılır olmuştur. Bu başarıyla orman gibi metaller 14 ve hidrokarbonlar 15 yangına 13, kirlenme gibi bozukluklar yanı sıra, ıslah 10-12, 8 açık kesme 9 kireçleme de dahil olmak üzere, yönetim değişiklikleri arazi toprak yanıtı karakterize uygulanan ve böcek salgını 16 olmuştur .
Çağdaş PLFA analitik yöntem araştırma grupları bir takım tarafından birkaç anahtar gelişmeler sayesinde son altı yılda gelişti. Bir diphasic sisteme 17 bir monofazik karışımın kaydırmaya ekstraksiyon çözeltisi içinde su oranı: metanol: 1958 yılında, belirgin bir iyileşme kloroform ayarlama ortaya çıktı. Bu optimize edilmiş lipit çıkarma ve revize izolasyon yanlısıtokol Bligh ve Dyer yöntemi olarak tanındı. protokol bu süre zarfında, Beyaz ve arkadaşları yöntemi önemli gelişmeler katkıda önümüzdeki birkaç on yıl içinde birçok laboratuarları tarafından kabul edildi ve; Örneğin, bunlar su, bir fosfat tampon alışverişi ekstraksiyon aşamasını geliştirilmiş ve gelişmiş yoğun tespit edilmek ve nicelendirilmek ile gaz kromatografisi (GC) ile analiz optimize edilmiştir. Belki toprak bilimi daha alaka, onlar deniz çökellerinin 18 mikrobiyal biyokütle incelendiğinde çıkarılan lipidler mikrobiyal yapısı bir göstergesi olarak kullanılabileceğine dair 1979 yılında belirledi.
Yöntem daha yaygın, özellikle rizosfer 19 ile ilgili olarak, toprak biliminde kullanılan oldu gibi diğer gelişmeler 1980'lerde meydana geldi. O zaman, bu yöntem metil nonadecanoate dahildir (MeC19: 0), bir iç standart 19 ve lipid fraksiyonasyon 21 <bir silisik asit sütunun kullanımı/ Sup>. Beyaz 19,21 ile yaptığı çalışmaların ardından, Tunlid İsveç'e döndü ve Baas ve Frostegård ile ortak araştırma başladı. Organik madde içeriği değişen toprakların bir paketi için farklı ekstraksiyon tampon verimliliğini inceleyerek, grup sitrat tampon fosfat tamponu 22 ile karşılaştırıldığında çıkarılan lipit fosfat miktarını arttığını göstermiştir. Ayrıca, toprak mikrobiyal topluluklar üzerinde kireçleme etkisi üzerine 1993 yayın 23 Toprak Biyoloji ve Biyokimya 24 atıf klasik haline geldi. Araştırmacılar kendi veri işleme temel bileşen analizi kullanılmıştır. PLFA analizi, yöntem yeni adıyla, büyük veri kümeleri oluşturur ve bu verileri işlemek için çok değişkenli istatistiksel prosedürlerin kullanımı birçok son derece zaman yenilikçi ve ilham verici oldu. işe Eşzamanlı İsveç'te yapılan, PLFA prosedüre değişiklikler araştırılmıştır ediliyorduAlmanya tarafından Zelles ve arkadaşları 25-26. usul Bunların versiyonu genel olarak, daha çok laboratuvar yoğun olduğu, katı faz ekstraksiyonu (SPE) sütunu yerine silisik asit sütunun kullanımı için önemli ancak.
White & Ringelberg 27 tarafından detaylı metodoloji ile birlikte Frostegård kağıt 23, toprak biliminde temel soruları araştırmak için PLFA tekniğinin kullanılmasıyla bir patlama için temel sağladı. Ve C19: O zamandan beri, Firestone ve meslektaşları tarafından yöntemin daha iyileştirmeler bir iç GC standardı (0 C10): ekleme dahil ettik miktarının 28 artırmak için bir vekil standart olarak 0 ve ayırma kullanımını yerine kolaylaştırmak için yuvarlak dipli şişeleri için hunileri ekstraksiyon 29. Daha yakın zamanlarda, Chowdhury ve Dick 30 metilasyon adım araştırdık ve toprak bilimi literatüründe KOH / MeOH yöntemi ident kullanılan iki metilasyon prosedürlerinin bildirdiyağlı asitlerin daha büyük bir aralığına ified.
Bu çözümler, büyük ölçüde Bligh ve Dyer tarafından geliştirilen bir yöntemine göre, ve metilasyon aşaması için metanolik KOH kullanımı gibi, yukarıda belirtilen modifikasyonları kullanılarak üretilmektedir. Iki standart, her numune için kullanılır: ilk ekstre önce toprak örneği eklenir 1,2-dinonadecanoyl- sn -glisero-3-fosfokolin (: 0/19 0) 19 PC () 'in bir taşıyıcı, standart verim ve tüm protokol kurtarma ve metil dekanoat bir aracı standart değerlendirmek için (MeC10: 0), GC ile tespit edilmek ve nicelendirilmek önce eklendiği.
Biz PLFA yöntemi yaygın olarak dünya çapında pek çok mikrobiyal ekoloji laboratuvarlar tarafından kullanılır ve Standardizasyon 2 International Organization for dahil olmak üzere, birçok kez belgelenmiş olduğunu kabul ediyorsunuz. Bu makalenin amacı toprağa yararlı olabilir protokolü bir takip edilmesi kolay ve sağlam sunmaktırPLFA tekniğini öğrenmeye çalışıyoruz bilim adamları.
toprağın mikrobiyal eden bulunan bazı PLFAs ayrıca bitki köklerine, yosun, ve toprak hayvanları olarak, tek ve çok hücreli ökaryotik organizmalara içinde mevcut olduğu için en aza indirmek ve PLFA verilerin yanlış yorumlanmasından sakınmak için dikkatli veri görüntüleme yapılmalıdır. Buna ek olarak, Archaea PLFAs içermez; Bunun yerine, arke membranlar fosfolipid eter lipidleri (PLELs) oluşur. Sonuç olarak, PLFA protokolü toprakta arkeal toplulukları karakterize etmek için kullanılamaz.
Spesifik mikrobiyal gruplara bireysel PLFAs ilişkilendirme dikkatli olunmalıdır (PLFA yönteminin bazı sınırlamaları mükemmel bir tartışma için Frostegård ve arkadaşları 34 tarafından 2011 yayın bakınız). Orta chai ile kimyasal yapılarına göre grubu PLFAs için, Şekil 2'de, örneğin, i) düz zincirli, doymuş PLFAs ii) doymuş PLFAs yapıldı Bunun yerine, bu, daha uygun olabilirN- (10-metil) dallanma iii) terminal dallı, doymuş yağ asitleri, iv) tekli doymamış PLFAs, h) polidoymamış PLFAs ve vi) hidroksi yağ asitleri.
Örnek ağırlığı Belirli bir toprak numunesi içinde ihtiva edilen ekstre PLFAs miktarına göre ayarlanması gerekir. daha az mikrobik aktif topraklarda çıkarılan toprağın miktarını ayarlayarak değil, kullanıcıların doğru genel mikrobiyal toplumu temsil PLFA yanıtları (pik) yeterli sayıda elde değil riski vardır. PLFAs yüksek konsantrasyonlarda son derece mikrobik etkin topraklarda, kullanıcı bu şekilde PLFAs de doğru olarak önlenmesi, GC sütunu yüklenme risk altındadır. Her iki durumda da, toprak numuneleri PLFAs yeniden analiz edilmelidir. İyi bir başlangıç noktası (örneğin orman zeminler gibi) organik toprak örnekleri için 0.5 g ve mineral toprak örnekleri için yaklaşık 3 gr eklemektir. ekstrakte PLFAs miktarı, tipik olarak, bir toprak örneği de içerdiği organik karbon miktarı ile bağlantılı olduğu içinight toprak karbon içeriğine göre ayarlanabilir; C-içeriği 0,5 ≤ ise> 5 g gerekebilir ise, örneğin, mineral toprak örnek 1 g, karbon içeriğinin% 10-15 olduğunda iyi PLFA miktarının elde edilmesi için yeterli olabilir, %. Her zaman tüm set çalıştırılmadan önce numune ağırlığı optimize etmek için birkaç örnekleri ile bir deneme yapmak için iyi bir fikirdir.
aşağıdaki gibi PLFA protokolü ve GC analizi için ortak sorun giderme stratejileri vardır. GC kromatogramı taban çok yüksekse, H2 gaz silindiri değiştirilmelidir. Solvent veya ISTD zirveleri kromatogramdan eksikse, numune enjeksiyonu ile ilgili bir sorun olabilir (örneğin, şırınga, otomatik örnekleyici ile sorun, boş veya eksik flakon, flakon konumlandırma ile hata takılı). Üçten fazla zirveleri yöntemi / numune boş olduğu tespit edilirse, boş kirlenmesi var ve aynı kirletici (ler) numune GC c mevcut olacağı yüksek bir olasılık varhromatograms. kontaminasyon kaynağını (genellikle sulu ortam) bulmak, ya da en azından, kirletici karşılık gelen tepe noktaları örnek kromatogramları gelen ve bu zirveleri PLFA verilerin herhangi bir istatistiksel analize dahil olmadığını kaldırılır emin olun. Ayrıca, carry-over şüphesi olduğunda hekzan numuneler arasında rinses çalıştırmak için iyi bir fikirdir. Heksan durulamada ilave tepe taşıma-over (önceki aşamaya elüsyon, yani ağır bileşenler) gösterecektir.
Lipidler oksidasyona karşı özellikle hassastır ve özellikle bakım gibi karanlık saklayarak ve azot altında tutarak hava ve ışığa maruz örnekler korumak için protokol boyunca icra edilmesi gerekmektedir. 0 vekil standart: Tüm örnekler ve boşluklar yeterli C19 olması gerekir. Eksik C19: 0 tepe ya örnekler veya boşlukları, kötü iyileşme ya da analit tam bir kaybı gösterir. m oldukça altındadır numunelerde 0: C19 A tepkibu yöntemde / numune boşlukları PLFA metodoloji bir noktada bir analitler kaybı olduğunu gösterir. kötü C19 ile karşı karşıya: 0 kurtarma, prosedürün tüm yönleriyle izole etmek için ilk çıkarma, örnek transferi tüm aşamalarında, SPE çıkarma, yağ asidi metilasyon, kurutma, depolama ve örnek manipülasyon içeren dikkatli bir şekilde dikkate alınması gerekir ve muayene evre veya analitler kaybolur aşamaları. vekil standardın durum kurtarma abartmış olabilir ki 0: Öte yandan, bazı toprak örneklerinin çıkarma C19 verebilir olabilir. 0/19: ((PC (19 iki standartlarını kullanırken 0) ve MeC10: 0) mutlak bir gereklilik, biz gidermek için gerek zaman çok yararlı olmak için bu bulduk değil sürece MeC10 olarak:. 0 yanıt yeterli , sorun giderme GC analizden önce adımlar odaklanabilirsiniz.
Daha önce belirtildiği gibi, dikkatli yalnızca biyolojik belirteçler elde dayalı ekolojik önemi ve ekosistem ilişkilerini yorumlanırken kullanılması gerekirPLFA verilerinden d saf kültür çalışmaları izole bakteri suşları PLFAs farklı kategoride içerecek ortaya koyuyor çünkü. geniş ekolojik çıkarım yaparken Bunun yerine, biyomarkır PLFAs delil paketi yararlı bir ek olarak görülmelidir. Literatürde, tek tek PLFAs önerilmiştir ve farklı mikrobiyal gruplar için biyolojik olarak kullanılabilir. Doymuş PLFAs tipik olarak gram-pozitif bakteri temsil etmek için kullanılan ve gram-negatif bakteriler için kullanılan PLFA tekli doymamış edilir. 1ω7, C18: 1ω7 ve C18: Gram-negatif bakteriler için tanınan biyolojik C16 olarak ω5 ya ω7 pozisyonda doymamışlığın olan tekli doymamış yağ asitleri dahil 1ω5. Buna ek olarak, siklopropil yağ asitleri de Gram-negatif bakteriler 35 için temsili olabilir. 1ω5 + A: 1ω7 + A: 0cyclo Dolayısıyla gram-negatif bakterilere karşı PLFAs bir eşittir gibi hesaplanabilir. Gram-pozitif bakteriler için tanınan biyolojik terminal SA dallanmışturated yağlı asitler, izo-çatallı C15 gibi: 0i, C16: 0i, C17: 0i; 0A ve C17: 0A veya C15 gibi anteiso- kollara ayrılmış. Doymuş orta zincir (10-metil) dal PLFAs gibi 10Me16: 0 ve 10Me18 0 aktinomiset 36 karakteristik mevcuttur. Bu nedenle, Gram-pozitif bakteriler ile ilgili PLFAs bir toplamına eşit hesaplanabilir: 0 (ISO anteiso-, 10-metil).
mantar PLFA ile ilgili birçok biyomarkerlar genellikle çoklu doymamış, ancak bazı mantar biyomarkırlar tekli doymamış edilir. Örneğin, fungal tekli doymamış biyobelirteç açısından, C16: 1ω5 Arbusküler mikoriza mantar göstergesi (AMF) 37, C18 olarak tanımlanmıştır: 1ω9 saprofitik mantarlarda yaygındır ve ektomikoriza tipik haliyle C16 içerir: 1ω9. di-doymamış C18 varlığı: ectomycorr 2ω6,9 yeterli temsil edebilir: 2ω6,9 genellikle C18 ile birlikte oluşur: 1ω9 ve ayrıca C18 belirtir mantar sterol ergosterol ile iyi korelasyonhizae ve saprofit mantarlar 38. Tri-doymamış C18: 3ω 6,9,12 da mantar 10 için bir biyomarker olarak kullanılır olmuştur; Bununla birlikte, C18: tipik olarak bakterilerde bulunmazsa, ancak 3ω6c, bitki ve yosun gibi diğer ökaryotik organizmaların bulunabilir. Toprak protistlerin vadede, C20: Diğer iş C20 saptayamamıştı rağmen 4ω6c, bir protist belirteç 39 olarak kabul edilmiştir: canlı protist popülasyonları ışık mikroskopisi 40 kullanılarak görsel olarak teyit edildi bile 4ω6c.
Birçok çalışma, bir PLFA veri analizi aracı olarak çok değişkenli koordinasyon tekniklerini kullanarak genel toprak mikrobiyal topluluğun ilişkin ekolojik sorulara yanıt. Bu yaklaşım kullanırken, bazı yazarlar örneklerinin 4% 5'inden az mevcut olan PLFAs kaldırarak veri kümesi nadir PLFAs hariç seçtiniz. Normal doymuş C16: 0 ve C18: 0 Prokaryot ve EUK dahil olmak üzere tüm toprak mikroorganizmalar bol miktarda bulunmaktadıraryotes. Bu nedenle, bazı araştırmacılar önce onlar toprak mikrobiyal topluluğun kompozisyon duyarlı göstergeler olmayabilir bazında istatistiksel analize bu PLFAs kaldırmak tercih – her ne kadar C16: 0 ve C18: 0 Tüm PLFAs toplanmasıyla dahil edilecektir hala mikrobiyal biyokütle bir dizin. Bu teknik normalde 33 dağıtılamaz veri için uygundur gibi istatistiksel analizler vadede, birçok araştırmacı bir metrik olmayan çok boyutlu ölçekleme (Nöromusküler) koordinasyonu yapmak için seçin. kategorik değişkenler ile ilgili ek analizler kategorik gruplara atanan mikrobiyal topluluklar arasında benzerlik ya da farklılıkları belirlemeye yardımcı olabilir kategorik gruplaşmalar ve çoklu yanıt permütasyon prosedürleri (MRPP) özel PLFAs, oluşumunu ilgili olabilir gösterge türler analizi içerebilir. Ayrıca, çok değişkenli regresyon ağaçları (MRT) özellikle yararlı olabilir birden çok deneysel değişkenlerin etkisi veyatedaviler potansiyel açıklayıcı değişkenler 5 olarak değerlendirilmesi gerekir (örneğin, toprak yapısı, nem, reklamasyon yaş).
Kurulan sonra, PLFA protokol çevresel değişimlere ve antropojenik bozulma toprak mikrobiyal yanıtını miktarının zaman çok yararlı olabilir nispeten basit bir analitik yöntemdir. Böyle genetik parmak izi gibi moleküler teknikler mikrobiyal toplulukların detaylı karakterizasyonu için daha uygundur iken, PLFA yöntemi toplam mikrobiyal biyokütle 34 sayısal bilgiler sağlama avantajı sunuyor. Bizim araştırma laboratuarında, bir kişi rahatça 4 gün boyunca 20 örnek bir dizi işleyebilir, ve biz toprak biyolojik kalitesini değerlendirmek için sağlam ve tekrarlanabilir bir teknik olduğu Burada sunulan protokol bulduk.
PLFA yöntemi gücü büyük ölçüde sabit bir izotop analizi 41, 42 ile eşleştirilerek uzatılabilir. Spesifik olarak, bir ek of topraklara 13C-etiketli substratlar toprak mikroorganizmaları halinde alt-tabaka esas miktarının sağlar bireysel PLFAs 41 izotopik analiz bile. Buna ek olarak, bu yöntem, toprak gıda ağları 42 trofik bağlantıları aydınlatmak için çok umut verici bir araç gibi görünmektedir.
The authors have nothing to disclose.
This work was financed in part by the Natural Sciences and Engineering Council of Canada. The authors acknowledge Jela Burkus, Donna Macey, and Jennifer Lloyd for their technical expertise and their contribution to the optimization of this method.
Pierce Reacti-Vap III-evaporator gassing manifold with 27 ports | Used in Steps 1-3 | ||
Compressed Nitrogen | Praxair | Ni-T | Dangerous: Use only after training and minimize contact and use; Used in Steps 1-3 |
Disposable centrifuge tube and Teflon-lined cap | Fisher Scientific | 05-569-3 | Used for Step 1 (1 per sample) and Step 2 (1 per sample) |
Disposable glass long-necked Pasteur pipettes | Fisher Scientific | 13-678-20D | Used for Step 1 (2 per sample) |
Disposable glass short-necked Pasteur pipettes | Fisher Scientific | 13-678-4 | Used for Step 2 (1 per sample), Step 3 (1 per sample), GC analysis (1 per sample),, and one for each type of solution dispensed during PLFA methods (~10 per batch of samples) |
Elastic band | Grand & Toy | 42199 | 1 per sample for freeze drying |
Freeze Dryer-Labconco 7806002 and 7753000 | Used for preparing samples for PLFA analysis – use whatever model your lab has | ||
Freezer (-20 °C, -80 °C) | Revco | ULT2586-5-A36 | Minus 80 °C is used for freezing freshly collected soil samples, -20 °C is used for storing samples at end of each of 3 steps of PLFA analysis |
Gas chromatograph – Agilent 6890 Series capillary gas chromatograph (GC;, Wilmington, DE) equipped with a 50 m Ultra 2 (5%-phenyl)-methylpolysiloxane column | Agilent Technologies | Used for GC analysis, other models of GC could also be used (1 needed) | |
Analytical column | Agilent Technologies | 19091B-105 | |
Gas chromatograph insert | Agilent Technologies | 5183-4692 | Used for GC analysis (1 per sample) |
Gas chromatograph vial and lid | Agilent Technologies | 5188-6592 | Used for GC analysis (1 per sample) |
Hexanes | Fisher Scientific | H292-4 | Hazardous: use only in fume hood, Read MSDS, minimize use and wear appropriate PPE; Total volume per sample = 4 ml (2.0 ml + 2.0 ml (step 3) |
Hot water bath -Isotemp 220 | Fisher Scientific | Used for Step 3 (1 per batch of samples) | |
Kimwipe | Fisher Scientific | 06-666-2 | Used for freeze drying samples |
KOH, ACS grade | Fisher Scientific | P250-500 | Hazardous: Use only in fume hood, Read MSDS, minimize use and wear appropriate PPE; Used for making citrate buffer (used in Step 1) and methanolic KOH (step 3) |
Lab quake end-over-end shaker for centrifuge tubes | Barnstead/Thermolyne | 3,625,485 | Used for Step 1 (1 per batch of samples of appropriate holding capacity) |
MeC10:0 methyl decanoate internal standard | Sigma-Aldrich | 299030-2.5G | Used for GC analysis |
Methanol | Fisher Scientific | A454-4 | Hazardous: Use only in fume hood, Read MSDS, minimize use and wear appropriate PPE; Total volume per sample = 15.5 ml (5 ml + 5 ml (step 1) + 5 ml (step 2) + 0.5 ml (step 3)) |
MIDI Peak Identification Software | MIDI, Inc., Newark, DE | Used for interpreting GC analysis output | |
MIDI Calibration Standard Mix for Microbial Identification System | Lab Sphere Inc | 1200-A | Used as a Calibration mix for TSBA 40 |
Nitrile gloves | Fisher Scientific | 27-058-52 | Used always when conducting PLFA lab work |
pH Meter – Accumet XL200 | Fisher Scientific | Used for making citrate buffer | |
Pipette (0.2 – 2 ml)- Socorex -Calibra Digital 832 Macropipette | Socorex | 832.02 | Used throughout Steps (1 per sample) |
250 µL gastight syringe | Hamilton | 1725 | Used for GC analysis (1 per sample) |
silver shield gloves | Sigma-Aldrich | Z529575 | For use when handling chloroform |
solid phase extraction (SPE) column | Agilent Technologies | 5982-2265 | Used for Step 2 (1 per sample) |
SPE glass column holder with spigots and vacuum apparatus attached | Sigma-Aldrich | Used for Step 2 (1 per batch of samples) | |
Vortex – Barnstead International Maxi Mix II- M37615 | Barnstead International | M37615 | Used in Steps 1-3 |
Water - ultra-pure and Chromosolv HPLC grade | Sigma-Aldrich | 270733-4L | Used throughout analysis |
Whirl-Pak® bags | Fisher Scientific | 01-812-120 | Used in sample collection – 2 bags required per sample collected |