Enhanced darkfield microscopy and hyperspectral imaging with spectral mapping enable screening, localization, and identification of nanoscale materials in histological samples with improved speed and accuracy over traditional methods. The goal of this paper is to provide methods for darkfield imaging and hyperspectral mapping of metal oxide nanoparticles in histological samples.
Nanomaterials are increasingly prevalent throughout industry, manufacturing, and biomedical research. The need for tools and techniques that aid in the identification, localization, and characterization of nanoscale materials in biological samples is on the rise. Currently available methods, such as electron microscopy, tend to be resource-intensive, making their use prohibitive for much of the research community. Enhanced darkfield microscopy complemented with a hyperspectral imaging system may provide a solution to this bottleneck by enabling rapid and less expensive characterization of nanoparticles in histological samples. This method allows for high-contrast nanoscale imaging as well as nanomaterial identification. For this technique, histological tissue samples are prepared as they would be for light-based microscopy. First, positive control samples are analyzed to generate the reference spectra that will enable the detection of a material of interest in the sample. Negative controls without the material of interest are also analyzed in order to improve specificity (reduce false positives). Samples can then be imaged and analyzed using methods and software for hyperspectral microscopy or matched against these reference spectra in order to provide maps of the location of materials of interest in a sample. The technique is particularly well-suited for materials with highly unique reflectance spectra, such as noble metals, but is also applicable to other materials, such as semi-metallic oxides. This technique provides information that is difficult to acquire from histological samples without the use of electron microscopy techniques, which may provide higher sensitivity and resolution, but are vastly more resource-intensive and time-consuming than light microscopy.
作为纳米材料在各种行业和应用越来越多地使用,有需要一种更快速,经济实惠,并方便比传统方式,诸如电子显微镜的纳米成像和表征方法。为了显现与细胞,组织,和生命系统,许多光学技术已经被采用,包括微分干涉对比(DIC)显微1和渐逝场为基础的方法,例如全内反射(TIR)或近纳米颗粒(NP)的相互作用场扫描光学显微镜(NSOM)2,3。然而,这些高端的分析方法,掉大部分非专业实验室4拿不到的地方。电子显微镜,包括透射电子显微镜(TEM),也被用来研究的NP与细胞5,6,7,8-相互作用。高角环形暗场(HAADF)扫描透射电子显微镜已经被用于研究纳米粒子的相互作用与病毒9。共聚焦显微镜是用于研究NP-细胞相互作用10另一种流行的技术。
近年来,暗场为基础的超光谱成像(HSI)技术已经被用作用于在生物基质11就读纳米粒一种很有前途的分析工具。 HSI系统产生空间和光谱数据,被称为一个超立方体或datacube 12的三维表示。光谱变化的空间映射用于材料识别。可以产生和对比未知样品用作参考库已知材料光谱图。一与HSI系统的主要优点是它能够成像光谱结合,由此建立的位置和未知的NP的分布在体内或离体以及它们链接到已知的,类似的组合物的另一个参考颗粒。
有几个优点采用HSI系统比传统成像技术:最小的样品制备是必需的;样品制备是通常的非破坏性的性质;图像采集和分析是快;该技术具有成本效益的13;和空间分布的混合组合物和/或复杂基质中的化合物的分析更容易完成14。
纳米材料的研究,涉及珍贵样品,其中最重要的考虑因素之一是一种非破坏性成像方法,其允许所述潜在重复检查由一种或多种方法的样品的可用性。重复或多个分析可期望开发综合数据集,不会从一个单一的方法是可用的。为了对此,研究其光学特性是分析样品的最安全的方式。通过使用增强暗视野显微镜(EDFM)和HSI系统,研究样品的光学响应 – 即reflectance,而且吸光度和透射率-特征鉴定和表征可以执行15。潜在的表征端点包括相对尺寸和样品中的纳米颗粒或附聚物和纳米颗粒的分布的形状的评估。
在本文中,我们描述了映射方法专门用于金属氧化物纳米颗粒在死后组织使用基于被称为光谱角映射器(SAM)的像素光谱匹配算法一个HSI系统。我们选择这种特定应用,因为它具有以补充当前和未来的体内纳米毒理学研究,其中的动物模型被用来评估曝光对健康的影响,以工程纳米材料的潜能。这种方法的应用也可以通知纳米药物递送研究了利用组织或动物模型。尤其是,纳米颗粒的吸收,分布,代谢和排泄整个örgans和组织可能与此系统进行调查。各种各样的应用正在在生物医学研究11调查使用。
该方法可以被用于不同的生物样品(如各种组织的类型,支气管肺泡灌洗样本,和血涂片),该已暴露于纳米颗粒的各种元素组成16-19的评估。此外,这种方法是用于研究纳米颗粒的生物分布在体内和体外 ,这是相关的纳米级药物递送研究11是有用的。以外的生物样品,EDFM和HSI可以用来评估纳米颗粒环境样品,如废水20个在。职业暴露评估可通过使用此技术来促进,以及,因为它可被用来评估在防止纳米颗粒穿透的个人防护设备的功效。此外,研究忒凌晨目前正在开发一个类似的EDFM和HSI协议的纳米颗粒的职业暴露评估收集的过滤介质样品的评价。而准备EDFM和HSI这些不同类型的样品可能会有所不同,但重要的是它们的制备,因为它们可以由光学系统很容易地可视化的方式。典型地,样品应制备为如果它会经由传统明场显微可视化。有市售的11几个高光谱成像系统。
对于已经经过常规组织学染色,金属氧化物纳米粒子的识别和分析的组织样品可以通过EDFM,HSI映射和图像分析技术的组合来实现。虽然在用于组织学或免疫组织化学的样品制备的灵活性(例如,使用固定的或冷冻的组织;色斑的类型),但重要的是样品切片,以获得最佳的可视化的厚度为5-10微米。这里使用的样品是福尔马林固定和石蜡包埋,用旋转切片机切片至6微米厚之前,安装在玻璃显微镜载片上,用苏木精和曙红和盖上盖玻片。猪皮肤的组织从活体外皮肤渗透毒理学协作用于该研究。将组织暴露于金属氧化物纳米颗粒(氧化铝,二氧化硅,二氧化铈)的水悬浮液。检测感兴趣区域(S)的(高对比度elemeNTS)与EDFM是促进后续恒指映射和分析关键的第一步。阳性和阴性对照样品必须被成像和第一,以便创造一个光谱库,以供参考分析。从阳性对照所收集的光谱输出到阳性对照光谱库。然后,从阴性对照图像所有光谱是从阳性对照的光谱库中减去,以提高特异性(减少误报)。由此产生的过滤谱库被认为是服务于感兴趣的材料分析认为,RSL。所有的组织样本进行相同的成像过程和被映射对RSL。由此产生的图像将包含与目标在黑色的背景元素专用区。此图像然后可以用使用ImageJ其阈值和粒子分析功能,以获得每个视场映射粒子的面积进行分析。从ImageJ的获得的数值数据可以导出编到一个电子表格作进一步的分析。
考虑到,作为生物样品彼此本质上的不同,和染色方法可以通过EDFM和HSI影响可视化,曝光设置,应根据什么产生最佳的高对比度图像为样本的特定类型来确定是很重要的。虽然减少误报可以通过光谱库的过滤来实现,这是至关重要的,以获得已经避免污染与所关注的元件可靠阴性对照,作为相应于这种污染的光谱可能被从阳性对照的光谱库过滤,增加假阴性率。另外,光谱强度范围可检测与超光谱成像软件不能超过特定的软件的限制(对于本研究,这是16000单位):产生菌具有大量的积累颗粒区域ectral强度以上的强度极限被排除的光谱库的,由于增加的假阴性的数量的风险。
虽然恒指系统比传统方法赋予许多优点,也有一些缺点和局限性考虑。之一是,大量收集可能需要大量的计算能力的光学数据。另一个原因是,恒指可能需要大量的时间,特别是在开始阶段,当正在创建的参考谱库。此外,成像时间可能要求每个图像采集几分钟的时间,使得它比简单的暗场成像速度较慢;然而,它仍然比通过电子显微镜进行采样制备和可视化更快。此外,复杂的系统可能导致多个特性谱,这需要高度专业化的控制的发展做出建立标准化,通用的基准库26困难。最后,高科技NIQUE结果在分辨率比探针 – 或电子显微镜技术,例如原子力显微镜或透射电子显微镜,可以分辨单个原子的低级。该技术的分辨率是有限的,因为它的光子性质,从而防止它从一个高精度工具,用于测量颗粒尺寸在纳米级或用于以亚微米级精确定位的材料。而该技术可能能够查明某些组织区室或细胞器内的颗粒大于1微米(如细胞核),小细胞器或特征是具有挑战性的准确形象化用这种方法。还值得注意的,因为它的空间分辨率,该方法不能单一纳米颗粒和附聚物11区分。
其他考虑因素包括:某些材料(如贵金属)具有非常高的反射率和不同的光谱图,它可以使它们更容易ANALY泽而与此工具的光谱图。其它如研究本研究中的半金属的氧化物和碳基纳米材料24,27,可以是更具挑战性,因为它们的元素组成,形状和视矩阵。在经Mercer等人的2鼠吸入研究,一个类似的系统,以一个在这项研究中使用的,使用,以找到碳纳米管在肺和基于其与周围组织显着高的对比度次级器官。然而,高光谱制图未在任一研究表明,可能是因为碳纤维的独特形状为足够性状进行识别。另一个要考虑的是关于具体组织:自沉积纳米粒子通过正常的生物物理过程感兴趣的特定器官是不可预测的(并且经常自己研究的课题),确定适用的阳性对照的是很困难的,需要考虑的是如何生成的控制米的飞行影响感兴趣的材料的状态。例如,如果一个光谱库是从感兴趣原始纳米颗粒创建时,它可能难以映射库的那些相同的纳米颗粒在组织或细胞中由于改变光谱从变更粒子(如所导致,由于改变pH值,溶解,结块,蛋白质结合)和整体微环境或基质。最后,该技术在其半定量性质的限制:它只能是定量为相似的分辨率,这意味着它不能容易地用于执行任务,例如表征材料的总器官负担等二维显微镜技术。
总体而言,EDFM和HSI提供若干优点优于常规纳米成像和表征技术,如TEM,HAADF和DIC。 EDFM / HSI允许更快的图像采集和分析,从而节省了时间和成本相比,更密集4.便利tional技术。此外,对于EDFM / HSI样品制备通常都极小和非破坏性,从而节省时间,还允许对于给定的样品的更灵活的分析,因为它随后可以用于其它技术。此外,恒指多才多艺,允许许多组成的纳米材料的分析,并在各种基质。该研究团队正在努力改进此描述的其他材料和样品类型,包括深入评估该技术的特异性的方法。由研究小组正在调查的一个关键下一步是对传统的黄金标准,这些技术验证( 例如 ,拉曼光谱,TEM,SEM)的材料和感兴趣的组织类型。
The authors have nothing to disclose.
The authors thank Günter Oberdörster, DVM, PhD and Alison Elder, PhD (University of Rochester) and Mary Frame, PhD (Stony Brook University) for animal research collaborations resulting in tissue samples for analysis. Additionally, the authors thank: Christina Rotondi (Albany Medical College Histology Core); Rani Sellers, DVM, PhD and Barbara Cannella, PhD (Albert Einstein College of Medicine Histology and Comparative Pathology Facility); Leonardo Bezerra and Ahlam Abuawad (Brenner research team members); and Leslie Krauss, Byron Cheatham and Elyse Johnson (CytoViva). This work was supported in part by CDC-NIOSH grant OH-009990-01A1 and the NanoHealth and Safety Center, New York State, awarded to S.B.
CytoViva 150 Unit (condenser) | CytoViva (Auburn, AL) | mounted to Olympus BX43 microscope | |
Olympus BX43 Microscope – Analyzer Slot – HSI with 10x and 40x air objectives and 100x oil immersion objective | obtained through CytoViva (Auburn, AL) | for use with CytoViva 150 Unit condenser | |
Dagexcel-M Digital Firewire Camera – Cooled; includes Exponent 7 software | obtained through CytoViva (Auburn, AL) | enhanced darkfield camera and software | |
CytoViva Hyperspectral Imaging System 1.4; includes Pixelfly hyperspectral camera, XY stage controller, ENVI hyperspectral imaging software | obtained through CytoViva (Auburn, AL) | hyperspectral camera and software | |
cleanroom cleaned glass microscope slides (glass B slides) | Schott NEXTERION | 1025087 | reduced debris and artifacts compared to conventional glass microscope slides for optimal imaging |
cleanroom cleaned glass microscope coverslips (#1.0; 22mm x 22mm x 1.45mm) | Schott NEXTERION | custom | reduced debris and artifacts compared to conventional glass coverslips for optimal imaging |
type A microscopy immersion oil | Fisher Scientific | 12368B | multiple suppliers |
70% isopropanol in water | multiple suppliers | ||
ImageJ software | National Institutes of Health (NIH) | free open-source software online download | |
metal oxide nanoparticles | supplied to the research team by industrial partners | alumina, silica, and ceria nanoparticles in aqueous suspensions. Due to a Non-Disclosure Agreement between the authors and industry partners, further product information cannot be disclosed. |