Summary

Isolamento di perivascolare Multipotent precursori delle cellule popolazioni dal cardiache umane Tissue

Published: October 08, 2016
doi:

Summary

tessuto cardiaco umano alberga popolazioni di cellule precursore perivascolari multipotenti che possono essere adatti per la rigenerazione del miocardio. La tecnica qui descritta permette l'isolamento e la purificazione simultanea di due popolazioni di cellule stromali multipotenti associati con i vasi sanguigni nativi, cioè CD146 + CD34 periciti e CD34 + CD146 cellule avventiziale, dal miocardio umano.

Abstract

Multipotent mesenchymal stem/stromal cells (MSC) were conventionally isolated, through their plastic adherence, from primary tissue digests whilst their anatomical tissue location remained unclear. The recent discovery of defined perivascular and MSC cell marker expression by perivascular cells in multiple tissues by our group and other researchers has provided an opportunity to prospectively isolate and purify specific homogenous subpopulations of multipotent perivascular precursor cells. We have previously demonstrated the use of fluorescent activated cell sorting (FACS) to purify microvascular CD146+CD34 pericytes and vascular CD34+CD146 adventitial cells from human skeletal muscle. Herein we describe a method to simultaneously isolate these two perivascular cell subsets from human myocardium by FACS, based on the expression of a defined set of cell surface markers for positive and negative selections. This method thus makes available two specific subpopulations of multipotent cardiac MSC-like precursor cells for use in basic research and/or therapeutic investigations.

Introduction

Il cuore è stato a lungo considerato un organo post-mitotico. Tuttavia, studi recenti hanno dimostrato la presenza di fatturato cardiomiociti limitata nel cuore degli uomini adulti 1. Cellule staminali / progenitrici nativa con cardiomiociti potenziale di differenziazione sono stati individuati all'interno del miocardio in roditori adulti e cuori umani, tra cui Sca-1 +, c-kit +, Cardiosphere di formazione, e, più recentemente, le cellule precursori perivascolari 2,3. Queste cellule rappresentano candidati interessanti per le terapie volte a migliorare cardiaco riparazione / rigenerazione attraverso il trapianto di cellule o la stimolazione della proliferazione in situ.

Staminali mesenchimali / cellule stromali (MSC) sono stati isolati da quasi tutti i tessuti umani 4,5 Studi clinici delle applicazioni terapeutiche di MSC sono state effettuate per molteplici condizioni patologiche quali la riparazione cardiovascolare 6, graft-versus-host-disease 7 </sup>, E cirrosi epatica 8. Effetti benefici sono stati attribuiti alla capacità delle cellule staminali mesenchimali per: a casa per i siti di infiammazione 9; differenziarsi in diversi tipi cellulari 10; secernono molecole pro-riparativi 11; e modulare risposta immunitaria 12. L'isolamento di cellule staminali mesenchimali ha tradizionalmente fatto affidamento su loro adesione preferenziale ai substrati plastici. Tuttavia, la popolazione di cellule risultante è tipicamente marcatamente eterogenea 13. Usando fluorescenza delle cellule attivate (FACS) con una combinazione di marcatori chiave di cellule perivascolari, siamo stati in grado di isolare e purificare un multipotenti MSC-come precursore della popolazione (CD146 + / CD31 / CD34 / CD45 / CD56 -) da molteplici tessuti umani, tra cui il muscolo scheletrico adulto e grasso bianco 14.

popolazioni di cellule perivascolari in vari tessuti non-cardiaci hanno dimostrato di avere proprietà staminali / progenitrici a cellulariND sono indagati per uso clinico in ambito cardiovascolare. Periciti, uno dei più noti sottopopolazioni di cellule perivascolari, sono una popolazione eterogenea che svolgono diversi ruoli fisiopatologici compresa nello sviluppo di nuovi vasi 15, la regolazione della pressione sanguigna 16, e il mantenimento dell'integrità vascolare 17,18. Come mostrato in diversi tessuti, specifici sottoinsiemi di periciti nativamente esprimono antigeni MSC e sostenere le loro fenotipi MSC-come in coltura primaria dopo FACS purificazione 14. Inoltre, queste cellule mantengono stabilmente i loro fenotipi a lungo termine all'interno della cultura e mostrano multi-lignaggio potenziale di differenziazione, simile a MSC 19,20. Questi risultati suggeriscono che periciti sono una delle origini della MSC sfuggente 14. Il potenziale terapeutico dei periciti è stata dimostrata con una riduzione cicatrici miocardica e migliorata funzione cardiaca dopo trapianto in ischemically feriticuori 21. Recentemente, abbiamo purificati con successo periciti dal miocardio umano e dimostrato la loro fenotipi MSC-simili e multipotenza (adipogenesi, Condrogenesi e osteogenesi) con l'assenza di miogenesi scheletrico 3. Inoltre, periciti miocardio esposti differenziali capacità potenziali e angiogenici cardiomyogenic se confrontato con le controparti purificati da altri organi.

Una seconda popolazione di cellule staminali / progenitrici multipotenti perivascolari, la cellula avventiziale, è stato isolato da safene umane sulla base di espressione CD34 positivo 22. Cellule avventiziale venose hanno dimostrato di avere un potenziale clonogenico, la capacità di differenziazione mesoderma e potenziale proangiogenico in vitro. Il trapianto di queste cellule nei cuori ischemically feriti di topi ha comportato una riduzione della fibrosi interstiziale, un aumento angiogenesi e flusso miocardico, ridotta dil ventricolarezione, e l'aumento di eiezione cardiaca frazione 23. È interessante notare che le cellule adipose avventiziale hanno dimostrato di perdere l'espressione di CD34 e CD146 upregulate espressione di cultura in risposta al trattamento angiopoietin II, suggerendo l'adozione di un fenotipo pericyte con la stimolazione 24. All'interno del cuore, tuttavia, la popolazione di cellule avventiziale non è ancora stato prospetticamente purificato mediante FACS e / o ben caratterizzato. Utilizzando le procedure di isolamento delle cellule descritte nelle sezioni seguenti, stiamo caratterizzando cellule miocardiche avventiziale e indagare il loro potenziale per applicazioni rigenerative.

Qui si descrive un metodo per isolare e purificare due sottopopolazioni di cellule staminali / progenitrici perivascolari da miocardio fetale o umano adulto. Questo metodo di isolamento delle cellule prospettico permetterà ai ricercatori di ottenere isogenici sottoinsiemi di cellule staminali / progenitrici perivascolari da biopsie cardiache umane per gli studi comparativi e further esplorare il loro potenziale terapeutico in varie condizioni patologiche cardiache.

Protocol

1. Il trattamento di cardiache umane del campione Assicurarsi che tutti i fluidi, contenitori, strumenti, e la zona operativa dedicata sono sterili. Posizionare il campione di tessuto cardiaco (ottenuta con la banca dei tessuti o all'équipe chirurgica) nel supporto di memorizzazione composto medio refrigerata di Dulbecco modificato Eagle (DMEM) contenente 20% di siero fetale bovino (FBS) e 1% di penicillina-streptomicina (P / S) sul ghiaccio per il trasporto 3. Rimuovere il…

Representative Results

singole cellule si distinguevano da detriti e doppiette sulla base delle distribuzioni in avanti e scatter laterale. cellule vive sono stati identificati per la loro incapacità di prendere il colorante DAPI. La strategia di gating è stato scelto sulla base di etichettatura controllo isotipico di questo live, dissociazione whole-cell cardiaca (Figura 1). Dalle cellule vive, cellule CD45 + sono stati gated, seguito da CD56 + cellule. Cellule endotel…

Discussion

Una crescente evidenza supporta una limitata capacità rigenerativa del cuore umano adulto dopo l'infortunio. Identificazione e caratterizzazione di cellule precursori native responsabili di tali risposte rigenerativa nei cuori feriti sono fondamentali sia per la comprensione dei meccanismi associati e vie di segnalazione e lo sviluppo di approcci di utilizzare queste cellule terapeuticamente.

Protocolli precedenti hanno descritto l'isolamento di sottoinsiemi di cellule precursori pe…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors wish to thank Shonna Johnston, Claire Cryer, Fiona Rossi and Will Ramsay at the University of Edinburgh and Alison Logar and Megan Blanchard at the University of Pittsburgh for their expert assistance with flow cytometry. We also wish to thank Anne Saunderson and Lindsay Mock for their help with obtaining human tissues. Human adult and fetal heart tissue samples were procured with full ethics permission of the NHS Scotland Tayside Committee on Medical Research Ethics and the NHS Lothian Research Ethics Committee (REC08/S1101/1) respectively. This work was supported by grants from the Medical Research Council (BP), British Heart Foundation (BP), Commonwealth of Pennsylvania (BP), Children’s Hospital of Pittsburgh (BP), National Institute of Health R01AR49684 (JH) and R21HL083057 (BP), and the Henry J. Mankin Endowed Chair at University of Pittsburgh (JH). JEB was supported by a British Heart Foundation Centre of Research Excellence doctoral training award (RE/08/001/23904). WC was supported in part by an American Heart Association predoctoral fellowship (11PRE7490001).

Materials

AbC Anti-mouse Bead Kit Molecular Probes A-10344
Collagenase I Gibco 17100-017 Reconstitute powder as required and filter sterilise
Collagenase II Gibco 17101-015
Collagenase IV Gibco 17104-019
anti-human CD34-PE BD Pharmingen 555822 Keep sterile
anti-human CD45-APC-Cy7 BD Pharmingen 557833 Keep sterile
anti-human CD56-PE-Cy7 BD Pharmingen 557747 Keep sterile
anti-human CD144-PerCP-Cy5.5 BD Pharmingen 561566 Keep sterile
anti-human CD146-AF647 AbD Serotec MCA2141A647 Keep sterile
EGM2-BulletKit Lonza CC-3162 For collection of cells and culture until adhered
DMEM, high glucose, GlutaMAX without sodium pyruvate ThermoFischer Scientific 10566-016
Fetal Bovine Serum ThermoFischer Scientific 10500-064 Freeze in aliquots and keep sterile
Gelatin Sigma Aldrich G1393 Dilute with sterile water
IgG1k-PE BD Pharmingen 559320 Keep sterile
IgG1k-APC-Cy7 BD Pharmingen 557873 Keep sterile
IgG1k-PE-Cy7 BD Pharmingen 557872 Keep sterile
IgG1k-PerCP-Cy5.5 BD Pharmingen 561566 Keep sterile
IgG1k-647 AbD Serotec MCA1209A647 Keep sterile
Mouse serum Sigma Aldrich M5905 Keep sterile
Paraffin Film – Parafilm M Sigma Aldrich P7793
Penicillin-Streptomycin Gibco 15979-063 Freeze in aliquots and keep sterile
Phosphate buffered saline pH 7.4 ThermoFischer Scientific 10010-023 Keep sterile
Red Blood Cell Lysing Buffer Hybri-Max Sigma Aldrich R7757 Keep sterile
Trypan Blue Solution Sigma Aldrich T8154
Trypsin-EDTA 0.5%(10X) Invitrogen 15400-054
 FACSARIA FUSION BD Pharmingen Fluorescence Activated Cell Sorter

References

  1. Bergmann, O., et al. Evidence for cardiomyocyte renewal in humans. Science (New York, N.Y.). 324 (5923), 98-102 (2009).
  2. Laflamme, A., Murry, C. E. Heart regeneration. Nature. 473 (7347), 326-335 (2011).
  3. Chen, W. C. W., et al. Human myocardial pericytes: multipotent mesodermal precursors exhibiting cardiac specificity. Stem cells (Dayton, Ohio). 33 (2), 557-573 (2015).
  4. Campagnoli, C., Roberts, I. A., Kumar, S., Bennett, P. R., Bellantuono, I., Fisk, N. M. Identification of mesenchymal stem/progenitor cells in human first-trimester fetal. Blood. 98 (8), 2396-2402 (2001).
  5. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Molecular biology of the cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  6. Chen, S., et al. Effect on left ventricular function of intracoronary transplantation of autologous bone marrow mesenchymal stem cell in patients with acute myocardial infarction. The American journal of cardiology. 94 (1), 92-95 (2004).
  7. Ringdén, O., et al. Mesenchymal stem cells for treatment of therapy-resistant graft-versus-host disease. Transplantation. 81 (10), 1390-1397 (2006).
  8. Kharaziha, P., et al. Improvement of liver function in liver cirrhosis patients after autologous mesenchymal stem cell injection: a phase I-II clinical trial. European journal of gastroenterology & hepatology. 21 (10), 1199-1205 (2009).
  9. Spaeth, E., Klopp, A., Dembinski, J., Andreeff, M., Marini, F. Inflammation and tumor microenvironments: defining the migratory itinerary of mesenchymal stem cells. Gene therapy. 15 (10), 730-738 (2008).
  10. Yan, X., et al. Injured microenvironment directly guides the differentiation of engrafted Flk-1(+) mesenchymal stem cell in lung. Experimental hematology. 35 (9), 1466-1475 (2007).
  11. Van Poll, D., et al. Mesenchymal stem cell-derived molecules directly modulate hepatocellular death and regeneration in vitro and in vivo. Hepatology (Baltimore, Md.). 47 (5), 1634-1643 (2008).
  12. Popp, F. C., et al. Mesenchymal stem cells can induce long-term acceptance of solid organ allografts in synergy with low-dose mycophenolate. Transplant immunology. 20 (1-2), 55-60 (2008).
  13. Li, Z., Zhang, C., Weiner, L. P., Zhang, Y., Zhong, J. F. Molecular characterization of heterogeneous mesenchymal stem cells with single-cell transcriptomes. Biotechnology advances. 31 (2), 312-317 (2013).
  14. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3 (3), 301-313 (2008).
  15. Ozerdem, U., Stallcup, W. B. Early contribution of pericytes to angiogenic sprouting and tube formation. Angiogenesis. 6 (3), 241-249 (2003).
  16. Rucker, H. K., Wynder, H. J., Thomas, W. E. Cellular mechanisms of CNS pericytes. Brain research bulletin. 51 (5), 363-369 (2000).
  17. Betsholtz, C. Insight into the physiological functions of PDGF through genetic studies in mice. Cytokine & Growth Factor Reviews. 15 (4), 215-228 (2004).
  18. Gerhardt, H., Betsholtz, C. Endothelial-pericyte interactions in angiogenesis. Cell and tissue research. 314 (1), 15-23 (2003).
  19. Crisan, M., Chen, C. W., Corselli, M., Andriolo, G., Lazzari, L., Péault, B. Perivascular multipotent progenitor cells in human organs. Annals of the New York Academy of Sciences. 1176, 118-123 (2009).
  20. Kang, S. G., et al. Isolation and perivascular localization of mesenchymal stem cells from mouse brain. Neurosurgery. 67 (3), 711-720 (2010).
  21. Chen, C. W., et al. Human pericytes for ischemic heart repair. Stem cells (Dayton, Ohio). 31 (2), 305-316 (2013).
  22. Campagnolo, P., et al. Human adult vena saphena contains perivascular progenitor cells endowed with clonogenic and proangiogenic potential. Circulation. 121 (15), 1735-1745 (2010).
  23. Katare, R., et al. Transplantation of human pericyte progenitor cells improves the repair of infarcted heart through activation of an angiogenic program involving micro-RNA-132. Circulation research. 109 (8), 894-906 (2011).
  24. Corselli, M., Chen, C. W., Sun, B., Yap, S., Rubin, J. P., Péault, B. The Tunica Adventitia of Human Arteries and Veins As a Source of Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells and Development. 21 (8), 1299-1308 (2012).
  25. Crisan, M., et al. Purification and long-term culture of multipotent progenitor cells affiliated with the walls of human blood vessels: myoendothelial cells and pericytes. Methods in cell biology. 86, 295-309 (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Baily, J. E., Chen, W. C., Khan, N., Murray, I. R., González Galofre, Z. N., Huard, J., Péault, B. Isolation of Perivascular Multipotent Precursor Cell Populations from Human Cardiac Tissue. J. Vis. Exp. (116), e54252, doi:10.3791/54252 (2016).

View Video