The protocol describes a novel murine femur window chamber model that can be used to track movement of cells in the femoral bone marrow in vivo. Intravital multiphoton fluorescence microscopy is used to image three components of the femoral bone marrow (vasculature, collagen matrix, and neutrophils) over time.
Bone marrow is a complex organ that contains various hematopoietic and non-hematopoietic cells. These cells are involved in many biological processes, including hematopoiesis, immune regulation and tumor regulation. Commonly used methods for understanding cellular actions in the bone marrow, such as histology and blood counts, provide static information rather than capturing the dynamic action of multiple cellular components in vivo. To complement the standard methods, a window chamber (WC)-based model was developed to enable serial in vivo imaging of cells and structures in the murine bone marrow. This protocol describes a surgical procedure for installing the WC in the femur, in order to facilitate long-term optical access to the femoral bone marrow. In particular, to demonstrate its experimental utility, this WC approach was used to image and track neutrophils within the vascular network of the femur, thereby providing a novel method to visualize and quantify immune cell trafficking and regulation in the bone marrow. This method can be applied to study various biological processes in the murine bone marrow, such as hematopoiesis, stem cell transplantation, and immune responses in pathological conditions, including cancer.
Костный мозг является важным органом участвует в кроветворении и регуляции иммунной системы. Он состоит из компонента , содержащего кроветворной гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток (HSPCs) и стромальных компонент , содержащий не-кроветворных клеток – предшественников , которые приводят к мезенхимальных клеток 1. Две трети кроветворной деятельности посвящена поколению миелоидных клеток 2. В частности, большое количество нейтрофилов в костном мозге, при 1-2 х 10 11 клеток , полученных в день в нормального взрослого человека 2. Нейтрофилы являются первой линией защиты от микробной инфекции и в основном сохраняются в костном мозге , пока стресс не вызывает их мобилизацию в дополнение нейтрофилов периферической 1,3. В дополнение к их антимикробных эффектов, недавние исследования указывают на важную роль нейтрофилов в биологии рака, имеющие как про- и анти-онкогенными фенотипы в зависимости от роста преобразующейКоэффициент бета (TGF-β) сигнализации в опухоль микроокружения 4,5. Кроме того, исследования показали , что нейтрофилы , которые накапливаются в первичных опухолях оказывают про-онкогенных и метастатических эффекты путем подавления цитотоксическую функцию Т – клеток 6,7, в то время как нейтрофилы в обращении оказывают цитотоксическое, антиметастатическую эффект 8. Таким образом, исследование гемопоэтических клеток в костном мозге, в частности нейтрофилах, имеет решающее значение для их выяснении роль в иммунной и опухолевой регуляции.
Гистологическое и полный периферийный анализ крови , которые обычно используются для оценки клеточных и структурные изменения в костном мозге 9. Тем не менее, эти методы обеспечивают только статическую информацию о различных клеточных популяций или микроструктур тканей. Продольный в естественных изображений могут быть использованы в сочетании со стандартными методами с целью оценки динамики нескольких клеточных, сосудистых и стромальных компонентов, а также от клетки к CELL взаимодействия в продольном образом. Прижизненные микроскопии (IVM), определяется как визуализации живых животных при микроскопическом разрешением 10, является особенно полезным для оценки динамических клеточных процессов , в течение долгого времени в том же самом образце, уменьшая количество экспериментальных животных требуется. IVM часто сочетается с хронически пересаженной окна камеры (WC), чтобы получить доступ к органу интереса для визуализации в течение периода от нескольких недель до месяцев. Черепных и спинных-складка WC модели имеют самую длинную историю использования, начиная с середины 1990-х годов. Совсем недавно другие органоспецифические WC модели , такие как таковые из жировой ткани молочных желез и различных органах брюшной полости, были разработаны 11.
Типичный подход для визуализации костного мозга в естественных условиях имеет в основном вовлечены воздействие на своде черепа мышей, где утонченная кости позволяет осуществлять прямую визуализацию отдельных клеток с минимальным хирургическим вмешательством 12-14. Тем не менее, свода черепа костный мозг может бе отличие от других костей, таких как длинной кости, как продемонстрировано меньшим количеством HSPCs и гипоксических клеток в своде черепа, что свидетельствует сокращает расходы на содержание и развитие HSPCs 15. Таким образом, альтернативные подходы для оценки клеточных компонентов в длинной кости были исследованы. К ним относятся прямое облучение костного мозга бедренной кости 16 и внематочной трансплантация разделенной бедренной кости в дорсальной кожной складки WC 17. Тем не менее, первый является терминал процедура, которая не позволяет отслеживать клеточных, структурных и функциональных изменений в течение более длительных периодов времени, и последний, вероятно, нарушает нормальную функцию костного мозга из-за трансплантацией бедренной кости к внематочной месте внутри спинной кожной складки WC. Другой метод, который позволяет ортотопической последовательного визуализации костного мозга бедренной кости в течение долгого времени является использование туалета в бедренной кости. Один предыдущий доклад продемонстрировал долгосрочный визуализации микроциркуляции в костном мозге бедра с использованиембедренной кости туалет у мышей 18. Кроме того, авторы продемонстрировали визуализацию опухолевых клеток в бедренной кости, что указывает на его полезность в деле мониторинга костного метастаза мозга. Тем не менее, эта конструкция WC был ограничен его большой размер (диаметр 1,2 см) и относительно небольшой площади изображения (4 мм в диаметре), который подходит только для больших мышей (26-34 г, в 3-6-месячном возрасте), тем самым делая подход непрактичным для повседневного использования.
Таким образом, новый туалет с меньшим общим размером и большей площади внутренней обработки изображений был разработан для целей настоящего исследования. Цель данного исследования состояла в том, чтобы обеспечить способ для визуализации различных типов клеток в костном мозге бедра. Модель WC бедренной кости была разработана в доме и был использован для визуализации и отслеживания нейтрофилов в 3D сосудистой сети. С помощью этой модели ИВМ костного мозга может быть выполнена последовательно в течение 40 дней. Этот подход может быть применен к различным полей для выяснения процессов кроветворения, иммунной регуляцииразвитие опухоли й.
Real-time, serial imaging of the dynamic cellular processes in bone marrow provides information that is otherwise challenging to obtain using conventional techniques such as histology and total blood counts. The femur WC model described here provides unique opportunities to investigate cellular and structural alterations in the bone marrow over time. Although a femur WC model has been previously reported, our novel design provides a larger imaging field of view and smaller overall WC size, which are more compatible for u…
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank the Advanced Optical Microscopy Facility (www.aomf.ca) at the University Health Network for assistance with microscopy, and Mr. Jason Ellis from the Princess Margaret Cancer Center Machine Shop for manufacturing the WC and the imaging stage. We would also like to thank Dr. Iris Kulbatski for manuscript editing.
NRCNU-F athymic nude mice | Taconic | Ncr nude | 8-10 weeks old, female |
Saline | Baxter | JB1302P | |
Ketamine hydrochloride | Bioniche Animal Health Canada, Inc. | DIN 01989529 | |
Xylazine | Bayer HealthCare, Bayer Inc. | DIN 02169592 | |
Surgical drape | Proxima | DYNJP2405 | |
Electric heating pad | Life Brand | 57800827375 | |
Stereomicroscope | Leica | Leica M60 | |
Eye ointment (tear gel) | Novartis | T296/2 | |
7.5% betadine | Purdue Frederick Co | 67618-151-16 | |
70% isopropyl alcohol | GreenField | P010IP7P | |
10% betadine | Purdue Frederick Co | 67618-150-05 | |
Scalpel handle (#3) | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Scalpel blade (#15) | VWR | 89176-368 | |
Spring Scissors curved | Fine science Tools | 15023-10 | |
Baby-Mixter Hemostat | Fine science Tools | 13013-14 | |
Fine Scissors | Fine science Tools | 14094-11 | |
Extra Fine Graefe Forceps | Fine science Tools | 11151-10 | |
Halsted-Mosquito Hemostats | Fine science Tools | 13008-12 | |
Micro-drill | Harvard Apparaus | 72-6065 | |
Micro-drill burrs | Fine Science Tools | 19007-14 | |
Femur window chamber | PMCC machine shop | custom design | 9.1mm- 8.5mm- 7.5 mm (outer to inner diameter), 2.16 mm (radius of two holes), 13.9mm (distance between two holes), 0.7mm (thickness) |
U-shaped bar | PMCC machine shop | custom design | 13.8mm (length), 1.6 mm (width), 3.7mm (height) |
Coverglass (8mm) | Warner Instruments | HBIO 64-0701 CS-8R | |
Retaining ring (8mm) | ACKLANDS GRAINGER | UNSPSC # 31163202 | |
Nuts (hexagon stainless steel) | Fastenal | 70701 | |
Dental cement | 3M | RelyX U200 | |
Suture (5-0 Monosof black) | Covioien | SN-5698 | |
Halsey needle holder | Fine Science Tools | 12501-13 | |
Buprenorphine (Temgesic) | Reckitt Benckiser | DIN 0281251 | |
Meloxicam (Metacam) | Boehringer Ingelheim | DIN 02240463 | |
Amoxicillin (Clamavox) | Pfizer | DIN 02027879 | |
FITC-Dextran | Sigma-Aldrich | FD2000S | |
APC- Anti-Mouse Ly-6G (Gr-1) | eBioscience | 17-9668 | |
Two-photon microscope LSM 710 | Carl Zeiss | Zeiss LSM 710 NLO | |
Imaging stage | PMCC machine shop | custom design | 15.9cm (length), 11cm (width), 0,9cm (height) |
Imaris software | Bitplane | Imaris 8.0 | Image analysis software described in Section 3 of the Protocol |
Zen 2012 | Zeiss | Zen 2012 | Image acqusition software described in Section 2 of the Protocol |