Summary

Die Großproduktion von Kardiomyozyten aus humanen pluripotenten Stammzellen hochreproduzierbarer Kleinmolekül-basierte Differenzierung Protokoll

Published: July 25, 2016
doi:

Summary

Here, we present a robust, fast and scalable cardiomyocyte differentiation protocol for human pluripotent stem cells (hPSCs). Cardiomyocytes derived using this large-scale method can provide sufficient cell numbers for their effective use in human cardiovascular disease modeling, high-throughput drug screening, and potentially clinical applications.

Abstract

Maximierung der Nutzen der menschlichen pluripotenten Stammzellen (hPSCs) für Forschung, Krankheitsmodelle, pharmazeutische und klinische Anwendungen erfordert robuste Verfahren für die großtechnische Produktion von funktionellen Zelltypen, einschließlich Kardiomyozyten. Hier zeigen wir, dass die zeitliche Manipulation von WNT, TGF-β und SHH-Signalwege führt zu einer hocheffizienten cardiomyocyte Differenzierung von Einzelzell-passagierten HPSC Linien in sowohl statische Suspension und gerührten Suspension Bioreaktorsysteme. Bei Anwendung dieser Strategie führte zu ~ 100% schlagen Sphäroiden, konsequent mit> 80% kardiales Troponin T-positiven Zellen nach 15 Tagen der Kultur, validiert in mehreren HPSC Linien. Wir berichten auch auf eine Variante dieses Protokolls für die Verwendung mit Zelllinien derzeit nicht Passagierung Einzelzell angepasst, deren Erfolg in 42 HPSC Linien überprüft wurde. erzeugt Kardiomyozyten mit Hilfe dieser Protokolle ausdrücken linienspezifischen Markern und Show erwartet electrophysiologische Funktionalitäten. Unser Protokoll stellt eine einfache, effiziente und robuste Plattform für die großtechnische Produktion von humanen Kardiomyozyten.

Introduction

Menschlichen pluripotenten Stammzellen (hPSCs), einschließlich humanen embryonalen Stammzellen (hES) und induzierte pluripotenter Stammzellen (hiPSCs), haben die Fähigkeit der Selbsterneuerung und die Fähigkeit , in Zellen der drei embryonalen Keimschichten 1,2 zu differenzieren. Aufgrund dieser Eigenschaften bieten hPSCs eine wertvolle und unbegrenzte Quelle für die Erzeugung und skalierbare Produktion von krankheitsrelevanten Zelltypen für die menschliche Krankheit Modellierung 3-5, für Hochdurchsatz – Wirkstoff – Screening und Toxizitätsassays 6,7 und potenziell für klinische Anwendungen 8 . Die Erzeugung von Kardiomyozyten aus hPSCs bietet die Möglichkeit, gezielt die Mechanismen der komplexen menschlichen Herz-Kreislauf- Erkrankungen und deren mögliche Behandlungen zu untersuchen, die zuvor über den Rahmen unserer Möglichkeiten aufgrund des Fehlens von relevanten Tiermodellen und / oder die Verfügbarkeit der betroffenen Primärgewebe.

Alle der oben genannten Anwendungen von hPSCs necessitate die Produktion von massiven Zahlen von hoch angereichertem und funktionellen Kardiomyozyten. Somit ist die Verfügbarkeit eines effizienten, reproduzierbaren und skalierbaren in vitro kardialen Differenzierungs Protokoll geeignet für mehrere Linien HPSC entscheidend. Herkömmliche Kardiomyozytendifferenzierung Protokolle haben unterschiedliche Strategien wie Embryoidkörperbildung Bildung 9, Co-Kulturtechniken 10, Induktion mit Cocktails von Zytokinen 11 und Proteintransduktion Verfahren verwendet 12. Trotz der Fortschritte bei diesen Techniken, die meisten leiden immer noch unter schlechten Wirkungsgrad, erfordern teure Wachstumsfaktoren oder begrenzte Universalität bieten bei dem Versuch, mehrere HPSC Linien zu verwenden. Bis heute haben diese Herausforderungen Grenzen für die Produktion von HPSC abgeleitete Kardiomyozyten für die Zelltherapie – Studien in Tiermodellen festgelegt, sowie in der pharmazeutischen Industrie für Wirkstoffforschung 13. Daher ist die Entwicklung von robusten und erschwinglichen Techniken für große-Skala Herstellung von funktionellen HPSC abgeleitete Kardiomyozyten in skalierbaren Kultursystemen würden ihre kommerziellen und klinischen Anwendungen weitgehend erleichtern.

In diesem Manuskript berichten wir die Entwicklung eines kosteneffektiven und integrierte kardialen Differenzierungssystem mit hoher Wirksamkeit, Reproduzierbarkeit und Anwendbarkeit auf hESCs und hiPSCs aus einer Vielzahl von Quellen und Kulturverfahren erzeugt werden, einschließlich eines Verfahrens für die Herstellung im großen Maßstab von hoch angereicherten Populationen von HPSC abgeleitete Kardiomyozyten einen Bioreaktor mit. Darüber hinaus haben wir dieses Protokoll für HPSC Linien optimiert nicht frei und / oder einzelne Zellkultur, wie neu gegründeten hiPSCs oder großen Kohorten von HPSC Linien relevant Analyse von Krankheitsmechanismus Zubringer angepasst.

Protocol

1. Herstellung von Kulturmedien, Beschichtung von Zellkulturplatten und Wartung von Undifferenzierte hPSCs Nährmedienzubereitung Hinweis: Sterilisieren Medien eine 0,22 um Filtrationsvorrichtung und lagern bei 4 ° C lichtgeschützt mit bis zu 4 Wochen. Reagenz Namen, Lieferanten und Katalognummern sind in der Material Tabelle aufgeführt. Für Mouse Embryonic Fibroblasts (MEF) Medium vereinen 445 ml DMEM, 50 ml Fetal Bovine Serum (FBS) und 5…

Representative Results

Um eine einfache Methode für die groß angelegte Differenzierung von Kardiomyozyten aus hPSCs zu etablieren, haben wir ein Protokoll , in dem Zellen zunächst mit einem WNT / β-Catenin – Aktivator (CHIR99021) 16 und anschließend mit Inhibitoren der WNT behandelt wurden / β- Catenin und transformierenden Wachstumsfaktor-β (TGF-β) Bahnen (IWP2 16 und SB431542 17, jeweils) und schließlich ein Aktivator des sonic hedgehog (SHH) -Weg (purmorphamine) <su…

Discussion

Kardiomyozyten aus hPSCs abgeleitet sind eine äußerst attraktive Quelle für den Einsatz in der menschlichen Krankheit Modellierung, Wirkstoff-Screening / Toxizitätstests und vielleicht in der Zukunft, regenerative Therapien. Eine der Haupthürden, um diese Zellen jedoch verwendet wird, ist die Fähigkeit, genug hochwertigem Material für ihre wirksame Verwendung zur Verfügung zu stellen. Mit unserem beschriebenen Protokoll, bieten wir eine Methode, die diese Beschränkung überwindet.

V…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This study was funded by grants provided from Royan Institute, Iranian Council of Stem Cell Research and Technology, the Iran National Science Foundation (INSF), the National Health and Medical Research Council of Australia (NHMRC; 354400), the National Heart Foundation of Australia/Heart Kids Australia (G11S5629), and the New South Wales Cardiovascular Research Network. HF was supported by a University International Postgraduate Scholarship from the University of New South Wales, Australia. RPH was supported by a NHMRC Australia Fellowship. The authors express their gratitude to the human subjects who participated in this research.

Materials

Knockout DMEM Life Technologies 10829018
Knockout Serum Replacement (KO-SR) Life Technologies 10828028
Glutamax Life Technologies 35050061
MEM Non-essential Amino Acids Life Technologies 11140-050
β-Mercaptoethanol Life Technologies 21985-023
Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) Miltenyi Biotec 130-093-843
RPMI1640 Life Technologies 11875093
DPBS, no calcium, no magnesium Life Technologies 14190144
DPBS Life Technologies 14287072
Attachment Factor (AF) Life Technologies S006100
ECM Gel Sigma-Aldrich E1270
Laminin Invitrogen 23017-015
DMEM Life Technologies 11965-092                                                                                                       
Fatal Bovine Serum (FBS) Life Technologies 16140-071
B27 minus insulin Gibco A18956-01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070063
0.05% Trypsin/EDTA Life Technologies 25300-054
Collagenase Type IV Life Technologies 17140-019
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma-Aldrich C7902
Mitomycin C Bioaustralis BIA-M1183
CHIR99021 Miltenyi Biotec 130-104-172
IWP2 Miltenyi Biotec 130-105-335
SB431542 Miltenyi Biotec 130-095-561
Purmorphamine Miltenyi Biotec 130-104-465
ROCK inhibitor Y-27632 Miltenyi Biotec 130-104-169
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E6758
Poly Vinyl Alcohol (PVA) Sigma-Aldrich 363073
Gelatin Sigma-Aldrich G1890
Trypan Blue Bio-Rad 145-0013
Accumax  Innovative Cell Technologies Inc. AM105
Sigmacote  Sigma-Aldrich SL2 
CELLSPIN Integra Biosciences 183 001
Spinner flask with 1 pendulum, 100 ml  Integra Biosciences 182 023
Mouse Embryonic Fibroblasts (MEF) Prepared in-house (or commercially available)
Human pluripotent stem cell (hPSC) lines Prepared in-house (or commercially available)

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Citer Cet Article
Fonoudi, H., Ansari, H., Abbasalizadeh, S., Blue, G. M., Aghdami, N., Winlaw, D. S., Harvey, R. P., Bosman, A., Baharvand, H. Large-Scale Production of Cardiomyocytes from Human Pluripotent Stem Cells Using a Highly Reproducible Small Molecule-Based Differentiation Protocol. J. Vis. Exp. (113), e54276, doi:10.3791/54276 (2016).

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